Methodenartikel

Live-Imaging des Ependymale Cilia in der Seitenventrikel des Maus-Gehirn-

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DOI:

10.3791/52853

1. Juni 2015

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Mit hochauflösenden Differentialinterferenzkontrast (DIC) Mikroskopie wird eine ex vivo Beobachtung des schlagenden motiler ependymaler Zilien innerhalb der Maus Hirnkammern entfernt von Live-Bildgebung nachgewiesen. Die Technik ermöglicht eine Aufnahme von der einzigartigen Zilienschlag Frequenz und Schlagwinkel sowie deren intrazellulären Calcium-Oszillation Stimulationseigenschaften.

Zusammenfassung

Multiciliated Ependymzellen säumen die Ventrikel im erwachsenen Gehirn. Abnormale Funktion oder Struktur ependymaler Zilien ist mit verschiedenen neurologischen Defiziten assoziiert. Die aktuelle ex vivo Echtzeit-Bildgebung von beweglichen ependymaler Zilien Technik ermöglicht eine detaillierte Untersuchung der Dynamik ciliary folgenden mehreren Schritten. Diese Schritte umfassen: Mäuse Euthanasie mit Kohlendioxid nach Protokollen der University of Toledo Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC); Kraniektomie gefolgt von Gehirnentfernung und sagittal Gehirn Dissektion mit einem Vibratom oder scharfe Klinge sehr dünne Schnitte durch die Hirn Seitenventrikel, wo die ependymaler Zilien visualisiert werden können erhalten. Inkubation der Scheiben des Gehirns in einem angepassten Glasbodenplatte, die Dulbeccos modifiziertes Eagle-Medium (DMEM) / Hoch Glucose bei 37 ° C in Gegenwart von 95% / 5% O 2 / CO 2 -Gemisch ist wichtig, um das Gewebe am Leben zu halten währenddas Experiment. Ein Video der Zilien schlagen wird dann mit Hilfe eines hochauflösenden Differentialinterferenzkontrastmikroskop erfasst. Das Video wird dann Bild für Bild analysiert, um die Zilienschlag Frequenz zu berechnen. Auf diese Weise können unterschiedliche Einstufung der Ependymzellen in drei Kategorien oder Arten auf der Grundlage ihrer Zilienschlag Frequenz und Winkel. Weiterhin ermöglicht diese Technik die Verwendung von Hochgeschwindigkeits-Fluoreszenzbildanalyse, um die einzigartigen intrazellulären Calciumschwingungseigenschaften Ependymalzellen sowie die Wirkung von pharmakologischen Mitteln auf den Calcium Schwingungen und Zilienschlag Frequenz charakterisieren. Außerdem eignet sich dieses Verfahren für Immunfluoreszenz-Bildgebung zum ziliaren Struktur und ciliary Proteinlokalisationsstudien. Dies ist besonders wichtig bei der Krankheitsdiagnose und Phänotyp Studien. Die Hauptbeschränkung der Technik wird auf die Abnahme in lebenden motile Zilien Bewegung zurückzuführen, wie das Hirngewebe und sterben ab.

Einleitung

Cilien sensorischen Mikrotubulus-basierten Organellen, die von der Zelloberfläche an die extrazelluläre Umgebung zu verlängern. "9 + 0" oder "9 + 2" - je nach ihrer Mikrotubuliorganisationszentrum kann Zilien in zwei Typen eingeteilt werden. Funktionell bezogen auf ihre Beweglichkeit, so können diese als bewegliche oder unbewegliche Zilien 1 eingestuft werden. Primäre Zilien ist ein Begriff allgemein verwendet, bezeichnen "9 + 0" unbewegliche Zilien. Diese haben neun parallelen Dublett Mikrotubuli (hergestellt von "9" bezeichnet) und einer zentralen Paar von Mikrotubuli abwesend innerhalb der zentralen Hülse (durch "0" bezeichnet). , Einige "9 + 0" Zilien,....

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Protokoll

Die Verfahren für Tierversuche wurden von der Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC) der University of Toledo in Übereinstimmung mit den Richtlinien der Institutional Animal Care und Verwenden Committee an den National Institutes of Health und der Leitfaden für die Pflege und Verwendung zugelassen von Labortieren.

1. Gehirn Extraction, Schnitte und Gewebepräparation

  1. Opfern Wildtyp-Maus-Stamm C57BL / 6 durch tief euthanizing mit CO 2 Ersticken für 5 min. Versichern Tod durch zervikale Dislokation.
  2. Reinigen Sie die Mauskopf mit 70% Ethanol.
  3. Führen Kraniektomie mit sterilen Schere ....

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Ergebnisse

Mess ependymaler Zilien Funktion in Live-Maushirn

Die in diesem Protokoll beschriebene Verfahren wird verwendet, um ependymal Zilien Funktion und Struktur in der frischen Gewebe aus dem Gehirn der Maus als auch für die Überwachung und studieren Zilien Schlagfrequenz seziert überwachen. Die Schritte befolgt, um eine vollständige Experiment erreichen werden in einer schematischen Ablaufplan (Figur 1) dargestellt. Es wird dringend empfohlen, dass das Experiment innerhalb eines .......

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Diskussion

Beschrieben wird ein Protokoll für die Herstellung von Maus-Gehirngewebe sowohl Live-Bildgebung und die Fluoreszenzmikroskopie, die eine schnelle und empfindliche genauer Betrachtung der ependymalen Zilien in den Hirnkammern liefert. Diese Technik ist nicht nur auf den lateralen Ventrikel beschränkt; es könnte verwendet, um die Zilien in anderen Hirnkammern beobachten. Diese Bildgebungstechnik bietet einen Live-Stream, die die Bewegung des CSF von Zilienschlag in einem ex vivo-Einstellung ähnelt. Darüber hinaus.......

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Offenlegungen

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Danksagungen

Die Autoren danken Charisse Montgomery für ihren Lektoratsservice. A. Alomrans Arbeit erfüllt teilweise die Anforderungen für einen Master-Abschluss in Pharmakologie.Diese Arbeit wird finanziert durch den Intramural Startup Fund der Universität Toledo für W.A.A. und NIH Grant (DK080640) für S.M.N.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
DMEM/HOHER GLUKOSECellgro Mediatech Inc.10-013-CV
Fötales Rinderserum (FBS)HyklonSH30088-03
Penicillin/StreptomycinThermo ScientificSV30010
Phosphatgepufferte KochsalzlösungThermo ScientificSH30256-01
ParaformaldehydElektronenmikroskopie15710-SP
SaccharoseSigma-AldrichS-2395
Triton-XSigma-AldrichT9284
Fluo-2 TEF Labs#0200
DMSO
B27Gibco17504044
VECTASHIELD HardSet Eindeckmedium mit DAPIVector LabsH-1500
Anti-acetylierter a-Tubulin-AntikörperSigma-AldrichT7451 Klonen 6-11B1
FITC Anti-Maus-AntikörperVector LabsFI-2000
ZellkulturplatteVWR Vista Vision30-2041
Deckglas (18 x 18)VWR Vista Vision16004.326
VibratomLeica BiosystemsLeica VT1200S
KryostatLeica BiosystemsLeica CM1860
Inverses FluoreszenzmikroskopNikon Nikon TE200060X Öl
Mikroskop-Deckglas 24 x 60 mm2VWR Vista Vision16004-312
Eindeckmedium mit DAPIVector LaboratoriesH-1500
DAPI FilterwürfelChroma Technology

Referenzen

  1. AbouAlaiwi, W. A., Lo, S. T., Nauli, S. M. Primary cilia: Highly sophisticated biological sensors. Sensors. 9 (9), 7003-7020 (2009).
  2. Nonaka, S., et al. Randomization of left-right asymmetry due to loss of nodal cilia....

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Schlagwörter

DifferenzialinterferenzkontrastZilienschlagfrequenzCalcium OszillationImmunfluoreszenz BildgebungGlasbodenplatteHochglukose MediumVentrikelschnitt

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