Alle Verfahren, die die Probenentnahme beinhalten, wurden in Übereinstimmung mit den IRB-Richtlinien des Instituts durchgeführt.
>1. Protokoll der Kokultur
- Passen Sie den Aussaattag und die Konzentration für UW479- und BT35-Zelllinien so an, dass 80 % der konfluenten Zellen erreicht werden, wenn die Co-Kultur beginnen sollte, was einer Kulturdauer von 21 Tagen für glutamaterge Neuronen entspricht.
- Trypsinisieren Sie UW479- und BT35-Zellen und säen Sie sie auf die glutamatergen Neuronen in jedem speziellen mikrofluidischen Gerät (mit einer Zieldichte von 900 Zellen/mm2 für jeden Zelltyp), bevor Sie die pädiatrischen hochgradigen Gliome (pHGG)-Zellen in das mikrofluidische Gerät mit gereiften glutamatergen Neuronen säen.
- Die Co-Kulturen werden 2 Tage lang in einer kontrollierten Umgebung (37 °C, 5 % CO2) mit dem glutamatergen Neuron Day11 und dem in Tabelle 1 beschriebenen Medium aufbewahrt.
- Zählen Sie pHGG-Zellen anhand der mikroskopischen Bilder, die mit einer Bildanalysesoftware analysiert wurden, um ihre Lebensfähigkeit zu beurteilen. Berechnen Sie den Prozentsatz der Zellen.
HINWEIS: Verwenden Sie die folgende Formel: 100 - ((Anzahl der Zellen bei D23 / Anzahl der Zellen bei D21) x 100).
>2. Elektrophysiologische Aufzeichnung
- Führen Sie die elektrophysiologische Aufzeichnung mit einem kommerziellen System und kommerziell erhältlicher Software durch.
Anmerkung: Die Experimente wurden mit einem Multielektrodenarray (MEA) durchgeführt, das aus Elektroden mit einem Durchmesser von 30 μm und einem Abstand von 100 μm bestand.
- Durchführung einer ersten elektrophysiologischen Aufzeichnung an glutamatergen Neuronen an D21 vor der Aussaat von pHGG-Zellen. Nutzen Sie die differenzierten glutamatergen Neuronen als Kontrolle und kultivieren Sie sie allein parallel zur Co-Kultur. Führen Sie eine zweite Aufzeichnung für beide Bedingungen durch, wie im nächsten Schritt mit der Nummer 3 beschrieben.
- Führen Sie eine zweite elektrophysiologische Aufzeichnung bei D23 durch (nach 2 Tagen Co-Kultur).
Tabelle 1: Zusammensetzung von Kulturmedien für hiPS-abgeleitete glutamaterge Neuronen.
| Komponenten | Sämedium | D4 mittel | D7 mittel | D11 und weiter mittel |
| DMEM/F-12 Mittel | 0,5-fach | 0,25-fach | 0,125-mal | Ø |
| Neurobasales Medium | 0,5-fach | 0,25-fach | 0,125-mal | Ø |
| BrainPhys Medium | Ø | 0,5-fach | 0,75-mal | 1x |
| SM1 Nachtrag | 1x | 1x | 1x | 1x |
| N2 Ergänzung-A | 1x | 1x | 1x | 1x |
| Ala-Gln (GlutaMax) | 0,5 mM | 0,5 mM | 0,5 mM | 0,5 mM |
| BDNF | 10 ng/ml | 10 ng/ml | 10 ng/ml | 10 ng/ml |
| GDNF | 10 ng/ml | 10 ng/ml | 10 ng/ml | 10 ng/ml |
| TGF-β1 | 1 ng/ml | 1 ng/ml | 1 ng/ml | 1 ng/ml |
| Geltrex | 30 μg/ml | Ø | Ø | Ø |
| Ergänzung zur Aussaat | 1x | Ø | Ø | Ø |
| Tag 4 Zuschlag | Ø | 1x | Ø | Ø |