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Methodenartikel

Dissektion und Montage von Explantaten aus Fruchtfliegenlarven

1.7K Aufrufe

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Sheng, C., et al. Zeitraffer-Live-Bildgebung und Quantifizierung der Dynamik schneller dendritischer Äste in sich entwickelnden Drosophila-Neuronen. J. Vis. Exp. (2019).

Dieses Video zeigt das Sezieren und Montieren von Hirnexplantaten von Drosophila-Larven. Das zentrale Nervensystem (ZNS), das an den Augenscheiben befestigt ist, wird aus den Larven extrahiert und dann in einer physiologischen Kochsalzlösung auf einen Objektträger montiert.

Protokoll

Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

>1. Präparieren und Montieren von Larven-Hirnexplantaten

  1. Präparieren Sie das Gehirn der Larven in der physiologischen externen Kochsalzlösung (120 mM NaCl, 4 mM MgCl2, 3 mM KCl, 10 mM NaHCO3, 10 mM Glukose, 10 mM Saccharose, 5 mM N-[Tris(hydroxymethyl)methyl]-2-aminoethansulfonsäure (TES), 10 mM 4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazinethensulfonsäure (HEPES), 2 mM Ca2+, pH 7,2) unter einem Dissektionsmikroskop (4,5-fache Vergrößerungsleistung) mit zwei Paaren #5 Standard-Dissektionszange (11 cm). Verwenden Sie eine Pinzette, um den Larvenkörper an Ort und Stelle zu halten, und die andere, um das Gehirn vorsichtig zu präparieren. Schonen Sie die Augenscheiben, die Hirnlappen und den ventralen Nervenstrang. Entfernen Sie anhaftende Muskeln, um die Bewegungen der Probe während der Bildgebung zu minimieren.
  2. Bereiten Sie einen Objektträger (25 x 75 x 1,0 mm3) vor und ziehen Sie mit einer Spritze eine quadratische Kammer mit Vakuumfett
  3. .
  4. 20 μl externe Kochsalzlösung in die quadratische Kammer mit Fettsperren geben.
  5. Übertragen Sie die präparierten Larvenhirne mit einer Pinzette in die Kammer auf dem Objektträger. Passen Sie die Position des Gehirns unter dem Präparierbereich an, um sicherzustellen, dass die Rückenseite nach oben zeigt.
  6. Decken Sie die Kammer mit einem Glasdeckglas (22 x 22 x 0,15 mm3) ab. Das Larvenhirn wird nun auf dem Objektträger in einer Kammer montiert, die mit der externen Kochsalzlösung gefüllt ist (Abbildung 1B).
    Anmerkung: Durch sanften Druck auf das Deckglas wird das Gehirn eingeengt und das Abdriften der Probe in der anschließenden Bildgebungssitzung reduziert.

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Ergebnisse

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Abbildung 1: Arbeitsablauf des Protokolls zur Bildgebung und Quantifizierung der Dendritendynamik. (A) Das Protokoll umfasst sechs Schritte, die die Probenvorbereitung, die Bildentnahme, die Bildverarbeitung und die halbautomatische Quantifizierung der Dendritendynamik abdecken. (B) Ein schematisches Diagramm, das eine bildgebende Kammer zeigt, die ein Larven-H...

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Hochvakuum-FettDow CorningArtikel-Nr.: 79751-30
Mikroskop-DeckglasFisher Scientific12-544-E
Superfrost Plus ObjektträgerFisher ScientificArtikel-Nr.: 12-550-15
reagenzien
Traubenzucker
HEPES
Kcl
MgCl2
NaCl
NaHCO3
Pbs
Saccharose
Tes

Tags

Drosophila LarvengehirnPr paration von Gehirnexplantatenzentrales NervensystemAnheftung der AugenscheibeDissektion mit Pinzettenphysiologische Kochsalzl sungMontage auf Objekttr gernVakuumfettkammerVersiegelung mit DeckglasOrientierung der Dorsalseite