>1. Biotinylierung der BCG-Zelloberfläche
- BCG in Middlebrook 7H9 Bouillon mit 10 % OADC (Ölsäure, Albumin und Dextroselösung) und 0,05 % Tween 80 bei 37 °C auf einer Shaker-Plattform bei 50 U/min anbauen, bis OD = 0,5-1,
HINWEIS: BCG ist ein Erreger der Biosicherheitsstufe 2 und alle Experimente, die BCG betreffen, sollten in einer Biosicherheitswerkbank mit geeigneter persönlicher Schutzausrüstung durchgeführt werden.
- 109 BCG 3-mal mit 500 μl eiskaltem, endotoxinfreiem PBS plus 0,1 % Tween80 (PBST) (pH 8,0) waschen. Suspendieren Sie das BCG-Pellet in sterilem, endotoxinfreiem PBS.
- Bereiten Sie unmittelbar vor Gebrauch 1 ml 10 mM Sulfo-NHS SS Biotin in steril gefiltertem Wasser vor.
- Inkubieren Sie Bakterien mit 1 ml 0,5 mM Sulfo-NHS SS Biotin bei Raumtemperatur für 30 Minuten.
- Markierte Bakterien 3-mal mit 500 μl eiskaltem PBST waschen, um nicht umgesetztes Biotinylierungsreagenz zu entfernen.
- Suspension des Pellets in 1 mL PBST.
>2. Bindung des monomeren Avidin-Fusionsproteins an die biotinylierte BCG-Oberfläche
- Mischen Sie 5 x 108 biotinylierte BCG mit Avi-Protein (10 μg/mL endgültig in PBS-T) für 1 h bei Raumtemperatur auf der Shaker-Plattform.
- Waschen Sie die Bakterien 3 Mal mit 500 μL eiskaltem PBST.