Enhancer steuern die Zellidentität, indem sie die gewebespezifische Genexpression positions- und orientierungsunabhängig regulieren. Diese Enhancer befinden sich oft distal vom regulierten Gen in intergenen Regionen oder sogar im Körper eines anderen Gens. Die positionsunabhängige Natur der Enhancer-Aktivität macht es schwierig, Enhancer mit den Genen in Einklang zu bringen, die sie regulieren. Die Deletion einer Enhancer-Region liefert einen direkten Beweis für die Enhancer-Aktivität und ist der Goldstandard, um die Rolle eines Enhancers bei der endogenen Gentranskription aufzudecken. Herkömmliche homologe rekombinationsbasierte Deletionsmethoden wurden durch die jüngsten Fortschritte in der Genome-Editing-Technologie übertroffen, die schnelle und präzise lokalisierte Veränderungen an den Genomen zahlreicher Modellorganismen ermöglichen. Die CRISPR/Cas9-vermittelte Genomeditierung kann verwendet werden, um das Genom in vielen Zelltypen und Organismen schnell und kostengünstig zu manipulieren, da Cas9 durch eine Leit-RNA aus einem maßgeschneiderten Expressionsplasmid leicht auf das Genom ausgerichtet werden kann. Die homozygote Deletion essentieller genregulatorischer Elemente könnte zur Letalität führen oder den zellulären Phänotyp verändern, während die monoallelische Deletion von Transkriptionsverstärkern die Untersuchung der cis-Regulation der Genexpression ohne dieses verwirrende Problem ermöglicht. Hier wird ein Protokoll für die CRISPR/Cas9-vermittelte Deletion in embryonalen Stammzellen (ES) der Maus (Mus musculus129 x Mus castaneus) vorgestellt. Die monoallelische Deletion, das Screening und die Expressionsanalyse werden durch Einzelnukleotid-Polymorphismen (SNP) zwischen den beiden Allelen erleichtert, die in diesen Zellen durchschnittlich alle 125 bp auftreten.