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Methodenartikel

Biolumineszenz-Bildgebung von Neuroinflammation in transgenen Mäusen nach peripherer Inokulation von Alpha-Synuclein

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DOI:

10.3791/55503

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13. April 2017

 ,  ,  ,  ,  , 
1German Center for Neurodegenerative Diseases (DZNE), 2Centre for Prions and Protein Folding Diseases & Department of Biochemistry, University of Alberta

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Periphere Injektion von alpha-Synuclein - Fibrillen in das Peritoneum oder die Zunge von Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) Mäuse, der humanen alpha-Synuclein mit der familial A53T - Mutation exprimieren und Glühwürmchen - Luciferase kann Neuropathologie, einschließlich neuroinflammation induziert in ihrem Zentralnervensystem.

Zusammenfassung

Um das Prion-ähnliches Verhalten von falsch gefalteten alpha-Synuclein, Mausmodelle zu studieren benötigt werden, mit denen eine schnelle und einfache Übertragung von alpha-Synuclein prionoids, die Neuropathologie im Zentralnervensystem (ZNS) führen. Hier beschreiben wir das intraglossal oder intraperitoneale Injektion von alpha-Synuclein - Fibrillen in bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) Mäuse, die humanen alpha-Synuclein mit der A53T - Mutation aus dem Prionprotein - Promotor überexprimieren und Glühwürmchen - Luciferase aus der Promotor für gliales fibrilläres saures Protein (GFAP), ist ausreichend , um neuropathologische Erkrankung zu induzieren. Im Vergleich zu homozygot Tg (M83 + / +) Mäusen , die Anfang schwere neurologische Symptome im Alter von 8 Monaten, heterozygot Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) entwickeln Tiere bleiben frei von spontaner Krankheit , bis sie ein erreichen Alter von 22 Monaten. Interessanterweise ist die Injektion von alpha-Synuclein-Fibrillen über die intraperitoneMäuse , die mit einer medianen Inkubationszeit von 229 ± 17 Tagen: al Route neurologische Erkrankung mit Paralyse in vier von fünf Tg (GFAP -Luc +/- +/- M83) induziert. Erkrankte Tiere zeigten schwere Ablagerungen von phosphoryliertem alpha-Synuclein in ihrem Gehirn und Rückenmark. Anhäufungen von alpha-Synuclein waren Sarkosyl-unlösliche und mit Ubiquitin und p62 colokalisiert, und wurden durch eine Entzündungsreaktion begleitet, was zu astrozytären Gliose und Mikrogliose. Überraschenderweise Inokulation von alpha-Synuclein-Fibrillen in die Zunge war weniger wirksam bei der Entstehung von Krankheiten mit nur einer der fünf injizierten Tieren alpha-Synuclein Pathologie nach 285 Tagen zeigen. Unsere Ergebnisse zeigen , dass die Impfung über die intraglossal Strecke und um so mehr über die intraperitoneale Route geeignet ist neurologische Erkrankung mit entsprechenden Kennzeichen Synucleinopathien in Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) zu induzieren Mäuse. Dies stellt ein neues Modell für die Untersuchung Prion-ähnliche Pathogenese induziertD durch alpha-Synuclein prionoids näher.

Einleitung

Es gibt immer mehr Hinweise darauf, dass alpha-Synuclein-Eigenschaften hat, die die des Prion-Protein ähnlich sind, insbesondere in ihrer Fähigkeit zur Selbst Saatgut- und propagiert misfolding zwischen Zellen und Nervenbahnen entlang. Diese Eigenschaft von alpha-Synuclein wird auch als ‚Prion-like‘ oder ‚prionoid‘ genannt, und wird durch Beobachtungen in den Transplantationsexperimenten unterstützt, die die Übertragbarkeit von misfolded alpha-Synuclein von erkrankten Neuronen vorschlagen 1 gesund Neuronen neu transplantierte, 2 , 3, 4. Auch die direkte Injektion von falsch gefalteten alpha-Synuclein in das Gehirn oder den Umfang, beispielsweise die hinteren Gliedmaßen Muskel oder Darmwand, führt zu einer Ausbreitung von alpha-Synuclein Pathologie distale Teile des ZNS , 5, 6, 7, 8, 9, 10. Wir analysierten die Übertragung von alpha-Synuclein prionoids über periphere Routen im Detail und mit der Frage, ob misfolded alpha-Synuclein kann das ZNS nach einer einzigen intraglossal oder intraperitoneale Injektion neuroinvade, eine Funktion, die für Prionen hatte zuvor gezeigt worden, nicht aber für falsch gefaltete alpha- Synuclein. Nach der Injektion von Prionen in die Zunge, Neuroinvasion des ZNS ist über Ausbreitung entlang des Hypoglossus der Zunge erreicht , die an den Kern des Hypoglossus führt, die im Hirnstamm 11 befindet. Als Maus - Modell wählten wir Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) -Mäusen, die die A53T Mutante von menschlichem alpha-Synuclein des Prion Promotor überexprimieren und Firefly unter der Kontrolle eines Promotors GFAP Luciferase durch astrozytischen Aktivierung zu überwachen , Biolumineszenz, wie zuvor im Gehirn gezeigt vonPrion-infizierten Mäusen 12. In unseren Händen bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) entwickelten Mäuse bis zum 23. Lebensmonat nicht Krankheit wie von anderen 13 gezeigt. Eine einzige Injektion von humanen alpha-Synuclein - Fibrillen über die intraglossal oder intraperitonealem Weg induzierte neurologische Erkrankung mit Pathologie im Gehirn und Rückenmark von Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) -Mäusen die Hypothese stützt , dass alpha-Synuclein prionoids teilen wichtige Eigenschaften mit Prionen 14.

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Protokoll

Alle Verfahren einschließlich der Tiere wurden mit Genehmigung des Tierschutzausschusses des Landes Nordrhein-Westfalen Landesumweltamt (LANUV) durchgeführt. Die Tiere wurden untergebracht und gepflegt nach Standardbedingungen mit einem 12 h Hell / Dunkel-Zyklus und freiem Zugang zu Futter und Wasser.

1. Tiermodell

  1. Einander kreuzen hemizygot Tg (GFAP -Luc +/-) -Mäusen mit hemizygot Tg (M83 +/-) -Mäusen hemizygot bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) zu erzeugen Mäuse 15, 16.
  2. Genotypisierung der Nachkommenschaft mit Echtzeit - PCR auf die Anwesenheit des Transgens , kodierend menschliches alpha-Synuclein und mit Standard - PCR für Firefly - Luciferase 12, 17.
  3. Impfen die Tiere im Alter von sechs bis acht Wochen.

2. Inokulumherstellung

  1. bereiten Sie monomeric rekombinantes humaner alpha-Synuclein mit der A53T - Mutation in Tris-gepufferter Salzlösung (TBS) -Puffer , enthaltend 150 mM NaCl in 20 mM Tris-HCl (pH 7,2) , wie zuvor beschrieben 14 gewesen ist.
  2. Bereiten fibrillären alpha-Synuclein für Inokulationen durch Rühren 3 & mgr; g / & mgr; l rekombinantes humanes monomeres alpha-Synuclein in einem Orbitalschüttler bei 800 Umdrehungen pro Minute und 37 ° C für 5 Tage.
  3. Verdünnte Fibrille Baugruppen in phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) auf eine Endkonzentration von 1 & mgr; g / & mgr; l für die intraperitoneale oder 2 & mgr; g / & mgr; L für intraglossal Inokulationen zu erreichen.
  4. Fragment, das die alpha-Synuclein-Fibrillen mit einer Beschallungsvorrichtung Stange für 1 min (40 Pulse von 0,5 s Dauer mit einer Pause von einer Sekunde zwischen jedem Impulse und einer Amplitude auf 50%) auf Eis. Um eine Kontamination durch Kreuz Aussaat zu vermeiden. Verwenden Sie saubere Beschallungssonden unterschiedliche Inokulum herzustellen.

3. Intraglossal Injections

  1. Anesthetize Tiere mit einer intraperitoneal Injektion von 100 mg / kg Ketamin und 10 mg / kg Xylazin. Drücken Sie den Zeh des Tieres und bestätigen, dass es nicht seine hindlimb nicht entziehen richtige Anästhesie zu gewährleisten. Verwenden Sie vet Salbe auf die Augen des Tieres Trockenheit zu verhindern, während der Narkose.
  2. Fix narkotisierten Tiere vorsichtig mit Klebeband auf eine Heizplatte in einer dorsalen liegenden Position mit ihren Köpfen gegenüber dem Untersucher zugewandten.
  3. Füllen Sie eine 27 G Einweginjektionsspritze mit 5 ul von beschallten alpha-Synuclein-Fibrillen oder PBS.
  4. Verwenden Sie eine stumpfnasige Pinzette mit geriffelten Spitzen des Tieres Mund geöffnet zu halten, und eine zweiten kleinere Pinzette vorsichtig herausziehen, die Zunge an der Unterseite der Zunge zugänglich für die Injektion zu machen.
  5. Injizieren, um die Nadel der Spritze in die rechte oder untere Seite der Zunge in der Nähe des Hypoglossus gelassen. injizieren Sie langsam die Inokulum nach 5 s. einfahren die Nadel langsam nach 5 s, dass der Impfstoff, um sicherzustellen,das Gewebe eingedrungen ist und nicht verloren geht, während die Nadel zurückgezogen wird.
  6. Lassen Sie das Tier von seinen Fixierungen und lassen Sie es auf der Heizplatte unter ständiger Überwachung bis zum vollständigen Genesung.

4. intraperitonealeInjektionen

  1. Für intraperitoneale Injektionen, betäubt die Tiere kurz in einem Anästhesieraum durch Inhalation mit Isofluran / Sauerstoff mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 2 L / min und den Verdampfer auf 2% verwendet wird. Drücken Sie den Zeh des Tieres und bestätigen, dass es nicht seine hindlimb nicht entziehen richtige Anästhesie zu gewährleisten.
  2. Füllen Sie eine 27 G Einweginjektionsspritze mit 50 ul von beschallten alpha-Synuclein-Fibrillen oder PBS.
  3. Direkt in das Peritoneum der Maus injizieren und vermeiden den Dünndarm oder Blinddarm hinter der Bauchwand durchdringt, indem das Tier in einer dorsalen Position mit dem Kopfhalt vom Prüfer und nach unten bei etwa 45 ° abgekehrten. Überwachen Tiere, bis sie gewonnen habenaus der Narkose.

5. Biolumineszenz-Bildgebung

  1. Bild Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) -Mäusen alle 2-4 Wochen ein Biolumineszenz - Bilderzeugungssystem verwendet wird .
  2. Kurz vor der Bebilderung anästhesieren Mäuse in einer Isofluran / Sauerstoff-Kammer mit einer Fließgeschwindigkeit von 2 L / min und dem Verdampfer auf 2% eingestellt. Drücken Sie den Zeh des Tieres und bestätigen, dass es nicht seine hindlimb nicht entziehen richtige Anästhesie zu gewährleisten.
  3. Shave und enthaart die Köpfe der Mäuse mit einer Enthaarungscreme. Färben Sie die Ohren in schwarz mit einem nicht reizend Marker unspezifisch Biolumineszenz zu blockieren.
  4. Verdünnte D-Luciferin-Kaliumsalz, um das Substrat der Luciferase, in PBS auf 30 mg / ml Stammlösung. Speicher dieses in 1 ml Aliquots bei -20 ° C. Schützen die gelöste D-Luciferin aus der Exposition gegenüber Licht.
  5. Wiegen Sie die Tiere vor der Injektion. Berechnen das genaue Volumen von D-Luciferin zur Injektion von 150 mg / kg Körpergewicht. Intraperitoneal D injizieren-luciferin und das Tier auf die Anästhesie Kammer zurück.
  6. Starten Sie die Imaging-Software. Nachdem das Abbildungssystem seine Betriebstemperatur initialisiert das System durch Klicken auf den ‚Initialize‘ -Taste auf dem Bedienfeld erreicht hat.
  7. Wählen Sie die ‚Lumineszente‘ Tasten und ‚Fotografie‘. Stellen Sie die Belichtungszeit auf 60 s, den Binning ‚Medium‘, das F / Stop auf ‚1‘, und der EM-Verstärkung auf ‚Aus‘.
  8. Bestätigen, dass das Anregungsfilter wird auf ‚Block‘ und den Emissionsfilter auf ‚Öffnen‘ und stellen den Gegenstand Höhe bis 1,50 cm.
  9. Zehn Minuten nach der Injektion mit D-Luciferin, legen die Tiere auf die Heizplatte in der Abbildungskammer und sicherstellen, dass ihre Mündungen richtig in der Anästhesie Auslass angeordnet. Schließen Sie die Isofluran / Sauerstoff-Strömung von der Inhalationskammer öffnen und die Strömung für die Abbildungskammer mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 0,25 l / min und einer Verdampfung von 2%. Schließen der Tür der Abbildungskammer properly.
  10. Klicken Sie auf das ‚Acquire‘, um die Biolumineszenz zu messen, die 60 s dauert. Stoppen Sie die Isofluran-Flow und überwachen die Tiere, bis sie vollständig nach ihnen Rückkehr in ihre Käfige zurück erholt haben.
  11. Verwenden der Abbildungssoftware auf die Biolumineszenz zu quantifizieren. Innerhalb der ‚Werkzeugpalette‘ die Option ‚ROI Tool‘. Unter ‚Typ‘ innerhalb der ‚ROI Tools‘ wählen ‚Mess ROI‘.
  12. Innerhalb der ROI Tool 'klicken Sie auf das „Kreis“ Werkzeug und wählen Sie die Anzahl der ROIs aus dem Pull-Down-Menü zu ziehen - im Idealfall ‚3‘ für drei Mäuse.
  13. Im Bild der rechte Maustaste jeder ROI und unter ‚Eigenschaften‘ die Breite und Höhe bis 1,25 cm einzustellen. Positionieren Sie jeden ROI über den Bereich des Gehirns, die quantifiziert.
  14. In der oberen linken Ecke des Bildes, stellte die Einheiten Blech an Strahlung (Photonen) '.
  15. Innerhalb der ‚Werkzeugpalette‘ die Option ‚Bildeinstellungen‘ und das Minimum einstellen unddas Maximum der ‚Farbskala‘, zum Beispiel von 0.20e6 zu 1.00E6.
  16. Unter ‚Datei‘ die Daten mit ‚Speichern‘ speichern.

6. Biochemische Analyse

  1. Isoliert das Gehirn und Rückenmark nach etablierten Protokollen 18, 19.
  2. Homogenisiert gesamtes Gehirn und Rückenmark ganze Proben separat in PBS in Gegenwart von Protease und Phosphatase-Inhibitoren (verdünnt in PBS auf 1x) in zwei 30-s-Zyklen in einem Gewebe-Homogenisator mit 6000 Umdrehungen pro Minute. Stellen Sie sicher, dass das Gehirn und Rückenmark-Proben bis zu einer Endkonzentration von 20% homogenisiert werden (wt / vol).
  3. Beschallen die Proben zweimal, während sie auf Eis mit einem konstanten Puls von 10 s und einer Amplitude auf 50% zu halten.
  4. Paßt die Homogenate zu 10% in PBS und 750 mM NaCl verdünnt, indem sie 1: 1 mit 1,5 M NaCl in PBS.
  5. Um die Zelltrümmer abzutrennen Zentrifugation der Homogenate bei 1.000 xg für 5 min bei4 ° C. Halten Sie die Überstände für die nächsten Schritte und verwerfen die Pellets.
  6. Messung der Proteinkonzentration in den Homogenaten die Bicinchoninsäure (BCA) -Assay unter Verwendung von nach den Anweisungen des Herstellers. Inkubieren 1,0 mg des Gesamtproteins von Hirnhomogenaten oder 0,8 mg von Rückenmark-Homogenaten in N-laurylsarcosyl bei einer Endkonzentration von 10% (wt / vol) für 15 Minuten auf Eis.
  7. Überlagern die Homogenate auf eine 3 ml-Saccharose-Kissen von 10% (wt / vol) in destilliertem Wasser und Ultrazentrifuge bei 465,000 x g sie für 1 h bei 4 ° C.
  8. Resuspendieren des Pellets in einem Puffer, enthaltend 4% Natriumdodecylsulfat (SDS), 2% β-Mercaptoethanol, 192 mM Glycin, 25 mM Tris und 5% (wt / Vol) Saccharose.
  9. Kocht die Proben bei 100 ° C für 5 min und laden sie auf SDS-Polyacrylamid-Gele für die Elektrophorese in einem Morpholinethansulfonsäure (MES) Puffer-System.
  10. Übertragen der abgetrennten Proteine ​​auf Polyvinylidendifluorid (PVDF) -Membranen in einer semiDry System Blotting.
  11. Inkubieren der Membranen in 0,4% (vol / vol) Formalin-Lösung in PBS für 30 min bei Raumtemperatur auf einem Rotor, der mit 35 Umdrehungen pro Minute zu vernetzen, die Proteine ​​mit der Membran.
  12. Blockieren die Membranen in TBS-Puffer, enthaltend 0,05% (vol / vol) Tween 20 und 5% (wt / vol) Milch für 1 h bei Raumtemperatur.
  13. Inkubiere die Blots mit dem primären Antikörper in Puffer über Nacht bei 4 ° C blockiert.
  14. Waschen Sie die Membranen dreimal in TBS-Puffer und Inkubation mit Peroxidase oder sie Fluorophor-konjugierten sekundären Antikörpern in TBS für 1 h bei Raumtemperatur.
  15. Visualisieren des gebundenen sekundären Antikörper durch Chemilumineszenz oder Fluoreszenz nach etablierten Protokollen 20.

7. Immunofluoreszenzanalyse

  1. Entwässern das sezierten Gehirn und Rückenmark in einer Gewebebearbeitungsstation und betten sie in Paraffin eine Paraffinstation.
  2. Schneiden Sie das Paraffin eingebettete tisklagt mit einem Mikrotom in 8 & mgr; m dicke koronale Schnitte und die Abschnitte auf Glasobjektträger montieren.
  3. Entparaffinieren Gewebeabschnitte , indem sie in zwei separate Bäder Xylol für 5 bis 10 min und rehydratisieren sie durch eine Reihe von abgestuften Ethanolbäder (100%, 90%, 70%, 50%) und schließlich mit H 2 O. Inkubieren
  4. Inkubieren der Schnitte in 0,01 M Citratpuffer (pH 6,0) für 5 min bei Raumtemperatur und sie zusätzlich für 10 min in einem Mikrowellenofen sieden.
  5. Lassen Sie die Abschnitte abkühlen auf Raumtemperatur und Inkubation sie mit einer 3% igen Wasserstoffperoxid-Lösung für 30 min endogene Peroxidasen zu hemmen.
  6. Blockieren die Gewebeschnitte durch Inkubation mit 20% (vol / vol) normalem Ziegenserum, 1% (vol / vol) Rinderserumalbumin (BSA) und 0,5% Triton X-100 in PBS für 1 h bei Raumtemperatur.
  7. Inkubiere die Abschnitte mit dem primären Antikörper, verdünnt in 1% (vol / vol) normalem Ziegenserum, 1% (Vol / Vol) BSA und 0,25% Triton X-100 in PBS über Nacht bei 4 ° C.
  8. Waschen Sie die Abschnitte zweimal mit 0,25% (vol / vol) Triton X-100 in PBS und einmal mit PBS.
  9. Beflecken die Abschnitte mit den entsprechenden Fluorophor-konjugierten sekundären Antikörpern und dem DAPI Kern Farbstoff verdünnt in 1% (vol / vol) normalem Ziegenserum, 1% (Vol / Vol) BSA und PBS für 1 h bei Raumtemperatur.
  10. zweimal mit 0,25% (vol / vol) Triton X-100 in PBS und einmal mit PBS, das Deckglas die Objektträger mit Einbettungsmitteln und visualisieren die Färbung mit einem konfokalen Laser-Scanning-Mikroskop nach dem Waschen.

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Ergebnisse

Periphere Injektion von alpha-Synuclein prionoids über die Zunge oder das Peritoneum induzierte Neuropathologie im ZNS von bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) -Mäusen (Tabelle 1 und Abbildung 1). Nach einer einzigen intraperitoneale Injektion mit alpha-Synuclein-Fibrillen, vier von fünf Mäusen entwickelten neurologische Erkrankung mit einer mittleren Inkubationszeit von 229 ± 17 Tagen. Überraschenderweise nur einer von fünf...

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Diskussion

Periphere Injektion von alpha-Synuclein - Fibrillen in das Peritoneum von Tg (M83 +/-: GFAP -Luc +/-) -Mäusen stellt ein einfaches Verfahren durch Neuroinflammation begleitet neurologische Krankheit zu induzieren wichtige Eigenschaften von Synucleinopathien rekapitulieren. In ähnlicher Weise stellt Zunge Injektion eine andere Route für die Neuroinvasion von alpha-Synuclein prionoids in transgenen Mäusen ist aber weniger effizient. Wir entschieden uns für unsere Experimente bei 420 Tagen na...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Danksagungen

Die Autoren danken Olga Sharma, Theresa Hundt, und die Mitarbeiter der DZNE-Mikroskopie und Tieranlagen für den technischen Support.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Anti-Aktin-AntikörperMerck MilliporeMAB1501
Anti-Alpha-Synuclein, Phospho S129 Antikörper [pSyn#64]Wako015-25191
Anti-Alpha-Synuclein, Phospho S129 Antikörper [EP1536Y]Abcamab51253
Anti-GFAP AntikörperDakoZ0334 01
Anti-IBA-1 AntikörperWako019-19741
Anti-Sequestosom-1 (p62)-AntikörperProteintech18420-1-AP
Anti-Ubiquitin-Antikörper [Ubi-1]Merck MilliporeMAB1510
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS)Invitrogen14190169
KetaminRatiopharm100 mg/kg
XylazinRatiopharm10 mg/kg
27 G SpritzeVWR613-4900
Isofluran Piramal HealthcarePZN  4831850
EnthaarungscremeVeet
Secureline Labormarker Neolab25040
D-Luciferin KaliumsalzAcrisLK1000030 mg/mL Stammlösung
ThermomixerEppendorf5776671
Sonopuls Mini20 UltraschallgerätBandelin3648
IVIS Lumina II BildgebungssystemPerkinElmer
Living Image 3.0 SoftwarePerkinElmer
Tg(M83+/-) Mäuse oder B6; C3-Tg(Prnp-SNCA*A53T)83Vle/J MäuseThe Jackson Laboratory004479
Pinzetten mit StandardmusterFine Science Tools11000-16
Pinzetten mit schmalem MusterFine Science Tools11002-12
N-laurylasarcosylSigmaL5125-100G
Optima Max-XP UltrazentrifugeBeckman CoulterTLA-110 Rotor 
Dickwandige Polycarbonat-TubenBeckman Coulter362305
NuPAG Novex 4-12% Bis-Tris Midi Protein GelsThermo Fisher ScientificWG1401BOX
HRP konjugierter AntikörperCaymanCay10004301-1
IR Dye 680 konjugierter Antikörper LI-COR Biosciences926-68070
SuperSignal West Dura Extended Duration SubstrateThermo Fisher Scientific34075
Stella 3200 BildgebungssystemRaytest
Odyssey Infrarot-BildgebungssystemLI-COR Biosciences
Tween 20 MP BiomedicalsTWEEN201
Triton X-100SigmaSA/T8787
Immobilon-FL PVDF-MembranMerck MilliporeIPFL00010
XylolSigmaRoth
WasserstoffperoxidSigmaSA/00216763/000500Arbeitslösung 3%
Rinderserumalbumin (BSA)Thermo Fisher ScientificA3294-100G
ZiegenserumThermo Fisher ScientificPCN5000
4,6-Diamidino-2-phenylindol (DAPI)Thermo Fisher ScientificD1306Arbeitsverdünnung 1:50.000
Fluormount-MedienOmnilabSA/F4680/000025
LSM700 konfokales Laser-Scanning-MikroskopCarl Zeiss
HALT Protease- und Phosphatase-InhibitorenThermo Fisher Scientific
Precellys 24-Dual Homogenisator Peqlab91-PCS24D
Alexa Fluor 488 konjugierter AntikörperThermo Fisher ScientificA31619
Alexa Fluor 594 konjugierter AntikörperThermo Fisher ScientificA11005
Pierce  BCA  Eiweiß  Analyse  KitThermo Fisher Scientific10741395
Mikrotom RM2255Leica
LSM700 konfokales Laser-Scanning-MikroskopCarl Zeiss
10516495

Referenzen

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

berwachung von Neuroinflammationtransgenes Mausmodellperiphere InjektionNeuroinflammation im ZNSGFAP Luciferase Reporterintraperitoneale Injektionintraglossale InjektionParkinson Krankheitsmodell
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