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Methodenartikel

Bewertung der Interaktionen zwischen glutamatergen Neuronen und Gliomzellen in einer Co-Kultur

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8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Fuchs, Q. et. al., Co-Kultur von glutamatergen Neuronen und pädiatrischen hochgradigen Gliomzellen in mikrofluidischen Geräten zur Beurteilung elektrischer Wechselwirkungen. J. Vis. Exp. (2021)

Dieses Video zeigt die Bewertung der neuronalen elektrischen Aktivität in einer Co-Kultur von hiPSC-abgeleiteten kortikalen glutamatergen Neuronen und Gliomzellen unter Verwendung eines mikrofluidischen Geräts mit Multielektrodenarrays.

Protokoll

Alle Verfahren, die die Probenentnahme beinhalten, wurden in Übereinstimmung mit den IRB-Richtlinien des Instituts durchgeführt.

>1. Protokoll der Kokultur

  1. Passen Sie den Aussaattag und die Konzentration für UW479- und BT35-Zelllinien so an, dass 80 % der konfluenten Zellen erreicht werden, wenn die Co-Kultur beginnen sollte, was einer Kulturdauer von 21 Tagen für glutamaterge Neuronen entspricht.
  2. Trypsinisieren Sie UW479- und BT35-Zellen und säen Sie sie auf die glutamatergen Neuronen in jedem speziellen mikrofluidischen Gerät (mit einer Zieldichte von 900 Zellen/mm2 für jeden Zelltyp), bevor Sie die pädiatrischen hochgradigen Gliome (pHGG)-Zellen in das mikrofluidische Gerät mit gereiften glutamatergen Neuronen säen.
  3. Die Co-Kulturen werden 2 Tage lang in einer kontrollierten Umgebung (37 °C, 5 % CO2) mit dem glutamatergen Neuron Day11 und dem in Tabelle 1 beschriebenen Medium aufbewahrt.
  4. Zählen Sie pHGG-Zellen anhand der mikroskopischen Bilder, die mit einer Bildanalysesoftware analysiert wurden, um ihre Lebensfähigkeit zu beurteilen. Berechnen Sie den Prozentsatz der Zellen.
    HINWEIS: Verwenden Sie die folgende Formel: 100 - ((Anzahl der Zellen bei D23 / Anzahl der Zellen bei D21) x 100).

>2. Elektrophysiologische Aufzeichnung

  1. Führen Sie die elektrophysiologische Aufzeichnung mit einem kommerziellen System und kommerziell erhältlicher Software durch.
    Anmerkung: Die Experimente wurden mit einem Multielektrodenarray (MEA) durchgeführt, das aus Elektroden mit einem Durchmesser von 30 μm und einem Abstand von 100 μm bestand.
  2. Durchführung einer ersten elektrophysiologischen Aufzeichnung an glutamatergen Neuronen an D21 vor der Aussaat von pHGG-Zellen. Nutzen Sie die differenzierten glutamatergen Neuronen als Kontrolle und kultivieren Sie sie allein parallel zur Co-Kultur. Führen Sie eine zweite Aufzeichnung für beide Bedingungen durch, wie im nächsten Schritt mit der Nummer 3 beschrieben.
  3. Führen Sie eine zweite elektrophysiologische Aufzeichnung bei D23 durch (nach 2 Tagen Co-Kultur).

Tabelle 1: Zusammensetzung von Kulturmedien für hiPS-abgeleitete glutamaterge Neuronen.

KomponentenSämediumD4 mittelD7 mittelD11 und weiter mittel
DMEM/F-12 Mittel0,5-fach0,25-fach0,125-malØ
Neurobasales Medium0,5-fach0,25-fach0,125-malØ
BrainPhys MediumØ0,5-fach0,75-mal1x
SM1 Nachtrag1x1x1x1x
N2 Ergänzung-A1x1x1x1x
Ala-Gln (GlutaMax)0,5 mM0,5 mM0,5 mM0,5 mM
BDNF10 ng/ml10 ng/ml10 ng/ml10 ng/ml
GDNF10 ng/ml10 ng/ml10 ng/ml10 ng/ml
TGF-β11 ng/ml1 ng/ml1 ng/ml1 ng/ml
Geltrex30 μg/mlØØØ
Ergänzung zur Aussaat1xØØØ
Tag 4 ZuschlagØ1xØØ

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
256MEA100/30iR-ITO-ohnemcs256MEA100/30iR-ITO-ohne
40 μm Sonde für ZepterzählerDutscherArtikel-Nr.: 53750
60 μm Sonde für ZepterzählerDutscherNr. 51999
Ala -Gln (GlutaMAX)SigmaNr. G8541
Biologische Sicherheitswerkbank der Klasse IIThermo ScientificHERASafe Typ KS12
Kortikale glutamaterge NeuronenBrainXellBX-0300
DMEM/F12 MittelSigmaNr. D8437
DPBS 1XDutscherNr. L0615-500
EasYFlaskTM Zellkulturflaschen 75cm3Nunc156499
Fötales Rinderserum (FBS)Dutscher500105
GDNFPeprotechNr. 450-10
GeltrexLebenstechnologienA1413201
Menschliches BDNFPeprotechNr. 450-02
BrutkastenMemmertIC0150med
MEA2100mcsArtikel-Nr.: 181205-MEA2100-11240
Mikropipette P10SchneidermuskelLH-729020
Mikropipette P100SchneidermuskelLH-729050
Mikropipette P1000SchneidermuskelLH-729070
Mikropipette P200SchneidermuskelLH-729060
Mikroröhrchen Eppendorf 1,5 ml Safe-LockDutscherArtikel-Nr.: 33290
Multichannel-Experimentatormcs-
N2 Ergänzung-AStammzellen7152
Neurobasales MediumLebenstechnologien21103049
Neurocult SM1 neuronales NahrungsergänzungsmittelStammzellenNr. 5711
Nicht-essentielle Aminosäuren (NEAA) ohne L-GlutaminDutscherX0557-100
Pipeteur Pipet-Aid EP GravityDrummond4000202/4038202
Pipette für Zellkultur 10 mL Falcon®Dutscher357551
Pipette für Zellkultur 5 mL Falcon®Dutscher357543
Plaque chauffante (CultureTemp)Belart370151000
Poly-D-LysinSigmaNr. P6407
Primovert MikroskopZeissArtikel-Nr.: 415510-1100-000
kg

Tags

Pädiatrische GliomzellenMikrofluidik-BauteilMultielektroden-ArrayKokultursystemelektrophysiologische Ableitungneuronale AktivitätGlutamatfreisetzungKalziumeinstromZellviabilität