Hier beschrieben ist ein Protokoll zur halbautomatischen Bilderzeugungsgewebespezifischer Fluoreszenz in Zebrafischembryos.
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Methodenartikel
Hier beschrieben ist ein Protokoll zur halbautomatischen Bilderzeugungsgewebespezifischer Fluoreszenz in Zebrafischembryos.
Zebrafisch-Embryonen sind ein mächtiges Werkzeug für große Screening kleiner Moleküle. Transgene Zebrafisch, die fluoreszierende Reporter-Proteine exprimieren, werden häufig verwendet, um Chemikalien, die die Genexpression modulieren. Chemische Bildschirme, die Fluoreszenz-in-Live Zebrabärblingtest verlassen sich oft auf teure Spezialausrüstung für High Content Screening. Wir beschreiben ein Verfahren, mit einem Standard-Epifluoreszenzmikroskop mit einem motorisierten Bühne, um automatisch Bildzebrafischembryonen und erkennen Gewebe-spezifische Fluoreszenz. Mit transgenen Zebrafisch, die Östrogen-Rezeptor-Aktivität berichten über die Expression von GFP, entwickelten wir eine semi-automatische Verfahren für Östrogen-Rezeptor-Liganden, die die Reporter in einem Gewebe-spezifisch aktivieren screenen. In diesem Video beschreiben wir Verfahren zum Ordnen von Zebrafisch-Embryonen von 24-48 Stunden nach der Befruchtung (hpf) in einer 96-Well-Platte und das Hinzufügen von kleinen Molekülen, die Östrogen-Rezeptoren binden. Bei 72-96 hpf, Bilder von jedem gut ausdie gesamte Platte, werden automatisch gesammelt und manuell für Gewebe-spezifischen Fluoreszenz untersucht. Dieses Protokoll zeigt die Fähigkeit, Östrogen-Rezeptoren, die in Herzklappen zu aktivieren, aber nicht in der Leber zu erkennen.
Transgene Zebrafisch entwickelt worden, die zur direkten Visualisierung der Aktivität in Signalwege, wie beispielsweise Fibroblasten-Wachstumsfaktoren 1, 2 Retinsäure und Östrogene 3, lebenden Embryos zu ermöglichen. Solche Werkzeuge ermöglichen Screening für Chemikalien, die Signalwege zu stören (wie Änderung der Fluoreszenzintensität analysiert wurde) oder Chemikalien, die Signalgebung modulieren in einer gewebespezifischen Art und Weise (Änderung der Fluoreszenzlokalisierungs) 4. Automatisierte Bildaufnahme erhöht den Durchsatz der chemischen Bildschirme dramatisch 5,6. Bildschirme, die automatisch im Live-Test Fluoresze....
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HINWEIS: Dieses Protokoll wurde von der Universität von Alabama in Birmingham Institutional Animal Care und Verwenden Committee genehmigt.
1. Zebrafisch-Zucht-und Ei-Sammlungen
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Fig. 1 zusammengesetzte Bilder aus einzelnen Vertiefungen einer 96-Well-Platte. Jedes zusammengesetzte Bild wird von 59 Einzelbildern mit 5% Bildüberlappung besteht. Beachten Sie, dass die Live-Zebrafisch sind zufällig in jedem gut orientiert, aber wir sind in der Lage, um die Fluoreszenz im Herzen von der Leber zu unterscheiden. Hell Bilder sind als Verweise auf Zebrafisch-Orientierung zu beurteilen und zu visualisieren, morphologische Veränderungen (1A und 1C). Automated Imaging mit e.......
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Dieses Protokoll beschreibt eine einfache Methode, um automatisch Bild Gewebe-spezifischen Fluoreszenz in Zebrafischembryonen. Das Protokoll wurde mit einem Zeiss Axio Observer entwickelt. Z1 mit Zen-Blau-2011-Software, aber die Technik kann mit jedem inversen Mikroskop mit einem motorisierten Mikroskop Bühne und Steuerungssoftware, die Fliesen durchführen, um zusammengesetzte Bilder erstellen angepasst werden. Das Ausrüsten eines inversen Mikroskops mit einem motorisierten Stufe kann eine praktische, preiswerte Alterna.......
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Die Autoren haben keine finanziellen Interessen konkurrieren.
Wir danken Susan Farmer und die Mitarbeiter der UAB Zebrafisch-Forschungseinrichtung für Zebrafisch-Pflege. Finanzierung von Start-up-Fonds von der Abteilung für Pharmakologie und Toxikologie zur Verfügung gestellt.
....Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Transferpipetten aus Kunststoff; mit breiter Bohrung | Fisher | 13-711-23 | |
| Transferpipetten aus Kunststoff; feine Spitze | Fisher | 13-711-26 | |
| 96-Well-Platten mit rundem Boden | Fisher | 21-377-203 | |
| Platten mit 100 x 35 mm | Fisher | 08-757-100D | |
| Platten mit 35 x 60 mm | Fisher | 08-757-100B | |
| Dumont #5 feine Pinzette | Fine Science Tools | 11254-20 | Spitzenmaße 0,05 x 0,01 mm, zur manuellen Entnahme von Chorionen aus Embryonen |
| Tricain Methansulfonat | Sigma Aldrich | A5040-25G | siehe Zebrafisch Buch für Rezept (http://zfin.org/zf_info/zfbook/chapt10.html#wptohtml63) |
| 1-Phenyl-2-thioharnstoff (PTU) | Sigma Aldrich | P7629-10G | 20 mM Vorrat vorbereiten (100x) und bei 200 μm verwenden; M in E3B |
| Zeiss Axio Observer Z1 | Carl Zeiss | Protokoll erfordert ein inverses Fluoreszenzmikroskop mit einem motorisierten Tisch | |
| 20x Objektiv mit langem Arbeitsabstand | Carl Zeiss | Wir verwenden ein Objektiv mit 0,4 NA und 8,4 mm Arbeitsabstand | |
| Axiocam HRm Digitalkamera | Carl Zeiss | ||
| ZenBlue 2011 Mikroskopsteuerungssoftware | Carl Zeiss | Das Protokoll erfordert eine Automatisierungs- und Steuerungssoftware für die Mikroskopie, um die Aufnahme von gekachelten Bildern mit einem motorisierten Tisch | |
| zu ermöglichen Methylene Blue | Sigma Aldrich | MB-1; 25 Gramm | ergeben eine 2%ige Lösung in RO-Wasser zur Verwendung in E3B (unten) |
| E3B | 60X E3 LÖSUNG: NaCl - 17,2 Gramm KCl - 0,76 Gramm CaCl2-2H2O - 2,9 Gramm MgSO4-7H2O - 4,9 Gramm oder MgSO4 - 2,39 Gramm In 1 Liter Milli-Q Wasser auflösen; In steriler 1-Liter-Flasche aufbewahren. 1X E3B LÖSUNG FÜR ZEBRAFISCHE: 60X E3 150 ml 2% Methylenblau 100 μ l Mit Milli-Q Wasser auf 9 Liter bringen |
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