Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Immunhistochemische Färbung von Biomarkern in Hirntumor-Neurosphärenschnitten

783 Aufrufe

⸱

28. April 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Núñez, F. J., et al. Bewertung von Biomarkern bei Gliomen durch Immunhistochemie an paraffineingebetteten 3D-Gliom-Neurosphärenkulturen. J. Vis. exp. (2019).

Dieses Video demonstriert eine immunhistochemische Technik zur Markierung von Tumor-Biomarkern in paraffineingebetteten Hirntumor-Neurosphären. Die Neurosphärenabschnitte werden einer Paraffinentfernung und Rehydrierung unterzogen, gefolgt von einer Behandlung, um Biomarkerstellen freizulegen. Primär- und Sekundärantikörper werden dann aufgebracht, um diese Biomarker zu markieren. Die Sekundärantikörper werden durch Avidin-konjugierte Peroxidase-Enzyme gebunden, die chromogene Substrate oxidieren, um Biomarker-Positionen anzuzeigen. Schließlich werden die nukleare Gegenfärbung und die Vorbereitung des Objektträgers für die mikroskopische Analyse abgeschlossen.

Protokoll

1. Immunhistochemie (IHC) von Paraffin-eingebetteten Neurosphären (NS)

  1. Schmelzen Sie Paraffin, indem Sie die Objektträger in ein Metallgestell legen und bei 60 °C für 20 min inkubieren.
  2. Entparaffinieren Sie die Objektträger durch Inkubation in einem Rehydratationszug bei Raumtemperatur (RT): 3x Xylol für 5 min, 100% 2x Ethanol für 2 min, 95% 2x Ethanol für 2 min, 70% 1x Ethanol für 2 min und 1x deionisiertes Wasser für 2 min. Bewahren Sie die Objektträger bis zur Antigengewinnung in Leitungswasser auf, da das Austrocknen zu einer unspezifischen Antikörperbindung führt.
  3. Inkubieren Sie die Objektträger in Citratpuffer (10 mM Zitronensäure, 0,05% nichtionisches Detergens, pH 6) bei 125 °C für 30 s und bei 90 °C für 10 s. Lassen Sie sie abkühlen und spülen Sie die Objektträger dann 5 Mal mit destilliertem Wasser ab.
  4. Inkubieren Sie Objektträger bei RT in 0.3% H2O2 für 30 min.
  5. Waschen Sie die Objektträger 3 Mal in Waschpuffer (0,025% Waschmittel in Tris-gepufferter Kochsalzlösung [TBS]) für 5 Minuten unter leichtem Rühren.
  6. Inkubieren Sie die Objektträger bei RT mit Blockierungslösung (10% Pferdeserum, 0,1% Rinderserumalbumin [BSA] bei TBS) für 30 Minuten.
  7. Inkubieren Sie die Objektträger über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer mit primärem Antikörper, der in Verdünnungslösung (0,1% BSA in TBS) hergestellt wurde. Waschen Sie die Objektträger 3 Mal 5 Minuten lang unter leichtem Rühren in Waschpuffer
  8. .
  9. Inkubieren Sie die Objektträger 1 h lang bei RT mit einem biotinylierten Sekundärantikörper, der in Verdünnungslösung hergestellt wurde. Waschen Sie die Objektträger 3 Mal 5 Minuten lang unter leichtem Rühren in Waschpuffer
  10. .
  11. Inkubieren Sie die Objektträger bei RT im Dunkeln für 30 min mit dem Avidin-Biotinylierten Meerrettich-Peroxidase-Komplex. Waschen Sie die Objektträger 3 Mal 5 Minuten lang unter leichtem Rühren in Waschpuffer
  12. .
  13. Inkubieren Sie die Objektträger hier für 2-5 min bei RT mit 3,3′-Diaminobenzidin (DAB)-H2O2 Substratmarken.
  14. 3 mal mit Leitungswasser spülen. Tauchen Sie die Objektträger (1-2 s) in Hämatoxylinlösung, um sie zu verfärben, und spülen Sie sie dann gründlich mit Leitungswasser ab, bis sie klar sind.
  15. Dörren Sie die Objektträger wie folgt: 2 min in destilliertem Wasser inkubieren, 3 mal in 80% Ethanol tauchen, 2 mal je 2 min in 95% Ethanol inkubieren, 2 mal je 2 min in 100% Ethanol inkubieren und schließlich 3 mal je 3 min in Xylol.
  16. Decken Sie die Dias mit einem Xylol-basierten Eindeckmedium ab und lassen Sie sie auf einer ebenen Fläche bei RT trocknen, bis sie für die Bildgebung bereit sind.

HINWEIS: Wenn Sie DAB-Färbungen durchführen, können die Dias bei RT gelagert werden. Wenn jedoch eine Immunfluoreszenzfärbung durchgeführt wird, sollten Objektträger im Dunkeln bei -20 °C gelagert werden, um das Photobleichen zu reduzieren.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Polyklonales Anti-ATRX gegen Kaninchen,Santa Cruz Biotechnologysc-15408IHC, 1:250 Verdünnung
Polyklonales Kaninchen-Anti-Ki-67AbcamAb15580IHC, 1:1000 Verdünnung
Kaninchen polyklonales Anti-OLIG2MilliporeAB9610IHC, 1:500 Verdünnung
Ziegenpolyklonales Anti-Kaninchen-Biotin-konjugiertDakoE0432IHC, 1:1000 Verdünnung
Vectastain Elite ABC HRP KitVector Laboratories IncPK-6100
BETAZOID DAB CHROMOGEN KIT{{TAG_ 61}}Biocare medicalBDB2004 L/Preis bis 12/18

Tags

Hirntumor-NeurosphärenParaffineinbettungs-SchnitteBiomarker-DetektionEpitop-FreilegungPrimärantikörperSekundärantikörperAvidin-Biotin-Komplexchromogenes SubstratKerngegenfärbung