Methodenartikel

Längsschnittliche Zwei-Photonen-Bildgebung von fluoreszenzmarkierten Neuronen in einem lebenden Maus-Hippocampus

29. Mai 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Quelle: Ulivi, A. F., et. al. Longitudinale Zwei-Photonen-Bildgebung von dorsalem Hippocampus CA1 in lebenden Mäusen. J. Vis. exp. (2019)

Dieses Video zeigt die longitudinale Zwei-Photonen-Bildgebung von fluoreszenzmarkierten pyramidalen Neuronen in einer lebenden Maus und zeigt die Vorbereitung, Kanülenausrichtung und Bildgebung von Dendriten und dendritischen Dornen zur Untersuchung der neuronalen Struktur in der hippokampalen CA1-Region.

Protokoll

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Alle Verfahren, an denen Tiermodelle beteiligt sind, wurden vom örtlichen institutionellen Tierpflegeausschuss und dem Tierprüfungsausschuss von JoVE überprüft.

  1. Vorbereitung der Bildgebungssitzung
  2. Schalten Sie das Bildgebungs-Setup im Voraus ein und lassen Sie den Laser bei Bedarf aufwärmen und stabilisieren.
  3. Betäuben Sie die Maus. Platzieren Sie die Maus in der Anästhesie-Induktionskammer bei 3% Isofluran in 1 L/min O2 und warten, bis es das Bewusstsein verliert. Beurteilen Sie die Anästhesie mit dem Zehenquetschreflextest.
  4. Entfernen Sie mit einer Pinzette vorsichtig die Klebefolie von der Kopfhalterplatte. Halten Sie die Maus in einer Hand und die Kopfhalterplatte mit den Fingern. Entfernen Sie die Folie vorsichtig, um eine Beschädigung der Zubereitung zu vermeiden.
  5. Positionieren Sie die Maus unter dem Mikroskop, über dem Heizteppich und befestigen Sie die Kopfplatte an der Halterung (Abbildung 1D).
  6. Positionieren Sie den Nasenkegel so, dass er die Schnauze bedeckt, und verringern Sie den Isofluran auf 1,5-2%.
  7. Tragen Sie eine Augensalbe auf die Augen der Maus auf.
  8. Reinigen Sie die Bildgebungskanüle, indem Sie sie mit entionisiertem Wasser spülen. Verwenden Sie eine Spritze und eine dünne Nadel, um Wasser in die Kanüle zu tropfen, und eine Vakuumpumpe, um es zu entfernen.

2. Imaging session

  1. Verwenden Sie Objektive mit geringer Vergrößerung und großem Arbeitsabstand, um die Kanüle visuell auf Restwasser, Schmutz, Unversehrtheit und das Vorhandensein von Fluoreszenz zu überprüfen.
  2. Richten Sie die Kanüle auf die optische Achse aus, indem Sie die Winkel der Kopfhalterarme anpassen.
  3. Wechseln Sie zu den Wasserimmersionsobjektiven 25X 1,0 NA (numerische Apertur), 4 mm WD (Arbeitsabstand) oder 40X 0,8 NA, 3 mm WD. Füge genug entionisiertes Wasser hinzu, um die Kanüle zu füllen, und halte überschüssiges Wasser auf der Kanüle. Vermeiden Sie die Bildung von Luftblasen.
  4. Verwenden Sie Zwei-Photonen-Anregung (2P) und bilden Sie Fluoreszenzsignale ab.
    HINWEIS: Das Bildgebungsprotokoll hängt stark von den zu erfassenden Zeit- und Raumskalen ab. Weitere Informationen zu den Bildeinstellungen, die wir zur Erstellung der in diesem Artikel gezeigten Bilder verwendet haben, finden Sie in den repräsentativen Ergebnissen und Diskussionen des Abschnitts.

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Ergebnisse

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Edelstahlrohr Ø 3,0 x 0,25 mm (Innen-Ø 2,5 mm ) L = 500 mmSawadeR00303Edelstahlrohr für den Kanülen-Metallring
Mikroskop-Deckglas (4 mm rund)Engelbrecht Medizin und Labortechnik Glasdeckgläser für die Kanüle glass
Isofluran CP, Flasche 250 mlHenry Schein VET GmbH798932<
Harvard Apparatus Isofluran Funnel-Fill VaporizerHarvard Apparatus GmbH34-1040Isofluran-Verdampfer
Lab Active ScavengerGropper MedizintechnikUV17014<
CMA 450 Temperature ControllerHugo Sachs Elektronik - Harvard Apparatus GmbH8003770Heizdecke
Bepanthen Augen- und NasensalbeBayer AG Ophtalmic salbe
Head platesBenutzerdefiniert made 30 mm x 10 mm Größe; 8 mm Durchmesser Loch, titanium
KopfplattenklemmeCustom made Kopfplattenhalter
Sockel-PfostenhalterThorlabsPH20E/MKopfplattenhalter
EdelstahlpfostenThorlabsTR30/MKopfplattenhalter
EdelstahlpfostenThorlabsTR75/MKopfplattenhalter
EdelstahlpfostenThorlabsTR150/MKopfplattenhalter
PfostenverbinderklemmenCustom made Kopfplattenhalter
Aluminium-Steckbrett, 300 mm x 450 mm x 12,7 mm, M6 TapsThorlabsMB3045/MMikroskoptisch
7" x 4" Lab JackThorlabsL490/MMikroskoptisch
Low Profile Gesichtsmaske kleine MäuseEmka TechnologiesVetFlo-0801Anästhesie-Gesichtsmaskenhalter
Leistungsmesser Modell 1918-RNewport Power meter
X-Cite 120QExcelitas Technologies Fluoreszenzlampe
Zwei-Photonen-MikroskopBrukerUltima IVZwei-Photonen-Mikroskope
Zwei-Photonen-MikroskopThorlabsBergamoZwei-Photonen-Mikroskope
Plan N 4x/0.10 ∞/-/FN22Olympus Objectives
Plan N 10x/0.25 ∞/-/FN22Olympus Objectives
LMPlan FLN 20x/0.40 ∞/-/FN26.5Olympus Objectives
XLPlan N 25x/1.00 SVMP ∞/0-0.23/FN18< Objectives
Ultafast abstimmbarer Laser für 2P-AnregungSpectraphysicsMai Tai Deep SeeExcitaiton lasers
Ultimativer abstimmbarer Laser für 2P-AnregungSpectraphysicsInSight DS+ Dual beamExcitaiton lasers
Ultimativer abstimmbarer Laser für 3P-AnregungKohärentMonacoExcitaiton Laser
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Schlagwörter

Fluoreszierende NeuronenHippocampus CA1Kan lenausrichtungdendritische DornenLongitudinalimagingWasserimmersionsobjektivdeionisiertes WasserKopfplatte

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