Methodenartikel

Maus Mikroinfusionstechnik für Zielsubstanz Lieferung in das ZNS über Die Arteria carotis interna

DOI:

10.3791/54804

31. Januar 2017

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Das vorliegende Protokoll beschreibt eine mikrochirurgische Infusionstechnik für Mäuse, die effektiv Substanzen direkt über die Arteria carotis interna in das Gehirn abgibt.

Zusammenfassung

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Tiermodelle für Erkrankungen des Zentralnervensystems (ZNS) und folglich für Erkrankungen der Blut-Hirn-Schranke erfordern die Abgabe exogener Substanzen in das Gehirn. Diese exogenen Substanzen können schädliche Auswirkungen haben oder eine therapeutische Strategie darstellen. Die gebräuchlichsten Verabreichungsmethoden von exogenen Substanzen in das Gehirn basieren auf systemischen Verabreichungen, wie z. B. subkutanen oder intravenösen Verabreichungen. Obwohl diese Ansätze häufig verwendet werden, haben sie mehrere Einschränkungen, darunter eine geringe Wirksamkeit der Abgabe an das Gehirn. Im Gegensatz dazu sind chirurgische Methoden, die Substanzen lokal in das ZNS einbringen, spezifischer und verhindern die Aufnahme der exogenen Substanzen durch andere Organe. Es stehen mehrere chirurgische Methoden für die ZNS-Verabreichung zur Verfügung; Sie neigen jedoch dazu, sehr traumatisch zu sein. Hier beschreiben wir eine mikrochirurgische Infusionstechnik der Maus, die Substanzen effektiv über die Arteria carotis interna in das Gehirn abgibt, mit minimalem Trauma und ohne Beeinträchtigung der normalen ZNS-Funktionalität.

Einleitung

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In - vivo - Modellen des zentralen Nervensystems (ZNS) Erkrankungen erfordern eine effektive Bereitstellung von exogenen Substanzen, wie Medikamente, Krankheitserreger oder Exosomen, in das Gehirn. Daher sollte eine ideale Übermittlungsmethode minimalem Trauma für das Tier veranlassen, um die Integrität des neuronalen Netzes zu erhalten, und eine hohe Stoffkonzentrationen im Gehirn 1 erzielen.

Mehrere chirurgische Methoden der lokalen Substanzabgabe beschrieben wurden, einschließlich intra-Mantel, intrazerebrale und intraventrikuläre Injektionen oder Implantate 2, 3, 4, 5. Diese Ansätze sind jedoch als traumatisches zum ZNS und ermöglichen die Verabreichung von nur geringen Mengen der Substanz von Interesse. Außerdem wurde vorgeschlagen , dass exogene Substanzen können schnell durch die Zerebrospinalflüssigkeit 6 entfernt werden , und eine geringe Penetrationsbereich zum Hirnparenchym wurde 7 beobachtet, wenn die oben genannten Techniken eingesetzt werden. Systemische Liefermethoden, wie orale, pulmonale, subkutane und intravenöse Wege, sind häufiger in Tiermodellen verwendet, obwohl sie bei der Bereitstellung der Substanzen in das ZNS geringe Wirksamkeit aufweisen, aufgrund von anderen Organen Aufnahme 8, 9. Daher erfordern diese Verabreichungswege erhöhten Dosen der Substanzen verabreicht, 10 das Risiko von Nebenwirkungen und Toxizität zu, 11.

Hier beschreiben wir eine Maus Infusionsmikrotechnik, die effektiv Substanzen direkt in das Gehirn über die Arteria carotis interna liefert. Zusätzlich zu der Abgabe an das ZNS Targeting, ist diese Technik nicht die normale physiologische Barrieren umgehen und ist daher von großer Bedeutung für biological Prozesse in den Passagen von Therapeutika oder Krankheitserreger in das Gehirn beteiligt.

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Protokoll

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Die Verfahren in dem folgenden Protokoll beteiligt wurden von der University of Miami Institutional Animal Care und Use Committee (IACUC) zugelassen. Darüber hinaus werden alle Verfahren in Einrichtungen werden von der Gesellschaft für Evaluierung und Akkreditierung von Labor Animal Care International (AAALAC) genehmigt durchgeführt.

1. Herstellung von Mäusen für Chirurgie

  1. Anesthetize Maus mit Isofluran mit Sauerstoff gemischt, ein Labor, Anästhesie-System. Verwenden Sie Isofluran bei zwischen 4-5% und Sauerstoffstrom bei 2 l / min auf die kommerzielle Maschine einstellen (siehe Werkstoff-Tabelle). Bringen Sie das Tier zu der Operation Oberfläche, unter einem Stereomikroskop und Sustain Anästhesie einen Nasenkegel mit (verwenden Isofluran Einstellung 1,5-2,5 und Sauerstoffstrom bei 2 l / min).
    1. Stellen Sie sicher, dass die Maus Atemfrequenz liegt bei etwa 1 bis 2 Atmung / sec ohne Keuchen. Darüber hinaus gewährleisten, dass das Tier nicht Whiskers Stimulation nicht aufweist Reaktion und Pedal reflex (toe Prise). Überwachen Sie die Atemfrequenz und Aufwand während der Operation, mindestens alle 5 Minuten. Folgen Sie spezifische Institutional Animal Care und Use Committee und Veterinär Richtlinien zur Bekämpfung von Nagetieren Anästhesie Überwachung.
  2. Einen Tropfen ophthalmische Schmiermittel auf jedes Auge einen sterilen Tupfer, um mit Trockenheit zu verhindern. Verabreichung von entzündungshemmenden und schmerzlindernden Beschwerden zu lindern empfohlen.
  3. Mit dem Tier auf dem Rücken liegend, halten Anästhesie einen Nasenkegel verwenden.
  4. Reinigen Sie den Nackenbereich des Tieres durch Abwischen der Fläche, die dreimal mit Ethanol 70% und Chlorhexidin. Rasur der OP-Bereich des Tieres unter Verwendung einer Rasierklinge (siehe unten).

2. Dissektion der Arteria carotis communis (CCA)

  1. Führen Sie die gesamte mikrochirurgisches Verfahren unter einem Stereomikroskop. Mit chirurgische Scheren und Pinzetten führen eine flache Mittelschnitt im Nacken, von oberhalb des Brustbeins auf unter ter Backe (ca. 3 bis 4 cm).
  2. Mit einer Pinzette vorsichtig getrennten Fett- und Bindegewebe, um die Luftröhre aus.
  3. Legen Sie ein Kissen (rundes Objekt, etwa 0,5 cm im Durchmesser) auf der Rückseite des Halses der Maus, um den Hals zu verlängern, das weiterhin den Bereich auszusetzen.
  4. Trennen Sie das Gewebe entweder eine Geweberetraktor oder Haken.
  5. Auf der linken Seite der Trachea des Tieres, tweeze sorgfältig das Bindegewebe neben den linken CCA zu belichten.
  6. Mit einer Pinzette vorsichtig entfernen alle Bindegewebe der CCA Gabelung, und den Beginn der externen und internen Arteria carotis zu belichten.

3. Vorbereitung des CCA für Substanz Infusion

  1. Legen Sie zwei Segmente von Nylonfaden (ca. 1 cm jeweils) unter A. carotis externa (ECA), mit einer Pinzette.
  2. Legen Sie ein dauerhafter Knoten am höchsten Punkt möglich von der ECA.
  3. Am tiefsten Punkt möglich des ECA, unmittelbar über dem CCA Bifurkation Orteinen abnehmbaren Knoten. Dieser Knoten sollte locker sein im Vergleich zu dem oberen Knoten.
  4. Schließen Sie die CCA einen Behälter Clip, am tiefsten Punkt.
  5. Schließen Sie die A. carotis interna (ICA) mit einem Schiff Clip.
  6. Mit microdissection Feder Schere führen Sie einen kleinen Schnitt in der ECA (ca. 2 mm), zwischen den beiden Knoten.

4. Substanz Infusion über ICA

  1. Zubauen ein Infusionssystem. Bringen Sie 6 Zoll Kapillarschlauch (ideal Abmessungen: 2,5 mm x 1,2 mm) auf eine Tuberkulin-Spritze 250 & mgr; l der Substanz vorsichtig und legen Sie die Kapillarspitze in den Einschnitt infundiert (unter anderem Medikamente, Krankheitserreger, extrazellulären Vesikeln) ausgeführt werden in Schritt 3.6.
  2. Weiter die Kapillare nach unten rutschen, bis sie einen Mittelpunkt zwischen der Gabelung erreicht und den Clip des CCA zu schließen.
  3. Binden Sie den unteren ECA Knoten. Stellen Sie sicher, dass der Knoten locker genug ist Kapillare Fluidität und dicht genug, um zu verhindern, dass leakinG.
  4. Entfernen Clip aus dem ICA.
  5. Durch leichten Druck auf den Spritzenkolben zu ermöglichen Substanz Infusion etwa 10 & mgr; l pro Sekunde.

5. Nach Infusion Verfahren

  1. Platz Clip auf der ICA zurück.
  2. Entfernen Sie vorsichtig die Kapillarschlauchs.
  3. Binden Sie den unteren ECA Knoten vollständig.
  4. Entfernen Sie Clips aus dem ICA und der CCA.

6. Incision Closing und postoperative Pflege

  1. Entfernen Aufroller oder Gewebehaken und Kissen.
  2. Saubere Nahtbereich mit einer sterilen Kochsalzlösung.
  3. Schließen Sie den Schnitt mit Nylonfaden / Nadel und Pinzette.
  4. Verabreichen entzündungshemmende und analgetische postoperative Beschwerden zu lindern.
  5. Tier in den Käfig auf Heizkissen gelegt für mindestens 1 Stunde und Monitor Erholung.

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Ergebnisse

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Die Maus Infusions Mikrochirurgie hier beschriebene Technik ist sehr vielseitig und verwendet wurde , verschiedene Stoffe zu liefern , direkt in das Gehirn, einschließlich der Lieferung von Tumorzellen in einem repräsentativen Modells der Hirnmetastasenbildung 1, 12.

Diese Technik ist auch geeignet, um die pathologischen Aspekte verschiedener Krankheitserreger im ZNS z...

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Diskussion

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Die Infusions Mikrochirurgie hier beschrieben wurde , erwies sich bei der Bereitstellung von exogenen Substanzen verschiedener biologischer Funktionen in das ZNS sehr erfolgreich zu sein, verhindert unerwünschte Verbreitung im ganzen Körper 1, 12. Störung der Blut-Hirn-Schranke ist ein pathologisches Merkmal mehrerer ZNS zusammenhängenden Krankheiten; daher die Beurteilung der Beziehung von exogenen Substanzen mit dem Blut-Hirn-Schranke ist von großer Bedeutung ...

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Offenlegungen

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Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

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Wir möchten uns bei Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine am Mount Sinai, NY) bedanken, der die Verwendung dieses Modells zuerst in unserem Labor etabliert hat, und bei Dr. Gretchen Wolff (Deutsches Krebsforschungszentrum, Heidelberg, Deutschland) für die Verbreitung der Technik in unserem Labor. Teilweise unterstützt von HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569 und NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Instrument für AnästhesieVetequip901806
Chirurgische SchereFine Science Tool14558-09
Chirurgische Zange mit gerader SpitzeFine Science Tool00108-11
Chirurgische Zange mit abgewinkelter SpitzeFine Science Tool00109-11
FederschereFine Science Tool15000-08
Nylon-NahtmaterialBraintree ScientificSUT-S 104
Kapillarschlauch (Mikro-Renathan 0,010" x 0,005" pro Fuß) BraintreeScientific MRE01050
NahtverschlussVWR95057-036
IsofluranPiramal
2,3,5-TriphenyltetrazoliumchloridFisherScientific50-121-8005

Referenzen

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  1. Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research. J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).
  2. Frisella, W. A., et al. Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII. Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).
  3. Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke. Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).
  4. Wu, G., et al. Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates. Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).
  5. Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).
  6. Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain. J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).
  7. Pardridge, W. M. Drug and gene delivery to the brain: the vascular route. Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).
  8. Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells. Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).
  9. Huang, R. Q., et al. Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer. FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).
  10. Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain. Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).
  11. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).
  12. Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels. Biol Trace Elem Res. , (2015).

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Schlagwörter

Substanzapplikation im ZNSchirurgische TechnikGef kan lierungKapillarinfusionexogene SubstanzBlut Hirn Schrankeminimales TraumaNeurowissenschaftliche Forschung

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