$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Anatomische Pfadverfolgung ist von entscheidender Bedeutung, um die Beziehung zwischen Gehirn und Verhalten zu entschlüsseln. Die Entschlüsselung der Bildung neuronaler Schaltkreise während der embryonalen Reifung des Gehirns ist jedoch eine technische Herausforderung, da die meisten bisher entwickelten transsynaptischen Tracing-Methoden auf stereotaktischer Tracer-Injektion basieren. Um dieses Problem zu lösen, haben wir eine binäre genetische Strategie für die bedingte genetische transsynaptische Nachverfolgung im Gehirn von Mäusen entwickelt. Zu diesem Zweck haben wir zwei komplementäre Knock-in-Mausstämme generiert, um selektiv den bidirektionalen transsynaptischen Tracer Gerstenlektin (BL) und den retrograden transsynaptischen Tracer Tetanustoxin Fragment C aus dem ROSA26-Locus nach Cre-vermittelter Rekombination zu exprimieren. Die zellspezifische Tracerproduktion in diesen Mäusen ist genetisch kodiert und hängt nicht von einer mechanischen Tracer-Injektion ab. Daher ist unser experimenteller Ansatz geeignet, um die Bildung neuronaler Schaltkreise im embryonalen Gehirn von Mäusen zu untersuchen. Da der Tracer-Transfer zwischen Synapsen von der synaptischen Aktivität abhängt, können diese Mausstämme außerdem verwendet werden, um die Kommunikation zwischen genetisch definierten neuronalen Populationen während der Gehirnentwicklung mit einer Einzelzellauflösung zu analysieren. Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll für das transsynaptische Tracing in Mausembryonen unter Verwendung der neuartigen rekombinanten ROSA26-Allele zur Verfügung. Wir haben diese experimentelle Technik verwendet, um die neuronalen Schaltkreise zu beschreiben, die der Reifung der Fortpflanzungsachse im sich entwickelnden weiblichen Mäusegehirn zugrunde liegen.