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Quantifizierung von bioaktiven Typ-I-Interferonen mit Hilfe eines sezernierten embryonalen alkalischen Phosphatase-Reporter-Assays

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Bego, M. G. et al., Bewertung der angeborenen Wahrnehmung von HIV-1-infizierten CD4+ T-Zellen durch plasmozytoide dendritische Zellen unter Verwendung eines ex vivo Co-Kultursystems. J. Vis. Exp. (2015)

Dieses Video zeigt einen sekretierten embryonalen alkalischen Phosphatase-Assay unter Verwendung von HEK-Blue Interferon-α/β-Reporterzellen zur Quantifizierung der Typ-I-Interferone (IFNs), die nach Stimulation plasmazytoider dendritischer Zellen durch HIV-1-infizierte CD4+ T-Zellen freigesetzt werden.

Protokoll

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>1. Messung von bioaktivem Typ-I-IFN mit HEK-Blue IFN-α/β Reporterzellen.

Hinweis: Diese Zellen wurden durch stabile Transfektion von HEK293-Zellen mit den humanen Genen STAT2 und IRF9 erzeugt, um einen vollständig aktiven Typ I IFN-Signalweg zu erhalten. Sie enthalten auch das sezernierte Reportergen für alkalische Phosphatase (SEAP), das vom IFN-α/β-induzierbaren ISG54-Promotor kontrolliert wird. Die Stimulation dieser Zellen mit Typ-I-IFN aktiviert den JAK/STAT/ISGF3-Signalweg und induziert die Produktion von SEAP.

  1. Halten Sie HEK-Blue IFN-α/β-Zellen in DMEM, ergänzt mit 10 % FBS. Plattieren Sie sie mit einer Dichte von 50.000 Zellen pro Vertiefung in einer 96-Well-Platte mit flachem Boden und einem Endvolumen von 180 μl.
  2. Mischen Sie 220 μl PBMC (verdünnt auf 850.000 Zellen/ml) oder 220 μl plasmazytoide dendritische Zellen (pDCs) (in einer Konzentration von 100.000 bis 500.000 Zellen/ml) mit 30 μl infizierten T-Zellen (verdünnt auf 106 Zellen/ml) pro Vertiefung in einer 96-Well-Platte mit U-Boden.
  3. Inkubieren Sie die Co-Kulturen bei 37 °C und 5 % CO2 für 18-22 Stunden und überführen Sie sie dann auf eine 96-Well-Platte mit V-Boden. 5 min bei 400 x g zentrifugieren.
  4. Geben Sie 20 μl Co-Kultur-Überstand in doppelter Ausführung in jede Vertiefung. Jede Platte erfordert außerdem eine Reihe interner Standardkontrollen (humanes IFNα, Endkonzentration von 100 U/ml bis 2.500 U/ml). Die Platten bei 37 °C und 5 % CO2 18-22 h inkubieren.
  5. Bestimmen Sie die Aktivität der alkalischen Phosphatase mit der QUANTI-Blue-Lösung, die in Gegenwart des Enzyms von rosa zu violett/blau wechselt. Bereiten Sie QUANTI-Blue gemäß den Empfehlungen des Herstellers zu. Geben Sie 180 μl dieser Lösung in jede Vertiefung einer 96-Well-Platte mit flachem Boden. In jede Vertiefung geben Sie außerdem 20 μl der induzierten HEK-Blue IFN-α/β-Zellüberstände und inkubieren Sie die Platte in einem 37 °C-Inkubator, bis sich in den Standard-IFN-Kontrollvertiefungen Farbe entwickelt.
  6. Evaluierung des SEAP-Spiegels mit einem Spektralphotometer bei 620-655 nm und Bestimmung der Konzentration von Typ-I-IFN durch Extrapolation aus dem linearen Teil der IFN-Standardkurve.

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
MT4-ZellenNIH AIDS-ReagenzienprogrammNr. 120Dieses Reagenz wurde durch das NIH AIDS Reagent Program, Division of AIDS, NIAID, NIH: MT-4 von Dr. Douglas Richman erhalten.
HEK-Blu IFN-α/β ReporterzellenInvivogenHKB-IFNAB
RPMIWisent350-000-CL
DMEMWisent319-005-CL
FBSWisent080-150
PHA-LSigma-AldrichNr. O2769
CD4+ T-Zell-Isolationskit IIMyltenyiTel.: 130-091-155
Diamant-Plasmazytoid-Isolationskit für dendritische Zellen IIMyltenyiTel.: 130-097-240
QUANTI-BlauZedernlanREP-QB2
2,5 mg/ml humanes IgGSigma-AldrichI 4506

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Schlagwörter

Type I Interferon QuantificationSecreted Alkaline Phosphatase AssayHEK Blue Reporter CellsInterferon Alpha Beta PromoterSEAP Reporter GeneStandard Curve AnalysisMicroplate Reader AbsorbanceQUANTI Blue SubstrateSTAT Protein ActivationInterferon Regulatory Factor

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