Der Zebrafisch (Danio rerio) ist ein leistungsfähiger Modellorganismus, um die Entwicklung von Wirbeltieren zu untersuchen. Obwohl viele Aspekte der Embryonalentwicklung von Zebrafischen auf morphologischer Ebene beschrieben wurden, ist wenig über die molekularen Grundlagen der zellulären Veränderungen bekannt, die im Laufe der Entwicklung des Organismus auftreten. Mit den jüngsten Fortschritten in der Mikrofluidik und Multiplexing-Technologie ist es nun möglich, die Genexpression in einzelnen Zellen zu charakterisieren. Dies ermöglicht die Untersuchung der Heterogenität zwischen einzelnen Zellen spezifischer Zellpopulationen, um Zellsubtypen zu identifizieren und zu klassifizieren, Zwischenzustände zu charakterisieren, die während der Zelldifferenzierung auftreten, und differentielle zelluläre Reaktionen auf Reize zu erforschen. Diese Studie beschreibt ein Protokoll zur Isolierung lebensfähiger, einzelner Zellen aus Zebrafischembryonen für Hochdurchsatz-Multiplexing-Assays. Diese Methode kann schnell auf jeden embryonalen Zelltyp des Zebrafisches mit fluoreszierenden Markern angewendet werden. Eine Erweiterung dieser Methode kann auch in Kombination mit Hochdurchsatz-Sequenzierungstechnologien verwendet werden, um das Transkriptom einzelner Zellen vollständig zu charakterisieren. Als Beweis für das Prinzip wurde die relative Häufigkeit von kardialen Differenzierungsmarkern in isolierten, einzelnen Zellen untersucht, die von nkx2,5 positiven kardialen Vorläuferzellen abgeleitet wurden. Durch die Auswertung der Genexpression auf Einzelzellebene und zu einem einzigen Zeitpunkt unterstützen die Daten ein Modell, in dem kardiale Vorläuferzellen mit differenzierenden Nachkommen koexistieren. Die hier beschriebene Methode und der Arbeitsablauf sind auf breiter Basis für die Zebrafisch-Forschungsgemeinschaft anwendbar und erfordern lediglich eine markierte transgene Fischlinie und Zugang zu Mikrofluidik-Technologien.