Methodenartikel

Modellierung der Netzhautdegeneration und -regeneration im Zebrafisch mit Hilfe einer fokalen Laserverletzung

8. Juli 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Quelle: Conedera, F. M., et al. Müller Gliazellaktivierung in einem laserinduzierten retinalen Degenerations- und Regenerationsmodell im Zebrafisch. J. Vis. Exp. (2017).

Dieses Video zeigt ein Verfahren zur Induktion von Netzhautdegeneration bei erwachsenen Zebrafischen mittels Laserverletzung. Der Laser zielt auf Photorezeptorzellen in der Netzhaut ab und löst den Zelltod und einen degenerativen Prozess aus. Diese Schädigung aktiviert Müller-Gliazellen (MG), was zu ihrer Dedifferenzierung in Stammzellvorläuferzellen führt, die die Regeneration der Netzhaut unterstützen.

Protokoll

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom lokalen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem JoVE Veterinärprüfungsausschuss überprüft.

1. Tiere

  1. Bewahren Sie den Stamm TgBAC (gfap:gfap-GFP) Zebrafisch 167 (AB) im Alter zwischen 6 und 9 Monaten unter Standardbedingungen in Wasser mit einer Temperatur von 26,5 °C und einem Hell-Dunkel-Zyklus von 14/10 Stunden auf.

>2. Reversible systemische Anästhesie

  1. Bereiten Sie die Stammlösung aus Ethyl-3-aminobenzoat-Methansulfonatsalz (Tricain) vor, indem Sie 400 mg Tricainpulver in 97,9 ml Aquarienwasser und 2,1 ml 1 M gepufferte Tris-Kochsalzlösung (TBS) auflösen. Mit 1 M Tris (pH 9) auf pH 7,0 einstellen und bei 4 °C im Dunkeln bis zu einem Monat lagern.
    Anmerkung: Tricain sollte in Wasser zubereitet werden, das den natürlichen Lebensbedingungen des Tieres entspricht, vorzugsweise sollte originales Aquarienwasser verwendet werden.
  2. Verdünnen Sie die Stammlösung in Aquarienwasser auf 1:25 und verwenden Sie sie sofort.
  3. Legen Sie den Zebrafisch in eine 10 cm große Petrischale mit 50 ml Anästhesielösung, bis er unbeweglich wird und nicht mehr auf äußere Reize reagiert (ca. 2 - 5 Minuten, je nach Gewicht und Alter).
  4. Übertragen Sie jeden Fisch von Hand in einen speziell angefertigten Silikonstifthalter für die Laserbehandlung (Abbildung 1A).
    Vorsicht! Die Fische können außerhalb des Tanks nur bis zu 10 Minuten betäubt bleiben.
  5. Um die Anästhesie nach der Behandlung und/oder Bildgebung rückgängig zu machen, legen Sie den Zebrafisch in einen Behälter mit Aquarienwasser.
  6. Um die Genesung zu unterstützen, erzeugen Sie einen Fluss von frischem Aquarienwasser über die Kiemen, indem Sie den Zebrafisch im Wasser hin und her bewegen.

>3. Laserfokale Verletzung der Netzhaut

HINWEIS: Ein 532 nm Diodenlaser wird verwendet, um fokale Lichtschäden auf der Netzhaut des Zebrafisches zu erzeugen. Der experimentelle Aufbau des Lasers ermöglicht die Etablierung einer reproduzierbaren fokalen Netzhautverletzung bei adulten Zebrafischen.

  1. Ausgangsleistung des Lasers einstellen: 70 mW; Antennendurchmesser: 50 μm; Pulsdauer: 100 ms.
    Vorsicht! Der Einsatz von Laserlicht erfordert einen entsprechenden persönlichen Schutz und eine Kennzeichnung des Bereichs.
  2. Tragen Sie vor der Behandlung 1 - 2 Tropfen 2%ige Hydroxypropylmethylcellulose topisch auf das Auge auf und fokussieren Sie den Laserstrahl mit einer 2,0 mm Fundus-Laserlinse auf die Netzhaut.
    Vorsicht! Hydroxypropylmethylcellulose-Tropfen sind zähflüssig und können Atemprobleme verursachen, wenn sie auf die Kiemen gelangen.
  3. Platzieren Sie vier Laserspots um den Sehnerv am linken Auge und verwenden Sie das rechte, unbehandelte Auge als interne Steuerung.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Abbildung 1: Aufbau für die Induktion der Laserverletzung der Zebrafisch-Netzhaut und anschließende OCT-Analyse. (A) Anordnung des Lasersystems vor der Behandlung. (A.1) Zebrafisch auf Silikonstifthalter mit Fundus-Kontaktlinse, kurz vor der Anwendung des Laserstrahls. (B) Anordnung des OCT-Systems vor der Bildgebung. (B.1) Zebraf...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Es wurden keine Interessenkonflikte angegeben.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Hydroxypropylmethylcellulose 2%OmniVision, Neuhausen, Schweizn.a.Methocel 2%
Ethyl-3-aminobenzoat-MethansulfonatSigma-Aldrich, Buchs, SchweizNr. A5040Tricain, MS-222
Visulas 532sCarl Zeiss Meditec AG, Oberkochen, Deutschlandn.a.532 nm Laser
Silikon-Pin-HalterHuco Vision AG, Schweizn.a.Schneiden Sie mit der Hand aus der Silikon-Stiftmatte der Sterilisationsschale entsprechend ab.
TgBAC (gfap:gfap-GFP) zf167 (AB) DehnungKIT, Karlsruhe, DeutschlandArtikel-Nr.: 15204http://zfin.org/ZDB-ALT-100308-3
Tris gepufferte Kochsalzlösung (TBS)Sigma-Aldrich, Buchs, SchweizNr. P5912
Augenhintergrund-LaserlinseOcular Instruments, Bellevue, WA, USAOFA2-0

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

Zebrafisch ModellM ller GliaNetzhautregenerationPhotorezeptorzellenAn sthesiel sungHydroxypropylmethylcelluloseFunduslaserlinseTricain An sthesie

Verwandte Artikel