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Methodenartikel

Analyse der Reaktivierung neuraler Stammzellen in kultivierten Drosophila-Hirnexplantaten

812 Aufrufe

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Naomi Keliinui, C., et al. Reaktivierung neuronaler Stammzellen in kultivierten Drosophila-Gehirnexplantaten. J. Vis. Exp. (2022).

Dieses Video zeigt ein Protokoll zur Identifizierung exogener Faktoren, die die Reaktivierung von Drosophila-neuralen Stammzellen des Gehirns aus ihrem Ruhezustand initiieren. Frisch geschlüpfte Larven werden präpariert, um ihre Gehirne zu isolieren, die dann mit oder ohne Testhormon in Medien kultiviert werden, um das Potenzial des Hormons zur Reaktivierung und Proliferation von neuralen Stammzellen zu bewerten.

Protokoll

>1. Nährmedien und Werkzeugvorbereitung

  1. Bank und Arbeitsbereich mit 70% Ethanol besprühen und trocknen lassen.
  2. Besprühen Sie die Sezierwerkzeuge, die Pinzette und zwei Uhrenschalen aus Glas mit 70% Ethanol und lassen Sie sie auf der Bank trocknen.
  3. Stellen Sie das ergänzte Schneider-Medium (SSM, Tabelle 1) her und legen Sie es auf Eis.
  4. Pipettieren Sie jeweils 1 ml SSM in die Glasschalen.
  5. Übertragen Sie die frisch geschlüpften Larven mit einer Mikropipette mit steriler Spitze von der PBS-Platte in die SSM in der ersten Glasuhrenschale. Übertragen Sie die frisch geschlüpften Larven mit einer Mikropipette mit steriler Spitze in das SSM in die zweite Glasuhrenschale.

2. Sektionen und Gehirnkulturen

  1. Sobald sich die Larven in der zweiten gläsernen Uhrenschale mit SSM befinden, sezieren Sie die Gehirne mit einer Pinzette und einem Präpariermikroskop aus den Larven. Passen Sie die Vergrößerung nach Bedarf an.
  2. Fassen Sie mit einer Pinzette die Mundhaken und mit der anderen den Körper vorsichtig auf halber Höhe und ziehen Sie in die entgegengesetzte Richtung (Abbildung 1), um die Larve in zwei Teile zu spalten.
    Anmerkung: Das Gehirn befindet sich direkt hinter den Mundhaken. Beachten Sie, dass es andere Gewebe geben kann, die das Gehirn umgeben. Seien Sie sehr vorsichtig, wenn Sie dieses Gewebe entfernen, da dies zu einer Schädigung des Gehirns führen kann.
  3. Sobald 15-20 Gehirne präpariert wurden, geben Sie 1 ml SSM in eine Vertiefung eines sterilen 12-Well-Kulturtabletts. Übertragen Sie die frisch präparierten Gehirne mit einer Mikropipette und einer sterilen Spitze in das SSM (Abbildung 2A).
  4. Legen Sie die Gehirne in das SSM-Medium in das 12-Well-Kulturtablett für 24 Stunden bei 25 °C in einen Inkubator (Abbildung 2A).

Tabelle 1: Rezept für die Herstellung von ergänzten Schneider'schen Medien (SSM). In der Tabelle ist das Volumen aller Zutaten aufgeführt, die für die Zubereitung von 5 ml SSM erforderlich sind.

Zutat (Ausgangskonzentration)Zur Herstellung von 5 mLEndkonzentration
Schneiders Drosophila media3,89 mL
Fötales Rinderserum (100%)500 μL<10 %
Glutamin (200 mM)500 μLca. 20 mM
Penicillin (5000 Einheiten/ml), Streptomycin (50.000 μg/ml)100 μL1000 U/ml Pen, 1 mg/ml Streptokokken
Insulin (10 mg/ml)10 μL0,02 mg/ml
Glutathion (50 mg/ml)5 μL0,05 mg/ml
In einer sterilen Haube mit steriler Technik alle Zutaten zusammen in ein konisches 14-ml-Röhrchen geben. Legen Sie es bis zur Verwendung auf Eis.

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Ergebnisse

figure-results-1
Abbildung 1: Drosophila-Larven in einer gläsernen Uhrenschale mit SSM. Die Pinzette wird für die Dissektion richtig positioniert. Die Lage des Larvengehirns (dunkelgrau) befindet sich hinter den Mundhaken (schwarz), und beide sind im Inneren der Larve zu sehen.

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
10 μL PipettenspitzenDenville SciNr. P2102
1000 μl PipettenspitzenDenville SciP2103-N
1000 μL PipettiererGilsonP1000
24-Well-Multiwell-KulturplattenFisher ScientificTel.: 50-197-4477
35 mm PetrischalenFisher ScientificTel.: 08-757-100AZutaten für die Traubenplatte
PräpariermikroskopZeissStemi 2000
Ethanol 200 proof (100%), Decon Labs, 1 Gallone FlascheFisher ScientificNr. 2701Wird verwendet, um die Larven vor dem 24-stündigen Halten im Kulturmedium abzuwaschen
Fötales Rinderserum (10%)SigmaNr. F4135-100MLErgänzung für Zellkulturmedien.
Feine Pinzette zum SezierenWerkzeuge für die FeinwissenschaftNr. 11295-20Regeln, die bei der Sektion verwendet werden. Sie funktionieren am besten, wenn sie geschärft sind.
Sezierschale aus Glas (3 Vertiefungen)Diese sind nicht mehr verfügbar
GlutathionSigmaNr. G6013Bietet oxidativen Schutz während der Zellkultur.
BrutkastenThermo Fisher ScientificStellt sicher, dass Temperatur, Luftfeuchtigkeit und Lichteinwirkung während des gesamten Experiments genau gleich sind.
InsulinSigmaNr. I0516Unabhängige Variable des Experiments
Laminar-Flow-HaubeZur Aliquotierung von Nährmedien
L-GlutaminSigmaNr. G7513Bietet Unterstützung während der Zellkultur
Stift-StreptokokkenSigmaNr. 4458-100mlAntibiodike, die verwendet werden, um eine bakterielle Kontamination von Zellen während der Kultur zu verhindern.
Phosphat-Puffer, pH7,4Hergestellt im HausHergestellt im HausLösungsmittel, das zum Waschen des Gehirns nach den Fixier- und Färbeschritten verwendet wird
pickenWerkzeuge für die FeinwissenschaftArtikel-Nr.: 10140-01Wird verwendet, um Larven von der Traubenplatte zu pflücken
Schneiders NährmediumLebenstechnik21720024Enthält Nährstoffe, die den Zellen beim Wachstum und bei der Vermehrung helfen
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