Menschliche primäre Zottenzytotrophoblasten sind eine sehr nützliche Quelle für Primärzellen, um Plazentafunktionen und Regulationsmechanismen zu untersuchen und Krankheiten im Zusammenhang mit Schwangerschaft zu verstehen. In diesem Protokoll werden humane primäre Zottenzytotrophoblasten, die frisch aus der Plazenta durch ein Standard-DNase/Trypsin-Protokoll isoliert wurden, mit kleiner interferierender RNA (siRNA) mikroporiert. Dieser Ansatz führte zu einer höheren Effizienz der siRNA-Transfektion im Vergleich zu einer auf Lipofektion basierenden Methode. Transfizierte Zellen können anschließend innerhalb eines Zeitrahmens von 3-4 Tagen nach der Transfektion mittels Standard-Western-Blot analysiert werden. Darüber hinaus wurde unter Verwendung kultivierter primärer villöser Zytotrophoblasten die EMSA-Analyse (Electrophoretic Mobility Shift Assay) optimiert und an Extrakten von Tag 1 bis 4 durchgeführt. Die Verwendung dieser kultivierten Primärzellen und das beschriebene Protokoll ermöglichen eine Bewertung der Bedeutung spezifischer Gene und Transkriptionsfaktoren im Prozess der Differenzierung von villösen Zytotrophoblasten in eine Synzytiotrophoblasten-ähnliche Zellschicht. Die begrenzte Zeitspanne, die in der Kultur zulässig ist, schließt jedoch die Verwendung von Methoden aus, die mehr Zeit erfordern, wie z. B. die Erzeugung einer stabilen Zellpopulation. Daher erfordert die Untersuchung dieser Zellpopulation hochoptimierte Gentransferprotokolle.