Method Article

Eine schnelle und effiziente Methode zur Reinigung von Entodermzellen generiert aus humanen embryonalen Stammzellen

DOI:

10.3791/53655

March 3rd, 2016

In This Article

Summary

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Hier beschreiben wir ein Verfahren zur Reinigung von differenzierten humanen embryonalen Stammzellen, die in Richtung der endgültigen Endoderm zur Verbesserung der Downstream-Anwendungen und weitere Differenzierungen begangen werden.

Abstract

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Die Differenzierung Fähigkeiten von pluripotenten Stammzellen wie embryonale Stammzellen (ES-Zellen) ermöglichen eine mögliche therapeutische Anwendung für Zell-Ersatz-Therapien. Ausdifferenzierten Zelltypen könnten für die Behandlung von verschiedenen degenerativen Krankheiten verwendet werden. In vitro Differenzierung dieser Zellen gegenüber Geweben der Lunge, der Leber und der Bauchspeicheldrüse erfordert als ersten Schritt die Erzeugung von endgültigen endodermalen Zellen. Dieser Schritt ist geschwindigkeitsbestimmend für die weitere Differenzierung zu endständig gereiften Zelltypen, wie beispielsweise Insulin-produzierenden Beta-Zellen, Hepatozyten oder anderen Endoderm-abgeleiteten Zelltypen. Die Zellen, die in Richtung der endoderm Linie verpflichtet sind ausdrücken sehr eine Vielzahl von Transkriptionsfaktoren wie FOXA2, SOX17, HNF1B, die Mitglieder der GATA-Familie, und der Oberflächenrezeptor CXCR4. Allerdings Differenzierungsprotokolle sind selten 100% effizient. Hier beschreiben wir ein Verfahren zur Reinigung eines CXCR4 + Zellpopulation nach der Differenzierungin der DE durch magnetische Mikrokugeln verwendet. Diese Reinigung entfernt zusätzlich Zellen von unerwünschten Linien. Die sanfte Reinigungsverfahren ist schnell und zuverlässig und kann verwendet werden, Downstream-Anwendungen und Differenzierungen zu verbessern.

Introduction

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Pluripotente Stammzellen wie embryonale Stammzellen (ES-Zellen) haben die Fähigkeit, in nahezu jedem Zelltyp des menschlichen Körpers zu unterscheiden. Somit können in vitro Differenzierungsprotokollen verwendet werden , um zahlreiche adulten Zelltypen wie Kardiomyozyten 1, Hepatozyten 2, beta - Zellen 3, 4 oder Lungenepithelzellen neuronalen Zellen 5 erzeugen. Dies macht WSR ein wertvolles Werkzeug für die mögliche Behandlung von verschiedenen degenerativen Erkrankungen 3.

Die in vitro Differenzierung von ES- Zellen gegenüber adulten Geweben der Lunge, de....

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Protocol

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1. Differenzierung humaner ESC in Richtung Definitive Endoderm

  1. Kultivieren humaner embryonaler Stammzellen ( ES- Zellen) in einem Inkubator bei 37 ° C und 5% CO 2.
  2. Mantel ein neues 6-Well-Zellkulturplatte mit 1 ml einer Basalmembranmatrix und brüten die Kultur-ware für mindestens 30 min bei RT. Für spezielle Informationen wenden Sie sich an die Anweisungen des jeweiligen Herstellers.
  3. Bestätigen Sie, dass die kultivierten menschlichen WSR 80% -90% Konfluenz unter dem Mikroskop erreicht haben eine geringe Vergrößerung (zB, 4X). Anzusaugen, das Medium aus den Hohlräumen durch das Medium mit einer sterilen Pasteur-Glaspi....

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Results

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Bei der Differenzierung WSR laufen drastischen Veränderungen in der Gen und Proteinexpression. Figur 1 typische Markergene darstellt , die verwendet werden können , eine erfolgreiche Endoderm Differenzierung zu verifizieren. Prime Ziele für eine Genexpressionsanalyse sind GSC, FOXA2 und SOX17. In einer relativen Analyse der Genexpression insbesondere FOXA2 und SOX17 erhöht von> 2.000 - fache , wenn sie un.......

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Discussion

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Derzeit verwendete Differenzierungsprotokolle ergeben sich selten 100% differenzierte Zellen. Aus Gründen, die noch einige Zellen angesprochen werden müssen widerstehen, den Differenzierungsprozess. Abhängig von der Effizienz der verwendeten Differenzierungsprotokoll und die Neigung des ESC Zeile eine bestimmte Anzahl von Rest pluripotenten Zellen häufig beobachtet werden, selbst nach der Differenzierung in die definitive Entoderm. Diese Restzellen können nachgeschaltete Differenzierungen beeinträchtigen oder weitere An.......

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Disclosures

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Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Acknowledgements

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Die geschickte technische Unterstützung von Jasmin Kresse wird dankbar anerkannt.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Hues8 humane embryonale StammzelllinieHarvard Department of stem cell & regenerativeGeeignete Zelllinie für die Endodermgenerierung
Hes3 humane embryonale StammzelllinieES Cell InternationalGeeignete und robuste Zelllinie für die Endodermgenerierung
mTeSR1Stemcell Technologies5850ESC Kulturmedium
FCSBiowestS1860
Advanced RPMI 1640Life Technologies12633012
CD184 (CXCR4)-APC, humanMiltenyi Biotec130-098-357
Anti-APCMicroBeads Miltenyi Biotec130-090-855 
OctoMACS SeparatorMiltenyi Biotec130-042-109Magnetfeld
Y-27632Selleck ChemicalsS1049ROCK-Inhibitor
CHIR-99021Tocris Bioscience4423
Activin APeprotech120-14
Reagenz für sanfte ZelldissoziationStemcell Technologies7174Enzymfrei Passaging-Lösung, alternativ: Trypsin/EDTA
Matrigel*Corning354277Basalmembranmatrix
* lösen und in Aliquoten bei -80 &° lagern; C wie im Lieferantenhandbuch beschrieben. Nach Gebrauch auf Eis auftauen, in 25 ml eiskaltem Knockout-Knockout DMEM/F-12 verdünnen.
1 ml in jede Vertiefung einer 6-Well-Platte geben und 45 min bei Raumtemperatur inkubieren.
Das Matrigel entfernen und sofort verwenden.
MS SäulenMiltenyi Biotec30-042-201
MACS SeparatorMiltenyi Biotec130-042-302
Mensch FOXA2 FW
gggagcggtgaagatgga
Life TechnologiesNA
Mensch FOXA2 REV
tcatgttgctcacggaggagta
Life Technologies
Human GSC FW
gaggagaaagtggaggtctggtt
Leben Technologien
Human GSC REV
ctctgatgaggaccgcttctg
Life Technologies
SOX17 TaqMan AssayAngewandte BiosystemeHs00751752_s1
Human SOX7 FW
gatgctgggaaagtcgtggaagg
Life Technologies
Human SOX7 REV
tgcgcggccggtacttgtag
Life Technologies
Human POU5F1 FW
cttgctgcagaagtgggtggagg
Life Technologies
Human POU5F1 REV
ctgcagtgggtgtttcgggca
Life Technologies
Human Nanog FW
ccgagggcagacatcatcc
Life Technologies
Human Nanog REV
ccatccactgccacatcttct
Life Technologies
Human TBP FW
caa cag cct gcc acc tta cgc tc
Life Technologies
Human TBP REV
agg ctg tgg ggt cag tcc agt g
Life Technologies
Human TUBA1A FW
ggc agt gtt tgt aga ctt gga acc c
Life Technologies
Human TUBA1A REV
tgt gat aag ttg ctc agg gtg gaa g
Life Technologies
Human G6PD FW
agg ccg tca cca aga aca ttc a
Life Technologies
Human G6PD REV
cga tga tgc ggt tcc agc cta t
Life Technologies
Anti-SOX2Santa Cruz Biotechnologiesc-17320
Anti-FOXA2MerckMillipore07-633
Anti-SOX17R& D SystemsAF1924
biology

References

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  1. Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J Vis Exp. (97), (2015).
  2. Sgodda, M., et al.

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Endoderm Cell PurificationHuman Embryonic Stem CellsCXCR4 Positive CellsMagnetic Bead SeparationDefinitive Endoderm DifferentiationFlow Cytometry AnalysisBasement Membrane CoatingROCK Inhibitor SupplementationCell Surface MarkerEndoderm Induction Medium

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