Methodenartikel

Eine Ganzbett-Organfärbetechnik für die dreidimensionale Bildgebung der Niere

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Hasegawa, S., et al. Dreidimensionale Ganznierenfärbung mit CUBIC. J. Vis. Exp. (2022).

Dieses Video zeigt einen Assay für die Whole-Mount-Färbung von Mausnieren unter Verwendung einer Gewebereinigungsmethode namens CUBIC (Clear, Unobstructed Brain/Body Imaging Cocktails and Computational Analysis) und Immunfluoreszenzfärbung. Die Niere wird einer Gewebereinigung unterzogen, bei der die Niere entfettet, entfärbt und mit einer Brechungsindex-Anpassungslösung behandelt wird, um das Gewebe für eine optimale dreidimensionale Bildgebung transparent zu machen. Das Gewebe wird mit fluoreszenzmarkierten Antikörpern gefärbt, um sympathische Nerven und Arterien im Gewebe unter einem Lichtblattmikroskop sichtbar zu machen.

Protokoll

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Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

>1. Tierpräparation und Nierenfixierung

  1. Führen Sie die Perfusionsfixation mit den folgenden Schritten durch.
    1. Anästhesieren Sie die Maus durch Inhalation von Isofluran (3%, 2,0 l/min) und intraperitoneale Verabreichung von Medetomidinhydrochlorid (0,3 mg/kg), Butorphanoltartrat (5 mg/kg) und Midazolam (4 mg/kg) (siehe Materialtabelle).
    2. Perfundieren Sie das Tier mit 20 ml phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, pH 7,4) und 30 ml 4 % Paraformaldehyd (PFA) in Phosphatpuffer (PB) über den linken Ventrikel des Herzens.
  2. Führen Sie die Immersionsfixation unmittelbar nach der Perfusionsfixierung und der Nierenprobenahme durch.
    1. Tauchen Sie die Niere weitere 16 Stunden lang in 4 % PFA bei 4 °C und waschen Sie sie dann 2 Stunden lang (dreimal) mit PBS9 (Abbildung 1).
      Vorsicht: Formaldehyd und Paraformaldehyd sind giftige Reizstoffe. Behandeln Sie die Reagenzien in einem Abzug mit geeigneter persönlicher Schutzausrüstung.

>2. Entfärbung und Entfettung

  1. Bereiten Sie CUBIC-L (Clear, Unobstructed Brain/Body Imaging Cocktails and Computational analysis) für die Entfärbung und Entfettung vor, bestehend aus 10 Gew.-% Triton X-100 und 10 Gew.-% N-Buthyldiethanolamin (siehe Materialtabelle), gemäß zuvor veröffentlichten Berichten.
  2. Führen Sie die Entfärbung und Entfettung mit CUBIC-L durch, indem Sie die folgenden Schritte ausführen.
    1. Tauchen Sie die fixierte Niere in 7 ml 50 % (v/v) CUBIC-L (1:1 Gemisch aus Wasser und CUBIC-L) in ein 14 mL Röhrchen mit rundem Boden (siehe Materialtabelle) unter leichtem Schütteln bei Raumtemperatur für 6 Stunden (Abbildung 2A). Tauchen Sie es dann 5 Tage lang in 7 mL CUBIC-L in ein 14-ml-Röhrchen mit rundem Boden und schütteln Sie es leicht bei 37 °C.
    2. Aktualisieren Sie während dieses Vorgangs jeden Tag den CUBIC-L. Nach dem Entfärbungs- und Entfettungsprozess waschen Sie die Niere 2 h lang (dreimal) mit PBS bei Raumtemperatur (Abbildung 1). Verwenden Sie für die Probenhandhabung einen Dispensierlöffel (Abbildung 2B).

>3. Ganzfassungs-Immunfluoreszenzfärbung

  1. Bereiten Sie die Färbepuffer vor.
    1. Bereiten Sie den Färbepuffer für Primärantikörper vor, indem Sie 0,5 % (v/v) Triton X-100, 0,5 % Kasein in PBS und 0,05 % Natriumazid mischen.
    2. Bereiten Sie den Färbepuffer für Sekundärantikörper vor, indem Sie 0,5 % (v/v) Triton X-100, 0,1 % Kasein in PBS und 0,05 % Natriumazid mischen.
  2. Führen Sie die Färbung mit Primärantikörpern durch.
    1. Immunfärbung der entfetteten Niere mit Primärantikörpern (1:100 oder 1:200, siehe Materialtabelle) im Färbepuffer bei 37 °C unter leichtem Schütteln für 7 Tage.
      Anmerkung: Die Menge des Färbepuffers, die für eine Niere benötigt wird, beträgt 500-600 μl (Abbildung 2C).
    2. Waschen Sie die Niere 1 Tag lang mit 0,5 % (v/v) Triton X-100 in PBS (PBST) bei Raumtemperatur (Abbildung 1).
  3. Führen Sie die Färbung mit Sekundärantikörpern durch.
    1. Immunfärbung der Niere mit Sekundärantikörpern (1:100 oder 1:200, siehe Materialtabelle) im Färbepuffer bei 37 °C unter leichtem Schütteln für 7 Tage. Waschen Sie die Niere 1 Tag lang mit PBST bei Raumtemperatur (Abbildung 1).
    2. Tauchen Sie die Niere nach der Fixierung 3 h lang in 1 % Formaldehyd in PB (1:36 Mischung aus 37 % Formaldehyd und PB) und waschen Sie sie 6 h lang mit PBS bei Raumtemperatur (Abbildung 1).

>4. Anpassung des Brechungsindex (RI)

  1. CUBIC-R+ vorbereiten.
    1. CUBIC-R wird durch Mischen von 45 Gew.-% 2,3-Dimethyl-1-phenyl-5-pyrazolon/Antipyrin und 30 Gew.-% Nicotinamid gemischt (siehe Materialtabelle).
    2. Bereiten Sie CUBIC-R+ für die Anpassung des Brechungsindex (RI) vor, indem Sie 0,5 v% N-Buthyldiethanolamin zu CUBIC-R gemäß den zuvor veröffentlichten Berichten hinzufügen.
  2. Führen Sie den RI-Abgleich durch.
    1. Tauchen Sie die Niere in 7 ml 50 % (v/v) CUBIC-R+ (1:1-Mischung aus Wasser und CUBIC-R+) in ein 14 ml-Röhrchen mit rundem Boden und schütteln Sie es 1 Tag lang bei Raumtemperatur leicht. Tauchen Sie es dann in 7 mL CUBIC-R+ in ein 14 mL Röhrchen mit rundem Boden und schütteln Sie es 2 Tage lang bei Raumtemperatur (Abbildung 1).
      Anmerkung: Obwohl die Niere zu Beginn des RI-Matchings in 50 % CUBIC-R+ schwimmt, sinkt sie ab und wird am Ende des Prozesses in CUBIC-R+ transparent (Abbildung 2D).

>5. Bilderfassung und -rekonstruktion

  1. Tauchen Sie die RI-angepasste Niere während der Bildaufnahme (RI = 1,555) in eine Mischung aus Silikonöl (RI = 1,555) und Mineralöl (RI = 1,467) (55:45) (Abbildung 3).
  2. Nehmen Sie 3D-Bilder der gesamten Niere mit einem speziell angefertigten Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskop auf (siehe Materialtabelle). Sammeln Sie alle Rohbilddaten in einem 16-Bit-TIFF-Format. Visualisieren und erfassen Sie die 3D-gerenderten Bilder mit der Bildanalysesoftware (Imaris, siehe Materialtabelle).

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Gewebereinigung und Immunfluoreszenzfärbung mit ganzer Halterung. Die Gewebereinigung mit CUBIC ist ein zweistufiger Prozess: Delipidisierung (CUBIC-L) und Brechungsindexanpassung (RI) (CUBIC-R+). Die Whole-Mount-Färbung wird nach dem Entfettungsprozess durchgeführt. Maßstabsleiste = 10 mm. Das Bild ist eine Reproduktion von Hasegawa et al.

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Offenlegungen

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Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
14 mL PP-Reagenzglas mit rundem Boden und hoher KlarheitFalke352059Gewebereinigung, Färben, Waschen
2,3-Dimethyl-1-phenyl-5-pyrazolon/AntipyrinChemische Industrie in TokioNr. D1876CUBIC-R+
37%-Formaldehyd-LösungNacalai TesqueNr. 16223-55Nach der Fixierung
4%-Paraformaldehyd-Phosphat-PufferlösungNacalai TesqueTel.: 09154-85Fixierung der Niere
Alexa Flour 555-konjugierter Esel-Anti-Schaf-IgG-AntikörperInvitrogenNr. A-21436Sekundärer Antikörper (1:100)
Alexa Flour 647-konjugierter Esel Anti-Kaninchen IgG AntikörperInvitrogenNr. A-31573Sekundärer Antikörper (1:200)
Anti-Aquaporin 2 (AQP2) AntikörperAbcam (EnglischAB199975Primärer Antikörper (1:100)
Anti-Podocin-AntikörperSigma-AldrichNr. P0372Primärer Antikörper (1:100)
Anti-Natrium-Glukose-Cotransporter 2 (SGLT2)-AntikörperAbcam (EnglischArtikel-Nr.: ab85626Primärer Antikörper (1:100)
Anti-Tyrosin-Hydroxylase (TH)-AntikörperAbcam (EnglischAB113Primärer Antikörper (1:100)
Anti-α-Aktin-Antikörper (α-SMA)Abcam (EnglischAB5694Primärer Antikörper (1:200)
Blocker Kasein in PBSThermo Fisher ScientificArtikel-Nr.: 37528Puffer zum Färbemittel
Butorphanol-TartratMeijiArtikel-Nr.: 5526Anästhetikum
C57BL/6NJclNippon Bio-Supp.CenterN/ABelastung der Maus
ImarisBitplaneN/ASoftware für die bildgebende Analyse
Makro-Zoom-MikroskopOlympMVX10Die Beobachtungseinheit des maßgefertigten Mikroskops
Medetomidin-HydrochloridKyoritsu-Seiyaku8656Anästhetikum
MidazolamSANDOZ27803229Anästhetikum
MineralölSigma-AldrichM8410Immersionsöl
N-ButhyldiethanolaminChemische Industrie in TokioNr. B0725CUBIC-L, CUBIC-R+
NicotinamidChemische Industrie in TokioNr. N0078CUBIC-R+
Polyethylenglykol mono-p-isooctylphenylether/Triton X-100Nacalai TesqueNr. 12967-45CUBIC-L, PBST
Silikonöl HIVAC-F4Shin-Etsu Chemikalie50449832Immersionsöl
NatriumazidWakoNr. 195-11092Puffer zum Färbemittel
) ) ) ) kg

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Schlagwörter

Kl rung von NierengewebeCUBIC Methodeimmunfluoreszierende F rbungLichtblattmikroskopieF rbung sympathischer NervenArterienvisualisierungBrechungsindexanpassungGewebetransparenz

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