Ein. Cell Culture
- Kultur neuronalen Zellen und behandeln Sie sie nach Bedarf.
- Ernte Zellen in 15 ml Röhrchen: Aspirat Medien, mit Phosphat spülen Kochsalzlösung (PBS, Calcium und Magnesium befreit), fügen Trypsin, sammeln sich in 15 ml Röhrchen und neutralisieren Trypsin mit geeigneten serumhaltigen Medien.
- Spin bei 1.000 xg für 5 min.
- Absaugen Medien.
- Die Zellen in PBS.
- Spin bei 1.000 xg für 5 min.
- Absaugen Medien und resuspendieren Zellen in frischem PBS.
- Zählen von Zellen unter Verwendung eines Hämacytometers oder Ihre bevorzugte Zelle Zähler.
- Zellproben sollte unmittelbar vor Beginn des Tests vorbereitet werden.
- Alle Proben sollten im Dunkeln oder gelbem Licht gehandhabt werden, um DNA-Schäden durch UV-Licht zu verhindern.
2. Comet Assay
Ein. Slide Vorbereitung
- Schmelze 1% Agarose (1 g / 100 ml 1X Tris Base, Borsäure, EDTA, TBE) in einer Mikrowelle für 3 min bis alle Granulate verschwinden.
- Objektträger in das geschmolzene Agarose und Wischen einer Seite mit einer Kimwipe reinigen. Lassen Sie die Agarose an der Luft trocknen, um eine transparente Folie. Dies kann im Voraus und Folien erfolgen kann gespeichert werden.
2. Neutral Comet Assay
- Chill Lyse-Lösung (2,5 M NaCl, 100 mM EDTA, pH 10, 10 mM Tris-Base, 1% Natriumlaurylsarcosinat und 1% Triton X-100, pH 10) bei 4 ° C für mindestens 1 Stunde vor der Verwendung.
- 2.2.2. Melt 1% Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt (1 g / 100ml in 1X Tris Base, Borsäure, EDTA) in einer Mikrowelle für 3 min, bis alle Körner verschwinden. Die Agarose muss auf 37 ° C in einem Wasserbad abgekühlt werden, um künstliche Induktion Kometenschweif vermeiden. Idealerweise muß die Agarose eine halbe Stunde vor der Verwendung gekühlt werden.
- 2.2.3. Verdünnen der Zellsuspension, so daß es 100.000 Zellen pro ml sind. Kombinieren der Zellsuspension mit der Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt (bei 37 ° C) beiein Verhältnis von 1:10 (v / v), kurz vortexen und sofort pipettieren 50 ul auf die Comet Slide. Verwenden Sie die Seite der Pipettenspitze die Zellsuspension gleichmäßig über den Probenraum. Jede Behandlungsgruppe sollte mindestens in dreifacher Ausfertigung.
- Objektträger flach im Kühlschrank für 30 Minuten, bis ein Kreis erscheint in der Peripherie der Folie.
- Prechill die Lyse-Lösung und tauchen Folien in dieser Lösung für 30 min im Dunkeln bei 4 ° C (oder im Kühlschrank).
- Abgießen oder absaugen die Lyse-Lösung und fügen 1X neutral Elektrophorese-Puffer (Tris-Base, Borsäure, EDTA, 1X TBE). Lassen Sie Folien in diesem Puffer für eine halbe Stunde in den Kühlschrank stellen.
- Fügen vorgekühlte 1X Neutral Electrophoresis Buffer (FSME) in Elektrophoresekammer, die Objektträger in der Elektrophorese Diamagazin. Richten gleitet, so daß sie äquidistant von Elektroden sind.
- Gießen 1X neutral Elektrophoresepuffer bis zu 0,2 Zentimeter über Rutschen. Überschüssiger Puffer wird unterFere mit Elektrophorese.
- Set Stromversorgungsspannung bis 1 V pro cm (gemessen Elektrode zu Elektrode) und führen für 30 min bei 4 ° C (oder der Kühlraum) im Dunkeln.
3. Alkaline Comet Assay
- Chill Lyse-Lösung (2,5 M NaCl, 100 mM EDTA, pH 10, 10 mM Tris-Base, 1% Natriumlaurylsarcosinat und 1% Triton X-100, pH 10) bei 4 ° C für mindestens 1 Stunde vor der Verwendung.
- Melt 1% Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt (1 g / 100 ml in 1X Tris Base, Borsäure, EDTA) in einer Mikrowelle für 3 min, bis alle Körner verschwinden. Dann in einem 37 ° C Wasserbad für mindestens 30 min.
- Kombinieren Zellen mit 1 x 105 / ml mit geschmolzenen Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt (37 ° C) in einem Verhältnis von 1:10 (v / v), Vortex kurz und unmittelbar pipettieren 50 ul auf das Slide Comet. Verwenden Sie die Seite der Pipettenspitze die Zellsuspension gleichmäßig über den Probenraum. Jede Behandlungsgruppe sollte mindestens in dreifacher Ausfertigung.
- Aufschiebenes flach im Kühlschrank für 30 Minuten, bis ein Kreis erscheint in der Peripherie der Folie.
- Objektträger in vorgekühlte Lyselösung und lassen bei 4 ° C für 1 h bis über Nacht im Dunkeln.
- Die Objektträger aus der Lyselösung, abtropfen die Folien und spülen einmal mit kaltem Neutralisationspuffer für 5 min, um restliches Detergens und Salzen vor der Alkali-Abwickeln Schritt zu entfernen.
- Die Objektträger in eine Gelelektrophorese Kammer mit vorgekühltem frisch zubereiteten Elektrophorese-Puffer (300 mM NaOH, 1 mM EDTA, pH> 13) nicht bis 0,5 cm über Rutschen überschreiten gefüllt. Richten gleitet, so daß sie äquidistant von Elektroden sind.
- Lassen Folien im alkalischen Puffer sitzen für 30 min im Dunkeln zum Abwickeln der DNA und der Expression von Alkali-ersatzpflichtigen ermöglichen.
- Set Stromversorgungsspannung bis 1 V pro cm (gemessen Elektrode zu Elektrode) und führen für 30 min bei 4 ° C (oder der Kühlraum).
4. Befestigungs-und Staining Cells
- Überschüssiges Electrophoresis Buffer
- Objektträger in vorgekühlte destilliertem Wasser für 5 min bei RT.
- Objektträger in vorgekühlte 70% Ethanol 5 min bei RT.
- Dry Proben über Nacht. Setzen Sie Folien helles Licht. Die Proben können für Monate bei Raumtemperatur vor Scoring zu diesem Zeitpunkt gespeichert werden.
- Stain Objektträger durch Eintauchen in Sybr grün (1X in PBS verdünnt) für 20 min in den Kühlschrank stellen.
- Objektträger und ihnen erlauben, vollständig trocknen im Dunkeln. Die Agarose wird transparent, wenn sie vollständig trocken.
4. Bild-Akquisition und Analyse
- Erwerben Sie Bilder mit Fluoreszenzmikroskop auf den grünen Filter (Zeiss AxioVision) und analysieren mit Comet Assay Software (Perceptive Instruments).
- Klicken Sie auf den "Kometen Kopf" (der Kern) und die Software berechnet die Parameter einschließlich der mittleren Schwanz Moment und DNA-Menge in derKern.
- Analysieren mindestens 200 Zellen pro Behandlung.
- Exportieren von Daten in Microsoft Excel.
- Berechnung der mittleren tail moment für jede Behandlungsgruppe und Plot-Daten als angemessen.
5. Repräsentative Ergebnisse
Ein Beispiel für Comet Assay Analyse neuronaler Zellen ist in Abbildung 2 und Abbildung 3 dargestellt. In diesem Fall induziert Bestrahlung der neuronalen Zellen DNA-Schäden. Da die Zellen mit dem elektrischen Feld ausgesetzt werden, wandert die DNA mit unterschiedlichen Geschwindigkeiten aufgrund der Unterschiede in der Größe, die anschließend analysiert wird unter Verwendung des Kometentest Software. Je mehr die DNA-Schäden, je weiter die DNA wandert aus dem Zellkern. Dies verringert die Fluoreszenzintensität in den Zellkern, die anschließend durch den Software und führt zu höheren Leitwerksmoment abgeholt. Tabelle 1 stellt eine Tabelle von repräsentativen Kometenassay Analyse und Abbildung 4 zeigt einen repräsentativentative Graph DNA-Schäden in neuronalen Zellen nach der Bestrahlung durch den Comet Assay gemessen.

Abbildung 1. Ablaufdiagramm des Comet Assay. Klicken Sie hier für eine größere Abbildung zu sehen .

Abbildung 2. Repräsentative Bilder von neuronalen Zellen (A) ohne und (B) mit Kometenschweif.

Abbildung 3. Comet Assay-Analyse mit Comet Assay Software. (A) Repräsentative Schirmschüsse Bild aufgenommen mit Carl Zeiss Fluoreszenzmikroskop und mittels CometAssay Software. (B) Klick auf den Kern oder die "Kometen Kopf" (eingekreist in grün) erzeugt eine fluoreszierende Karte und Grafik (eingekreist in gelb) und eine (C) Datentabelle (rot eingekreist). Klicken Sie hier für eine größere Abbildung zu sehen .

Abbildung 4. Repräsentative Graph durch Auftragen der mittleren Leitwerksmoment durch Analysieren DNA-Schädigung in bestrahlten und unbestrahlten neuronalen Zellen mit neutralen Kometenassay erhalten wird. Wie erwartet, induziert 3Gy Strahlung (Röntgenstrahlen) DNA-Schädigung, wie durch die höhere mittlere Leitwerksmoment in den bestrahlten neuronalen Zellen dargestellt. Dargestellt ist die mittlere tail moment (+ / - Standardfehler), ** P <0,01.

Tabelle 1. Vertreter Tisch Comet Assay Analyse bestrahlten und nicht-bestrahlten neuronalen Zellen erhalten. Klicken Sie hier für eine größere Abbildung zu sehen .