Dieser Bericht stellt zwei Methoden für die kovalente Immobilisierung von Fänger-Antikörper auf Zellulosefilterpapierqualität No. 1 (mittel-Flow-Filterpapier) Scheiben und Qualität Nr 113 (Fast-Flow-Filterpapier) Discs. Diese Cellulosepapierscheiben wurden gepfropft mit funktionellen Amingruppen durch eine Silan-Kopplungstechnik bevor die Antikörper auf ihnen immobilisiert wurden. Periodat-Oxidation und Glutaraldehyd-Vernetzungsverfahren wurden verwendet, Capture-Antikörper auf den Cellulosepapierscheiben zu pfropfen. Um die maximale Bindungskapazität der Einfang-Antikörper an ihre Ziele nach der Immobilisierung wurden die Wirkungen verschiedener Konzentrationen von Natriumperiodat, Glutaraldehyd und Capture-Antikörper auf der Oberfläche der Papierscheiben wurden, um sicherzustellen, untersucht. Die Antikörper, die an den Amin-funktionalisierte Cellulose-Papierscheiben durch eine Glutaraldehyd-Vernetzungsmittel beschichtet wurden, zeigten Bindungsaktivität an die Ziel verbessert, wenn an die Periodat-Oxidationsverfahren im Vergleich. IgG (in Maus-Referenzserum) wurde als Referenzziel in dieser Studie verwendet, um die Anwendung der kovalent immobilisierte Antikörper durch Glutaraldehyd zu testen. Eine neue Papierbasis, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) wurde für den Nachweis von IgG erfolgreich entwickelt und validiert. Dieses Verfahren erfordert keine Ausrüstung, und es kann 100 ng / ml IgG erkennen. Der Fast-Flow-Filterpapier war empfindlicher als die mittlere Stromfilterpapier. Die Inkubationszeit dieses Tests war kurz und benötigt kleine Probenvolumina. Diese mit bloßem Auge kann colorimetrischen Immunoassays erweitert werden, um andere Ziele zu erkennen, die mit konventionellen ELISA identifiziert werden.