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HINWEIS: Alle unten beschriebenen Arbeiten sind in einem CL2-Labor innerhalb einer mikrobiologischen Sicherheitswerkbank (MSC) der Klasse 2 gemäß den örtlichen Gesundheits- und Sicherheitsrichtlinien durchzuführen.
>1. Vorbereitung von M. bovis BCG lux auf die Infektion
- Tauen Sie einen gefrorenen 1,2-ml-Glycerinbestand (15 %) von M. bovis BCG lux auf, dem Montrealer Impfstoffstamm, der mit dem Shuttle-Plasmid pSMT1 transformiert wurde, das die luxAB-Gene von Vibrio harveyi trägt, die für das Luciferase-Enzym kodieren.
- 15 ml Middlebrook 7H9-Bouillon mit 0,2 % Glycerin, 10 % Albumin, Dextrose, Katalase (ADC)-Anreicherung und 50 μg/ml Hygromycin mit einem aufgetauten 1,2 ml-Aliquot BCG lux in einem markierten 250-ml-Erlenmeyerkolben inokulieren.
- Der Kolben wird in einen verschlossenen Biosicherheitsbehälter gegeben und bei 37 °C in einem orbitalen Schüttel-Inkubator bei 220 U/min 72 Stunden lang inkubiert (oder bis die Kultur die mittlere Phase des Wachstums erreicht).
- Überprüfen Sie das Wachstum der BCG-Lux-Kultur, indem Sie 1:10-Verdünnungen der Kultur in Luminometerröhrchen mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, pH 7,4, 0,01 M Phosphatpuffer, 0,0027 M Kaliumchlorid und 0,137 M Natriumchlorid) in zweifacher Ausfertigung vorbereiten. Wirbeln Sie vortexen, laden Sie die Luminometerröhren in das Luminometer und messen Sie die Biolumineszenz (relative Lichteinheit [RLU]/ml) mit n-Decylaldehyd als Substrat (1 % v/v in absolutem Ethanol).
Anmerkung: Das Verhältnis von RLU/koloniebildenden Einheiten (KBE) wurde zuvor auf 3:1 bestimmt, wenn BCG lux in vitro in Middlebrook 7H9-Brühe gezüchtet wurde.
- Die Kultur wird 10 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 2.175 x g zentrifugiert, um die Zellen zu pelletieren, und der Überstand wird in ein geeignetes Desinfektionsmittel mit bekannter mykobakterizider Wirkung abgegeben. Entsorgen Sie alle Kulturabfälle mit Desinfektionsmitteln, die für Mykobakterien gemäß den örtlichen Richtlinien geeignet sind.
- Waschen Sie das Zellpellet zweimal in PBS mit 0,05 % Polysorbat 80 (PBS-T), um Bakterienverklumpungen zu verhindern.
- Nach der letzten Wäsche wird der Überstand des Abfalls dekantiert, das mykobakterielle Zellpellet in PBS-T resuspendiert und die mykobakterielle Suspension mit RLU-Messungen auf die gewünschte Zelldichte verdünnt.
- Bereiten Sie zehnfache serielle Verdünnungen des Inokulums in 24-Well-Platten mit PBS-T vor. 10 μl auf Middlebrook 7H11-Agarplatten (0,5 % Glycerin, 50 μg/ml Hygromycin, 10 % Ölsäure, Albumin, Dextrose, Katalase [OADC]) in doppelter Ausführung auffüllen, um die Anzahl der Inokulum-KBE aufzuzählen.