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1. Durchflusszytometrische Messung von Untereinheiten des MRC-Komplexes (mitochondriale Atmungskette) und TFAM (mitochondrialer Transkriptionsfaktor A) in fixierten Zellen
- Am Ende der Kulturperiode lösen Sie die Zellen (~106), indem Sie das Zelldissoziationsreagenz hinzufügen; Pelletieren Sie dann und sammeln Sie die Zellen in einem 15-ml-Röhrchen. Waschen Sie die Zellen durch Zentrifugation mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) (1x) zweimal, indem Sie 5 Minuten lang bei 300 × g zentrifugieren.
- Fixieren Sie die Zellen 10 Minuten lang in 1,6 % Paraformaldehyd (PFA) (1 mL 1,6 % PFA in einem 15 mL Röhrchen) bei Raumtemperatur (RT). Waschen Sie die Zellen durch Zentrifugation mit PBS (1x) zweimal, indem Sie bei 300 × g für 5 min zentrifugieren.
- Permeabilisieren Sie die Zellen mit eiskaltem 90%igem Methanol (1 mL 90%iges Methanol in einem 15 mL Röhrchen) bei -20 °C für 20 min.
- Blockieren Sie die Proben in einem Blockierungspuffer mit 0,3 M Glycin, 5 % Ziegenserum und 1 % Rinderserumalbumin (BSA) - Fraktion V in PBS (1x) (1 ml Blockierungspuffer in einem 15 ml-Röhrchen). Waschen Sie die Zellen zweimal durch Zentrifugation mit PBS (1x).
- Inkubieren Sie die Zellen 30 Minuten lang mit den folgenden Primärantikörpern: Anti-NDUFB10 (1:1.000) zur Messung der Komplex-I-Untereinheit, Anti-Succinat-Dehydrogenase-Komplex-Flavoprotein-Untereinheit A (SDHA, 1:1.000) zur Messung der Komplex-II-Untereinheit und Anti-COX IV (1:1.000) zur Messung der komplexen IV-Untereinheit und Anti-TFAM-Antikörper (mitochondrialer Transkriptionsfaktor A), konjugiert mit Alexa Fluor 488 (1:400). Färben Sie die gleiche Anzahl von Zellen separat mit einem Anti-TOMM20-Antikörper (Translokase der äußeren Mitochondrienmembran 20), der mit Alexa Fluor 488 (1:400) konjugiert ist, für 30 min (1 mL Primärantikörperlösung in einem 15 ml-Röhrchen; Einzelheiten zu den Antikörpern finden Sie in der Materialtabelle ).
- Waschen Sie die Zellen mit PBS (1x) einmal mit Zentrifugation bei 300 × g für 5 min. Geben Sie den Sekundärantikörper (1:400) in Röhrchen mit NDUFB10, SDHA und COX IV und inkubieren Sie die Zellen 30 Minuten lang mit diesen Lösungen.
- Waschen Sie die Zellen einmal mit PBS (1x), indem Sie bei 300 × g für 5 min zentrifugieren. Die Überstände werden aspiriert, wobei ca. 100 μl in den Röhrchen verbleiben. Resuspendieren Sie die Zellpellets in 300 μl PBS (1x). Übertragen Sie die Zellen in 1,5-ml-Mikrozentrifugenröhrchen, die im Dunkeln auf Eis aufbewahrt werden.
- Analysieren Sie die Zellen auf dem Durchflusszytometer (mit einer Konfiguration mit 3 blauen und 1 roten Lasern). Erkennen Sie Signale in Filter 1 (FL1) mit einem 530/30-Bandpassfilter.