>1. Sicherheitsaspekte
- Das Personal sollte persönliche Schutzausrüstung (PSA) verwenden.
- Behandeln Sie den Erreger und die Makrophagen in einer biologischen Sicherheitswerkbank der Klasse II.
2. Präparation von Makrophagen
- Kultivieren Sie eine murine Makrophagen-Zelllinie, RAW 264.7, in einem Gewebekolben mit 10 ml Roswell Park Memorial Institute-1640 (RPMI-1640) Medium, ergänzt mit 20 mg/ml Streptomycin, 2 mM L-Glutamin, 20 μl/ml Penicillin und 10 % fötalem Rinderserum (FBS).
- Den Kolben in einen 5%igen Kohlendioxid (CO 2)-Inkubator stellen, der auf 37 °C eingestellt ist, bis ein Konfluationsgrad von 80 % erreicht ist.
- Kratzen Sie die Zellen vorsichtig mit einem Zellschaber ab.
- Übertragen Sie die suspendierten Zellen in ein 15-ml-Zentrifugenröhrchen.
- Verwenden Sie den Trypanblau-Farbstoff, um die Zellviabilität zu bestimmen.
Anmerkung: Ein Viability Score über 85% wird bevorzugt.
Verwenden Sie ein Hämozytometer, um die Zellkonzentration von Makrophagen auf 1 × 105 Zellen/ml einzustellen, indem Sie eine 10-ml-Lösung aus frischem, sterilem RPMI-1640-Medium verwenden. Geben Sie eine 100-μl-Suspension der Zellen in Vertiefungen einer sterilen 96-Well-Mikrotiterplatte mit flachem Boden. Inkubieren Sie die Platte über Nacht in einem 5 % CO2 -Inkubator bei 37 °C.
Anmerkung: Das über Nacht verbrauchte Medium sollte vor der Verwendung aspiriert und durch 100 μl frisches, steriles RPMI-1640-Medium ersetzt werden.
>3. Präparation von Kryptokokkenzellen
- Den Testorganismus mit einer Impfschlaufe auf eine sterile Hefe-Malz-Extrakt (YM)-Agarplatte ausstreichen.
- Inkubieren Sie die Agarplatte bei 30°C für 48 h.
- Beimpfen Sie mit einer Impfschlaufe eine Schlinge voller Zellen in 100 ml Brühe auf Hefestickstoffbasis (YNB), die mit 4 % Glukose ergänzt ist.
- Züchten Sie die Zellen (Vorkultur) über Nacht unter Schütteln bei 160 U/min bei 30°C.
- Am nächsten Tag werden 0,1 ml der Vorkultur in frische YNB-Bouillon (Hauptkultur) geimpft und die Zellen bis zur mittleren exponentiellen Phase (unter gleichen Kultivierungsbedingungen) wachsen gelassen.
- Waschen Sie die Zellen zweimal mit Phosphatpufferlösung (PBS).
- Standardisieren Sie die Zellen mit einem Hämozytometer auf 1 x 105 in PBS.
>4. Färbung von Kryptokokkenzellen mit dem Phagozytose-Farbstoff
- Geben Sie 999 μl der Zellen in ein 1,5 mL Kunststoffröhrchen.
- Geben Sie 1 μl des grünen Zymosan-A-Farbstoffs pHrodo in dasselbe Röhrchen.
- Inkubieren Sie die Zellen 1 h lang bei Raumtemperatur im Dunkeln unter langsamem Rühren, um mit dem Fleck zu reagieren.
- Waschen Sie die Zellen am Ende der Inkubationszeit dreimal mit PBS.
- Geben Sie eine 100-μl-Zellsuspension in Vertiefungen, die ausgesäte Makrophagen enthalten.
>5. Zubereitung von Arzneimitteln
- Bereiten Sie eine Stamm-Aspirinlösung mit 1 mg Aspirin in 1000 ml absolutem Ethanol bis zu einer Endkonzentration von 1000 μg/ml vor.
- Verdünnen Sie die Verbindung weiter in RPMI-1640-Medien, um die gewünschten Arzneimittelkonzentrationen zu erreichen.
Anmerkung: Die endgültige Ethanolmenge in RPMI-1640-Medien sollte 1 % nicht überschreiten. Bereiten Sie eine Stammlösung von Ibuprofen mit 1 mg Ibuprofen in 1000 ml Dimethylsulfoxid (DMSO) vor. Verdünnen Sie die Verbindung weiter in RPMI-1640-Medien, um die gewünschten Arzneimittelkonzentrationen zu erreichen.
Anmerkung: Die endgültige DMSO-Menge in RPMI-1640-Medien sollte 1 % nicht überschreiten. Bereiten Sie eine 100-μl-Lösung der vorbereiteten Arzneimittel in vierfacher Konzentrationsmenge vor und geben Sie sie in geeignete Vertiefungen, die ausgesäte Makrophagen und Kryptokokkenzellen enthalten.
>6. Die Wirkung von Chemo-sensibilisierenden Mitteln auf die Makrophagen-Phagozytose
- Inkubieren Sie die Platten mit co-kultivierten Zellen in Gegenwart von chemosensibilisierenden Mitteln, Aspirin oder Ibuprofen in einem 5%igen CO2 -Inkubator bei 37 °C für 2 h oder 6 h.
- Am Ende der Inkubationszeit ist die induzierte Fluoreszenz zu messen (z. B. 492 nm und em: 538 nm).
Anmerkung: Die pHrodo-Färbung fluoresziert nur in sauren Umgebungen, wie z. B. im Inneren des Phagosoms.