Summary
Модифицированный дрожжевой одногибридный анализ, описанный здесь, является расширением классического дрожжевого одногибридного (Y1H) анализа для изучения и проверки гетеромерного белкового комплекса-ДНК-взаимодействия в гетерологичной системе для любого исследования функциональной геномики.
Abstract
На протяжении многих лет дрожжевой одногибридный анализ оказался важным методом идентификации и подтверждения физических взаимодействий между белками, такими как транскрипционные факторы (ТФ) и их ДНК-мишень. Представленный здесь метод использует основную концепцию Y1H, но модифицируется далее для изучения и проверки связывания белковых комплексов с их ДНК-мишенью. Следовательно, он упоминается как модифицированный дрожжевой одногибридный (Y1.5H) анализ. Этот анализ экономичен и может быть легко выполнен в обычной лабораторной обстановке. Несмотря на использование гетерологичной системы, описанный способ может быть ценным инструментом для проверки и проверки связывания гетеромерного белкового комплекса с их ДНК-мишенью (ами) для функциональной геномики в любой системе исследования, особенно в геноме растений.
Introduction
В общем, для понимания взаимодействия белок-ДНК анализ Y1H является предпочтительной системой, успешно используемой в лабораторных условиях 1 . Основной анализ Y1H включает в себя два компонента: а) репортерную конструкцию с интересной ДНК, успешно клонированной выше гена, кодирующего репортерный белок; И b) конструкцию экспрессии, которая будет генерировать слитый белок между TF интересом и доменом активации транскрипции (AD). Интересную ДНК обычно называют «приманкой», в то время как слитый белок известен как «жертва». В прошлые годы были разработаны несколько вариантов анализа Y1H с учетом особых потребностей 2 . Существующий анализ Y1H может быть успешно реализован для идентификации и подтверждения взаимодействия одного белка за один раз с его приманкой ДНК, но не обладает способностью идентифицировать гетеродимерные или мультимерные белковые ДНК-взаимодействия.
«> Метод, описанный здесь, представляет собой модифицированную версию существующих Y1H, позволяющих исследователям одновременно изучать множественные белки, связывающиеся с их последовательностью (ами) ДНК-мишени. Целью этого анализа является выражение интересующего белка с доменом активации (pDEST22: TF) и оценивают активацию областей ДНК-кандидатов, слитых с репортером, в присутствии и / или отсутствии взаимодействующего белкового партнера (pDEST32ΔDBD-TF) в дрожжевой системе. Этот анализ позволит нам определить, является ли взаимодействие между этими двумя Белки необходимы для активации мишени.Это совместимая с клонированием система GATEWAY, и поэтому ее можно использовать в обычной лабораторной установке.Этопротокол основан на прямой трансформации, что обеспечивает легкость коразрушения различных ТФ в дрожжевой системе Таким образом, выгодной стратегией является проверка связывания белковых комплексов с их возможными целями ДНК для молекулярной и функциональной валидации in vitro fИли любой системы. Современные методы, такие как методы тандемой аффинной очистки (TAP), являются дорогостоящими и трудоемкими, но позволяют обнаруживать белковые гетерокомплексы в больших масштабах 3 , 4 , 5 . Этот модифицированный дрожжевой гибрид может быть успешно выполнен в обычной лабораторной обстановке в небольшом масштабе ( рисунок 1 ), а также экономически эффективен. Анализ Y1.5H может помочь исследователям всего сообщества проверить и обосновать свою гипотезу в отношении определения роли связывания многомерного белкового комплекса с общей ДНК-мишенью с использованием гетерологичной системы. Основываясь на полученных данных, гипотеза может быть подтверждена in vivo в предпочтительной системе исследования. В последнее время мы использовали этот подход для определения роли ТФ и его способа действия для регулирования цветения в Arabidopsis 6 .Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Конструирование и репортерная плазмидная подготовка.
- ПЦР амплифицируют промоторные области / «фрагменты» (предпочтительно ~ 250-500 п.о.) ДНК-мишени, подлежащие анализу, для дальнейшего клонирования в векторе-записи с использованием E. coli (TOP10).
- После подтверждения последовательности субклонеруйте положительный клон в совместимом векторе экспрессии pGLacZi 7, как описано выше 8 , 9 , 10 , 11 .
- Трансформируйте дрожжевой штамм для интеграции промотора (YM4271) путем гомологичной рекомбинации pGLacZi для генерации дрожжевого репортерного штамма, как описано ранее 12 , 13 . Этапы трансформации и подтверждения дрожжевого штамма с областью ДНК вместе с рецептом среды здесь не описаны, поскольку этапы аналогичны классическому протоколу Y1HAss = "xref"> 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Контрольную плазмиду pEXP-AD502 можно использовать для целей нормализации при количественной активности β-галактозидазы, как описано ранее 8 .
- Клонировать TF или белок, представляющий интерес, и затем клонировать взаимодействующего белкового партнера в векторы экспрессии pDEST22 и pDEST32ΔDBD (pDEST32 минус ДНК-связывающий домен). Трансформированные фрагменты промотора дрожжей и клоны TF впоследствии используются далее в протоколе.
2. Измененный протокол Y1.5H
- На 1-й день (второй день) начните с 5 мл культуры в SD-Ura из чашки Петри или глицерина и инкубируйте в течение ночи в шейкере 30 ° C.
ПРИМЕЧАНИЕ. Эта культура может быть запущена из свежезаваренной пластины или непосредственно из 25% или 30% глицеринового запаса дрожжейКлоном с фрагментом ДНК. - На второй день (второй день) инокулируют 10 мл среды YPDA с 500 мкл ночной культуры и инкубируют в течение ночи в шейкере 30 ° C.
- День 3 (рано утром и весь день): Подготовьте компетентные камеры (рано утром).
- Инокулируют 100 мл среды YPDA с 2 мл ночной культуры и инкубируют в шейкере 30 ° C. Выращивайте эту свежую культуру до тех пор, пока OD 600 не достигнет 0,4-0,8 (3-5 часов).
ПРИМЕЧАНИЕ. Проверьте OD 600 культуры ночной жизни и убедитесь, что начальная точка OD 600 для этого шага составляет 0,1 - 0,2. Использование чрезмерной или недоразвитой культуры может продлить эксперимент. - Центрифуга в течение 5 мин при 1000 xg и 21 ° C. Отбросьте супернатант.
- Восстановить гранулы в 10 мл стерильной воды с использованием вихря или пипетирования вверх и вниз.
- Центрифуга в течение 5 мин при 1000 xg и 21 ° C. Отбросьте супернатант.
- ReconstituТ. Е. В 2 мл трис-этилендиаминтетрауксусной кислоты (TE) / ацетата лития (LiAc) с использованием вихря или пипетирования вверх и вниз.
ПРИМЕЧАНИЕ. См. Рецепт TE / LiAc в таблице 1 . - Центрифуга в течение 5 мин 1000 xg и 21 ° C. Отбросьте супернатант.
- Повторно суспендируйте таблетку в 4 мл TE / LiAc + 400 мкл ДНК спермы лосося (10 мг / мл), пипетируя вверх и вниз и переходите к следующей стадии.
- Инокулируют 100 мл среды YPDA с 2 мл ночной культуры и инкубируют в шейкере 30 ° C. Выращивайте эту свежую культуру до тех пор, пока OD 600 не достигнет 0,4-0,8 (3-5 часов).
- Со-трансформация: тепловой удар клеток (поздно днем)
- Распределите 20 мкл клеток на лунку в 96-луночном смесительном планшете (U-bottom).
- Добавьте 150 нг (~ 1,5 мкл) из каждой плазмиды pDEST22: TF, плазмиды pDEST32ΔDBD: TF и pEXP-AD502 плюс pDEST32ΔDBD: TF (контроль нормализации) в лунки.
ПРИМЕЧАНИЕ. Оптимальные результаты ожидаются с ~ 150 нг каждого из pDEST22: TF и pDEST32ΔDBD: TF-плазмиды для успешного коразрушения. Может варьироваться в зависимости от выражений конструкции и плазмиды,Необходимо оптимизировать с каждым экспериментом. Другой контроль pDEST22-TF plus pDEST32deltaDBD также может быть включен по усмотрению пользователя. - Добавить 100 мкл TE / LiAc / полиэтиленгликоля (ПЭГ) на лунку ( смесь три раза ).
ПРИМЕЧАНИЕ. См. Рецепт TE / LiAc / PEG в таблице 1 . - Накройте пластину воздухопроницаемым уплотнением и инкубируйте в течение 20-30 минут (может быть дольше) при 30 ° C (без необходимости перемешивания).
- Тепловой удар в течение 20 мин ( точно ) при 42 ° C.
- Пластируйте ячейки.
- Центрифуга в течение 5 мин при 1000 xg и 21 ° C. Удалите супернатант с помощью многоканальной пипетки. Добавить 110 мкл TE и перемешать.
- Центрифуга в течение 5 мин при 1000 xg и 21 ° C. Удалите 100 мкл супернатанта с помощью многоканальной пипетки. Повторно суспендируйте таблетку с помощью перфоратора.
- Перенесите клетки на пластинки агара SD-Trp-Leu . Инкубационные пластиныПри 30 ° C до следующего шага.
- День 5 (вторая половина дня): Перенесите клетки на новые пластины с помощью репликатора перфоратор / микропланшет.
- Заполните стерильную 96-луночную смесительную пластину (U-bottom) с 50 мкл TE с использованием многоканальной пипетки. Предварительно намочите перфоратор в TE.
ПРИМЕЧАНИЕ. Перфоратор или репликатор микропланшетов следует стерилизовать перед этим шагом, а затем позже в протоколе. Можно применять общий способ стерилизации перфоратора, такой как погружение его в этанол (100%, не молекулярная биология), а затем его сжигание в пламя. Подождите 1 мин, чтобы охладить штыри перфоратора.
Внимание: при выполнении стерилизации на скамейке; Убедитесь, что скамья предварительно очищена этанолом и не содержит горючих материалов. Надеть надлежащие средства индивидуальной защиты (СИЗ). - Колонии перфорации и повторно суспендировать в пластине, заполненной TE.
ПРИМЕЧАНИЕ. Если на пластине наблюдается плавный рост, колонии можно перфорировать непосредственноНа пластину, заполненную ТЕ, или, альтернативно, отдельную колонию (в случае нескольких колоний) следует собирать с использованием стерилизованной зубочистки на заполненную ТЕ платой, а затем перфоратор можно использовать для следующей стадии. - Перенесите их на новые пластины агара SD-Trp-Leu для оптимального покрытия поверхности. Инкубируйте планшеты при 30 ° C до следующего шага.
- Заполните стерильную 96-луночную смесительную пластину (U-bottom) с 50 мкл TE с использованием многоканальной пипетки. Предварительно намочите перфоратор в TE.
- День 7 (вторая половина дня): начать культуру для измерения активности β-галактозидазы.
- Заполните стерильную 96-луночную смесительную пластину (U-bottom) с 50 мкл среды SD-Trp-Leu с использованием многоканальной пипетки.
- Заполните стерильный 96-луночный блок с 180 мкл среды SD-Trp-Leu с использованием многоканальной пипетки.
- Предварительно смачивают перфоратор в средах и переносят колонии с пластины на 50 мкл среды.
- Передайте 20 мкл дрожжей в 180 мкл среды SD-Trp-Leu и запечатайте блок воздухопроницаемым уплотнением. высиживатьВ течение 36 ч при шейке 30 ° C.
- День 9 (утро): Начните культуру для ферментативного измерения.
- Перенесите 100 мкл культуры в 500 мкл среды YPDA в стерилизованном 96-луночном блоке.
- Накройте стерилизованную глубокую колодец воздухопроницаемым уплотнением и инкубируйте в течение 3 - 5 часов при 30 ° C при перемешивании со скоростью 200 об / мин (до OD 600 0,3-0,6).
- Повторно суспендируют культуру и переносят 125 мкл с использованием многоканальной пипетки на пластину спектрофотометра (измерьте OD 600 ).
ПРИМЕЧАНИЕ. Предостережение: не отпускайте последнюю каплю, чтобы избежать пузырьков, если OD 600 ниже 0,3-0,6, инкубируйте оставшиеся ячейки в течение 1 - 2 часов в зависимости от показаний. 125 мкл культуры, используемые на этом этапе, могут быть отброшены или перенесены обратно в исходный блок глубоких скважин по усмотрению пользователя. - Центрифугировать оставшиеся клетки в глубоком колодце в течение 10 минут при 3000 xg и 21 ° C. Удалить супернатанT путем инвертирования.
- Добавить 200 мкл Z-буфера и вихря.
ПРИМЕЧАНИЕ. См. Рецепт для Z-буфера в таблице 1 . - Центрифуга в течение 5 мин при 3000 xg и 21 ° C. Удалите супернатант путем инвертирования.
- Добавить 20 мкл Z-буфера и вихря.
- Накройте пластину уплотняющей фольгой, которая может противостоять циклам замораживания оттаивания. Выполните 4 цикла замораживания / оттаивания, используя жидкий азот в вытяжном шкафу, а затем 42 ° C на водяной бане (по 2 минуты каждый).
- Добавить 200 мкл Z-буфера / бета-меркаптоэтанола (β-ME) / орто-нитрофенил-β-галактозид (ONPG) (12 мл, 21 мкл, 8,4 мг соответственно даст 20 мл раствора, всегда готовят свежий ).
ПРИМЕЧАНИЕ. ONPG займет некоторое время, чтобы раствориться правильно, поэтому подготовьте решение за час до достижения этого шага. ONPG служит в качестве субстрата для измерения активности β-галактозидазы. - Инкубируйте до 17-24 часов при температуре 30 ° C (проверьте, если цвет развивается раньше prПерейдите к следующему шагу).
- День 10 (утро): прекратите реакцию и измерьте.
- Добавьте 110 мкл 1 М Na 2 CO 3, чтобы остановить реакцию и записать время.
- Вихрь и центрифугируют в течение 10 минут при 3000 xg и 21 ° C.
- Возьмите 125 мкл супернатанта с использованием многоканального и измерьте OD 420 .
ПРИМЕЧАНИЕ. Осторожно, не отпускайте последнюю каплю, чтобы избежать пузырьков. - Вычислить активность β-gal: 1000 x OD 420 / (время (мин) x объем (мл) x OD 600 в электронной таблице.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Общая процедура настройки пластины для коразрушения областей ДНК в дрожжевых клетках с интересующим белком ( рис. 2 ). Настройка пластины может быть изменена в соответствии с потребностью в эксперименте и количеством тестируемых участков ДНК / фрагментов. После 5-дневного дня следует увидеть хорошо выраженную и положительную пластину, как на рисунке 3 . В нашем исследовании промоторная область 2600 п.о. выше по течению от начала сайта начала транскрипции была разделена на шесть областей или фрагментов (FR 1-6) 6 . На типичной фигуре ( фиг. 3 ) участки ДНК 1 и 4 показывают положительное взаимодействие с комплексом белка А и В. При измерении активности β-галактозидазы ( дополнительная таблица 1 ) только фрагмент-1 показывает четырехкратную индукцию активности репортерного гена, в то время как фрагмент-4 не прошел нашу интеграциюRnal порог ≥ в два раза.
Рисунок 1: Обзор модифицированного гибридного дрожжевого (Y1.5H) анализа. Схема описывает пошаговую процедуру анализа. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Упрощенное представление набора пластин для коразрушения дрожжевых клеток с белком (TF), представляющим интерес. В общей экспериментальной установке пластина может быть расположена, как показано на рисунке. Сочетание конструкций и элементов управления может быть изменено в соответствии с потребностями и полностью зависит от пользователя.
Рисунок 3: Репрезентативное изображение положительной пластины (SD-Trp-Leu) для репликации 1 после успешного коразрушения. Аналогичный результат следует наблюдать с большим количеством повторений. Фрагмент 1-6 представляет собой область ДНК; No Fragment - отрицательный контроль.
| TE буфер 10X (10 мл) | |
| желательный | Из запасов |
| 100 мМ Трис-Cl (pH 8,0 | 1 мл трис 1М |
| 10 мМ ЭДТА (рН 8,0) | 200 мкл ЭДТА 0,5 М |
| Произведите объем с водой | |
| TE / LiAc (10 мл) | |
| Из запасов | |
| 1X | 1 мл TE 10X |
| 0,1 М LiAc | 1 мл LiAc 1M |
| Произведите объем с водой | |
| TE / LiAc / PEG (50 мл) | |
| желательный | Из запасов |
| 1X | 5 мл TE 10X |
| 0,1 М LiAc | 5 мл LiAc 1M |
| 40 мл PEG3350 50% | |
| Z-буфер (1 л) pH 7,0 | |
| Na 2 HPO 4 16,1 г гептагидрированного или 8,52 г безводного | |
| NaH 2 PO 4 5,5 г гидратированного или 4 г безводного | |
| KCl 0,75 г | |
| MgSO 4 0,246 г гидратированного или 0,12 г безводного | |
| Поддерживайте pH с помощью HCL | |
| Заметка: | |
| Все психические состояния стерилизуются перед употреблением. | |
| Пластины для меди и агара, используемые в протоколе (YPDA, SD-Ura, SD-Trp-Ura и SD-Trp-Ura агаровые пластины) следуют тому же рецепту, что и в Y1H | |
Таблица 1: Рецепт решений, используемых в протоколе. В таблице представлен рецепт для запаса и рабочих растворов основных буферов, используемых в анализе.
Таблица 1: Измерение активности β-галактозидазы. Представленный здесь лист электронных таблиц может использоваться в качестве шаблона для измерения активности β-галактозидазы с использованием формулы, приведенной в протоколе. КомбинацияМожет быть изменено по усмотрению пользователя. Нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Существующая стандартная процедура Y1H подходит для идентификации единственной белковой жертвы, связывающей ее ДНК-приманку. С различными техническими изменениями существующая система была использована для определения сетей регулирования транскрипции. Однако известно, что TF функционируют как часть комплексов с участием двух или более ТФ или белков, причем только часть TF способна связываться с ДНК. Белки или ТФ, которые обладают только белоксвязывающими доменами и не обладают способностью связываться с ДНК, более вероятно, будут работать в комплексе, предпочтительно с TF, который способен связываться с ДНК. Высокопроизводительные экраны с использованием традиционного Y1H иногда пропускают эти биологически важные взаимодействия. Таким образом, крайне важно адаптировать Y1H-анализ для выявления гетеромерных белок-ДНК-взаимодействий.
Представленный здесь метод является одним из таких адаптаций с возможностью обнаружения белково-ДНК-взаимодействий с участием более чем одного белка или TF. Уникальная функция fЦелью описанного метода является трансформация дрожжей путем коразрушения, что позволяет интегрировать различные TF в дрожжевой системе и далее применять для проверки связывания комплекса с целевыми областями ДНК. Существенным достоинством этого метода является его способность тестировать два белка с их приманкой ДНК. Этот метод не предоставляет информацию о конкретных целевых (промоторных) сайтах, но предоставит информацию для областей ДНК. В то же время использование этого метода рекомендуется только после подтверждения предлагаемого белково-белкового взаимодействия. На основании полученных результатов следует провести дополнительные эксперименты, такие как анализ сдвига электрофоретической подвижности (EMSA) или Chromatin-immunoprecipitation (ChIP) или другие анализы, подходящие для системы исследования, для идентификации целевых сайтов, предпочтительно in vivo, если это желательно. Применение измерения активности β-галактозидазы на основе ONPG обеспечивает лучшее подтверждение, чем классический качественный X-gal assay. Однако при необходимости необходимо учитывать общие экспериментальные требования и свойства протеина (ов), подлежащих тестированию. Реализация описанного метода для крупномасштабного экрана с использованием более двух белковых партнеров с различными целями ДНК должна быть проверена. Анализ Y1.5H является экономически эффективным методом, который может быть выполнен в небольших масштабах в обычной лабораторной обстановке. Возможно, этот анализ может быть выполнен с использованием других векторных систем, но протокол необходимо оптимизировать, если не использовать совместимую с шлюзом систему клонирования.
Представленный протокол для Y1.5H является предпочтительной стратегией для проверки белкового комплекса (ов) с их приманкой ДНК для любой системы исследования; Растений или млекопитающих. Этот метод очень полезен для изучения геномики растений, где валидация in vivo может быть сложной, учитывая уровень плоиды растений и времени и трудоемкие процедуры трансформации. Таким образом, использование этого mЭтод может ускорить тестирование гипотезы, по крайней мере, в гетерологичной системе.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не объявляют конфликта интересов.
Acknowledgments
Мы благодарим С.С. Ванга, М. Амара и А. Галла за критическое чтение рукописи. Исследования, опубликованные в этой публикации, были поддержаны Национальным институтом общих медицинских наук Национального института здоровья по номерам премий RO1GM067837 и RO1GM056006 (до SAK). Контент принадлежит исключительно авторам и не обязательно отражает официальные взгляды Национальных институтов здоровья.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| pDEST22 vector | Invitrogen | PQ1000101 | Pro-Quest Two hybrid system kit |
| pDEST32delatDBD | Invitrogen | PQ1000102 | Pro-Quest Two hybrid system kit; this vecor is modified. It is pDEST32 minus DNA binding Domain |
| pENTR/D-TOPO Cloning Kit | Invitrogen | K240020 | |
| YM4271 Strain | Clontech | K1603-1 | MATCHMAKER One-Hybrid System |
| pEXP-AD502 | Invitrogen | PQ1000101 | Pro-Quest Two hybrid system kit |
| GATEWAY LR Clonase II enzyme mix | Invitrogen | 11791020 | |
| YPDA media | Clontech | 630410 | |
| SD-Agar | Clontech | 630412 | |
| SD minimal media | Clontech | 630411 | |
| Uracil DO Supplement | Clontech | 630416 | |
| Tryptophan Do Supplement | Clontech | 630413 | |
| Tris Base | Fisher Scientific | BP152-1 | |
| EDTA | Fisher Scientific | S311-500 | |
| LiAc | Sigma-Aldrich | L4158 | |
| Saplmon Sperm (10mg/ml) | Invitrogen | 15632011 | |
| 96 well round bottom Plate | Greiner bio-one | 650101 | |
| PEG3350 | Sigma-Aldrich | 1546547 | |
| 96-deep well block | USA Scientific | 1896-2000 | |
| Sealable Foil | USA Scientific | 2923-0110 | |
| Araseal | Excel Scientific | B-100 | |
| 2-mercaptoethanol | Fisher Scientific | 034461-100 | |
| ONPG | Sigma-Aldrich | 73660 | |
| Na2CO3 | Sigma-Aldrich | 223484 | |
| Na2HPO4 | Sigma-Aldrich | S3264 | |
| NaH2PO4 | Sigma-Aldrich | S3139 | |
| KCL | Fisher Scientific | BP366-500 | |
| MgSO4 | Sigma-Aldrich | 83266 | |
| HCL | Fisher Scientific | SA54-4 | |
| Drybath | Thermo Fischer | ||
| Voretx | Thermo Fischer | ||
| Centrifgue | Eppendorf | Centrifuge 5810R | |
| Plate Reader | Molecular Device | SPECTRAMAX PLUS Microplate Spectrophotometer | |
| Incubator | Thermo Fisher | Model No. 5250- 37 Degree, 6250-30 degrees | |
| Shaker Incubator | New Brunswick | ||
| Water Bath | Thermo Fisher | IsoTemp 205 | |
| Puncher | |||
| 50 ml Falocn | BD Falcon | ||
| Beaker | Nalgene | ||
| Flask | Nalgene | ||
| Petriplates (150mm) | Greiner bio-one |
References
- Saghbini, M., Hoekstra, D., Gautsch, J. Media formulations for various two-hybrid systems. Methods Mol Biol. 177, 15-39 (2001).
- Reece-Hoyes, J. S., Marian Walhout, A. J. Yeast one-hybrid assays: A historical and technical perspective. Methods. 57 (4), 441-447 (2012).
- Rigaut, G., et al. A generic protein purification method for protein complex characterization and proteome exploration. Nat Biotechnol. 17 (10), 1030-1032 (1999).
- Puig, O., et al. The Tandem Affinity Purification (TAP) Method: A General Procedure of Protein Complex Purification. Methods. 24 (3), 218-229 (2001).
- Gavin, A. -C., et al. Functional organization of the yeast proteome by systematic analysis of protein complexes. Nature. 415 (6868), 141-147 (2002).
- Tripathi, P., Carvallo, M., Hamilton, E. E., Preuss, S., Kay, S. A. Arabidopsis B-BOX32 interacts with CONSTANS-LIKE3 to regulate flowering. Proc Natl Acad Sci USA. 114 (1), 172-177 (2017).
- Helfer, A., et al. LUX ARRHYTHMO encodes a nighttime repressor of circadian gene expression in the Arabidopsis core clock. Curr Biol : CB. 21 (2), 126-133 (2011).
- Pruneda-Paz, J. L., et al. A genome-scale resource for the functional characterization of Arabidopsis transcription factors. Cell Rep. 8 (2), 622-632 (2014).
- Wanke, D., Harter, K. Analysis of Plant Regulatory DNA sequences by the Yeast-One-Hybrid Assay. Methods Mol Biol. 479, 291-309 (2009).
- Klein, P., Dietz, K. -J. Identification of DNA-Binding Proteins and Protein-Protein Interactions by Yeast One-Hybrid and Yeast Two-Hybrid Screen. Methods Mol Biol. 639, 171-192 (2010).
- Breton, G., Kay, S. A., Pruneda-Paz, J. L. Identification of Arabidopsis Transcriptional Regulators by Yeast One-Hybrid Screens Using a Transcription Factor ORFeome. Methods Mol Biol. 1398, 107-118 (2016).
- Deplancke, B., Vermeirssen, V., Arda, H. E., Martinez, N. J., Walhout, A. J. M. Gateway-Compatible Yeast One-Hybrid Screens. CSH Protoc. 2006 (5), (2006).
- Deplancke, B., Dupuy, D., Vidal, M., Walhout, A. J. M. A gateway-compatible yeast one-hybrid system. Genome Res. 14 (10B), 2093-2101 (2004).
