Vorteile der kardialen Resynchronisationstherapie in einem asynchronen Herzinsuffizienz Modell induziert durch linke Bundle Branch Ablation und schnellen Tempo

Zusammenfassung

Die Einrichtung eines asynchronen Herzinsuffizienz (HF)-Modells durch schnelle Tempo kombiniert mit linken Bundle Branch Ablation wird vorgestellt. Zweidimensionales Speckle tracking-Bildgebung und Aorta Geschwindigkeit Zeitintegral werden angewendet, um dieses stabile HF-Modell mit linken ventricular Asynchronie und die Vorteile der kardialen Resynchronisationstherapie validiert.

Zusammenfassung

Es ist nun bekannt, dass Patienten mit Herzinsuffizienz (HF) mit linken Bundle Branch Block (mittels) kardiale Resynchronisationstherapie (CRT), erhebliche klinische Vorteile ableiten und mittels eines wichtigeren Prädiktoren für CRT Antwort geworden. Die herkömmlichen Tachypacing-induzierte HF Modell hat mehrere wichtige Einschränkungen, einschließlich fehlender stabile mittels und rasche Umkehr der linksventrikulärer Dysfunktion (LV) nach Beendigung der Tempo. Daher ist es unentbehrlich, ein optimales Modell der chronischen HF mit isolierten mittels für das Studium CRT Vorteile. In der vorliegenden Studie wird ein eckzahn Modell der asynchronen HF induziert durch linke Bundle Branch (LBB) Ablation und 4 Wochen der schnellen rechtsventrikuläre Stimulation (RV) hergestellt. Die RV und rechts Vorhofflimmern (RA) Tempo Elektroden über die Halsschlagader Ansatz, zusammen mit einem epicardial LV Stimulation Elektrode, wurden für CRT Leistung eingesetzt. Hier sind die detaillierte Protokolle der Radiofrequenz (RF) Katheterablation, Tempo führt Implantation und schnelle Tempo-Strategie. Intrakardialen und Oberfläche Elektrogrammen während des Betriebs wurden auch für ein besseres Verständnis der LBB Ablation zur Verfügung gestellt. Zweidimensionales Speckle Tracking-Bildgebung und Aorta Geschwindigkeit Zeitintegral (aVTI) wurden erworben, um das chronische stabile HF-Modell mit LV Asynchronie und CRT Vorteile zu validieren. Durch die Koordination ventrikuläre Aktivierung und Kontraktion, CRT uniformierten die LV mechanische Arbeit und LV-Pumpfunktion, gefolgt von Umkehrung der LV-Dilatation wiederhergestellt. Darüber hinaus ergaben die histopathologische Untersuchung eine bedeutende Wiederherstellung der Cardiomyocyte Durchmesser und Kollagen Volumenanteil (CVF) nach CRT Leistung, zeigt eine histologische und Mobilfunk Umbau Reverse, hervorgerufen durch CRT. In diesem Bericht beschrieben, eine machbare und gültige Methode, um eine chronische asynchrone HF-Modell zu entwickeln, die für das Studium Struktur- und biologischen reverse Umbau folgende CRT eignete.

Einleitung

Fortgeschrittene chronische HF ist eine führende Ursache von Sterblichkeit für verschiedene Herz-Kreislauf-Krankheiten. Eine Untergruppe von Patienten mit Herzinsuffizienz (CHF) auch entwickeln ventrikuläre Leitung Discoordination, die Symptome und die Prognose verschlechtert. CRT, auch genannt biventrikuläres pacing, wurde als eine alternative Therapie für diese Patienten für mehr als 20 Jahren^1,2eingeführt. Ca. 20-40 % der Patienten zeigen leider schlechtes Ansprechen auf CRT. Seitdem wurden viele Studien durchgeführt um die CRT Antwort³zu maximieren. Es ist nun bekannt, dass Patienten mit mittels mehr von CRT als solche mit nicht mittels⁴, profitieren könnte da eine mittels Muster eine größere Größe der kardialen Dyssynchronie aufgrund der Asymmetrie in der Bewegungsfreiheit der Wand zwischen septal und seitlichen Wänden verursacht . In der Zwischenzeit neuere Studien haben damit begonnen, Änderungen in der Genexpression zu erforschen und molekularen Umbau CRT⁵zugeordnet. Begleitung der strukturellen reverse Umbau induziert durch CRT, ist zellulärer und molekularer Rückfall auf ein normales Maß von großem Interesse⁶. Daher ist es unentbehrlich, ein optimales Modell von CHF mit isolierten mittels für das Studium CRT Vorteile.

Chronische, schnelle ventrikuläre Stimulation einmal verwendet wurde, um CHF in einem Hunde-Modell zu produzieren. RV Tempo könnte zweifellos verzögerte LV Kontraktion als Modell des Musters mittels erinnernden Kontraktion erzeugen. Jedoch diese Art der funktionalen Asynchronie mit einem intakten Wärmeleitung-System kann nicht anatomische mittels emulieren und gilt nicht als ein geeignetes Modell für CRT-Leistung, die Essenz davon ist die Koordination Studium elektrische Aktivierung beeinträchtigt und myokardialen Kontraktion. Schnelle Wiederherstellung der LV Kontraktilität und teilweise Erholung der LV Dimensionen nach Beendigung der Tempo wurden auch berichtet⁷.

Experimentelle Studien haben chronische mittels durch RF-Ablation herstellen asynchronen ventrikulären Kontraktion⁸induziert. Eine Kombination der Rückgang der globalen Pumpfunktion und regionalen ungültig mechanische Arbeit könnte CHF durch die Generierung von kardialen Ineffizienz sowie kardialen remodeling in das Gewebe, zellulärer und molekularer Ebene noch verschärfen. In mittels Herzen ist die Arbeitsbelastung in das Septum niedrigsten und höchsten in der LV-Seitenwand. Kardialen remodeling ist demzufolge in der Seitenwand⁹am stärksten ausgeprägt. Der Zweck der vorliegenden Studie ist: (i), eine stabile und chronische HF-Modell mit interventricular und intraventrikuläre mechanische Asynchronie voraus durch schnelle RV Tempo in Kombination mit LBB Ablation; (Ii) um dissynchroner HF in unserem Modell und CRT-Vorteile bei der Koordinierung der Kontraktion von zweidimensionalen Speckle tracking Echokardiographie und aVTI zu bestätigen; und (Iii) vorläufig zu zellulären reverse Umbau von CRT entlockte.

Protokoll

Fünfzehn männliche Beagle Hunde (12 bis 18 Monate alt, mit einem Gewicht von ca. 10,0-12,0 kg) wurden gekauft und Experimente. Alle Verfahren wurden in Einklang mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren veröffentlicht von der US National Institutes of Health (Publikation Nr. 85-23, überarbeitete 1996) durchgeführt und die vom Animal Care in Zhongshan Krankenhaus, Fudan angenommen wurden Universität. Abbildung 1 zeigt den schematischen Workflow für alle Protokoll-Schritte.

1. präoperative Vorbereitung und Baseline-Daten-Sammlung

1. Rasieren Sie die Haare von einem Megalosauridae für Venenpunktion. Etablieren Sie einen venösen Zugang durch den seitlichen Zweig der kleinen Stammvenen experimentelle Beagle Hunde mit einem Venenkatheter (22 G, 0,9 mm × 25 mm). Injizieren Sie Natrium-Pentobarbital (30 mg/kg) langsam über den Venenkatheter induzieren Anästhesie, die durch den Verlust der Wimpern Reflex bestätigt wird. Geben Sie zusätzliche Natrium-Pentobarbital bei der Dosierung von 10 mg/kg bei Narkose Erholung während der Operation.
2. Sichern Sie die Gliedmaßen auf dem OP-Tisch mit groben Seil zu und halten Sie das Tier in Rückenlage.
3. Schneiden Sie das Haar der Extremität Extremitäten und Brust. Einfügen der Gliedmaßen führen Elektroden an Gliedmaßen Extremitäten und den präkordialen Blei Elektroden an sechs ausgewiesenen Standorten auf der Brustwand. Notieren Sie die Grundlinie Elektrokardiogramm (EKG).
4. Echokardiographische Beurteilung
   1. Fügen Sie die Lead-Elektroden der Echokardiograph, die Gliedmaßen des Tieres.
   2. Ein standard echokardiographische Untersuchung durchführen. Aus den konventionellen apikalen vier Kammer (A4C) und apikalen zwei Kammer (A2C) Ansichten, erhalten die LV End-diastolischen Volumen (LVEDV), LV Ende systolischen Volumen (LVESV) und LV Auswurffraktion (LVEF) mithilfe der Doppeldecker Simpson Methode berechnet.
   3. Bewerten Sie LV längs Stamm, indem Sie zweidimensionales Speckle tracking-Bildgebung. Durchführen Sie Speckle tracking auf der A4C, A2C und apikalen Längsachse Ansicht (APLAX).
   4. Erhalten die longitudinale Dehnungskurven aus den oben genannten drei apikalen Sichten auf den basalen, Mitte-ventrikuläre und apikalen Ebenen in jede Wand (A4C: Septum und Seitenwand; A2C: anterior und inferior Wand; APLAX: anterioren Septum und hintere Wand). Die Software wird automatisch diese Daten, um eine schwarze Karte von 17-Segment, darunter 6 Segmente auf der basalen Ebene (Septum, Seitenwand, vordere Wand, minderwertige Wand, anterioren Septum und hinteren Wand), 6 Segmente in der Mitte-ventrikuläre produzieren integrieren. Ebene (Septum, Seitenwand, vordere Wand, minderwertige Wand, anterioren Septum und hinteren Wand), 4 Segmente auf der apikalen Ebene (Septum, Seitenwand, vordere Wand, minderwertige Wand) und eine apikale Cap.
   5. Zeit zum Peak-Belastung (TTP) ist definiert als das Zeitintervall vom Anfang des QRS-Komplexes bis zum tiefsten Punkt der Dehnungs-Kurve, kennzeichnet die maximale Dehnung längs. Berechnen Sie die Standardabweichung der 17-Segment TTP (PSD), die LV mechanischen Gleichlauf zu bewerten.
   6. Notieren Sie die transaortal Doppler Strömungsgeschwindigkeiten in der apikalen fünf Kammer-Ansicht. Messen und durchschnittlich aVTI in 3-4 aufeinander folgenden Schlägen.
5. Orotracheale Intubation und Beatmung
   1. Vorsichtig herausziehen der Zungenkrebs und Erweiterung der Zunge in Vorbereitung für Orotracheale Intubation zu erhalten. Positionieren Sie das Tier in der Lage sein "schnüffeln".
   2. Langsam vorwärts gekrümmte Klinge das Laryngoskop, bis die Spitze der Klinge zwischen der Basis der Zunge und der Kehldeckel positioniert. Heben Sie das Laryngoskop nach oben, um die Stimmbänder zu entlarven. Legen Sie einen endotrachealen Schlauch in den Mund und übergeben Sie das Rohr über die Stimmbänder. Befestigen Sie den Schlauch auf die Koepfe mit Klebeband.
   3. Auskultieren Sie beider Lungenflügel um richtige Endotrachealtubus Platzierung zu bestätigen, wie bilateral und symmetrisch Atemgeräusche während Positive Druckbelüftung belegt.
   4. Schließen Sie das äussere Ende des Endotrachealtubus an Respirator Volumen radelte. Starten Sie und erhalten Sie zusätzliche mechanische Lüftung mit Raumluft. Legen Sie die Atemfrequenz bei 8 - 20 Mal pro Minute mit einem Tidalvolumen bei 8-15 mL/kg. Legen Sie die Parameter nach SpO₂ durch Pulsoximetrie gemessen.

2. epicardial LV Stimulation Elektrode Implantation

1. Schließen Sie die kardialen Defibrillator/Monitor-Kabel an den Hautelektroden, die an den Gliedmaßen hängen. Vorab zu behandeln, das Tier mit 0,3 g Levofloxacin intravenös Guttae.
2. Sterilisieren Sie nach der Rasur der Haare von Hals und Brust der vorderen Brustbereich und linken Halsbereich mit Jodophor und ebnen Sie die sterilen Blätter zu.
3. Thorakotomie
   1. Führen Sie die Muskel-schonende Thorakotomie in der rechten seitlichen Dekubitus-Lage. Nach der Verabreichung von Fentanyl durch eine kontinuierliche Rate Infusion (0,01 mg/kg/hr) intravenös, die Haut quer von links Parasternal-Linie auf den vierten Platz Intercostalneuralgie einzuschneiden.
   2. Öffnen Sie nach stumpfe Dissektion der 3 Schichten der thorakalen Muskel (Pectoralis major, Pectoralis minor, Intercostales) der linke Pleurahöhle an der vierten Intercostalneuralgie Raum (zwischen 4^th und 5^th Rippen) durch scharfe Dissektion. Legen Sie einen Rippe Retraktor in der Intercostalneuralgie Raum. Packen sterilen Gaze eingebettet in 0,9 % NaCl um die Lungenlappen, die Lunge zu schützen und ein klares Sichtfeld zu halten.
   3. Einzuschneiden Sie vorsichtig die seitlichen Herzbeutel mit Elektrokauter. Das Perikard, vollständig aussetzen der LV-Seitenwand mit geöffnet Nähte (0-Naht).
4. LV Stimulation Elektrode implantation
   1. Naht der unipolaren LV Stimulation Elektrode auf das Myokard auf der Seitenwand LV mit einer Masche mit einer 4: 0-Naht. Machen Sie einen sanften Knoten auf der Naht, zerfleischte die myokardiale Gewebe zu verhindern.
   2. Verbinden Sie den Klemme Metallstift des Schrittmachers führen zu überbrückenden Kabel Blei Parameter zu testen. Nach zufrieden stellenden führen werden Parameter mit dem Tempo Schwellwert erreicht < V 2.0 auf 0,48 ms und Blei Impedanz < 2.000 Ω, leicht ziehen den Elektroden führen zu eine festen Fixierung zu gewährleisten.
5. Die Aufenthalt Fäden zu entfernen und den OP-Bereich aktiven Blutungen zu beseitigen sorgfältig zu prüfen.
6. Schließen Sie das Perikard mit zwei Stichen mit 2-0/T Nähte. Entfernen Sie die gefüllte Gaze und die Rippe Aufrollvorrichtung.
7. Verwenden Sie zwei Pericostal Nähte (0-Naht), die 4^th und 5^th Rippen anzugleichen. Schließen Sie die Intercostalneuralgie Faszie mit mehreren Stichen mit 2-0/T Nähte. Pumpen Sie die Lunge ausreichend mit einem Hilfs Ballon über Orotracheale Intubation vor die letzte Naht. Schauen Sie durch die Intercostales normale Ausdehnung der Lunge zu bestätigen.
8. Positionieren Sie die Muskelschichten wieder an seinen Platz mit keine Nähte. Die Tempo Führung dringt das Perikard, Intercostalneuralgie Faszie und Muskelschichten sukzessive durch den Spalt zwischen Chirurgie Knoten.
9. Einzuschneiden Sie die Haut des linken Halsbereich und sezieren Sie das subkutane Gewebe bis zum Erreichen der tiefen Faszie mit einer geschwungenen Klammer. Baue einen subkutanen Tunnel über die Tiefe Armaturenbrett aus dem präkordialen Bereich auf der linken Halsbereich mit einer geraden Klammer.
10. Ziehen Sie die Klemme die Führung durch den Tunnel auf der linken Halsbereich mit einer geraden Klammer. Decken Sie die Klemme mit einer Isolierung Hülse, die ligiert ist mit 2-0/T Nähte. Naht die Führung rund um die Hülse an der Faszie und lokal einbetten die Führung auf der linken Seite des Halses.
11. Schließen Sie das Unterhautgewebe und die Haut der thorakalen und zervikalen Einschnitte mit 0-Nähte.
12. Stoppen Sie die Anästhesie-Induktion zu, wenn das Tier spontanen Atemzüge nehmen ist, trennen Sie den Endotrachealtubus vom Beatmungsgerät. Nachdem das Tier aus der Narkose erholt, entfernen Sie trachealen Intubation und venöse Katheter. Halten Sie das Tier unter Beobachtung bis vollständige Genesung.
13. Spritzen Sie intramuskulär 800.000 U des Penicillins alle 12 h für 2 Wochen nach der Operation.

(3) RA und RV Tempo Elektroden Implantation

1. Implantat-RA und RV Tempo Elektroden 2 Wochen nach der LV Elektroden Implantation, wenn das Tier erholt sich von der Thorakotomie. Führen Sie den Vorgang in die Herzkatheter-OP-Raum, ausgestattet mit einem Fluoroskopie-Apparat.
2. Anästhesie wie in Schritt 1.1 zu induzieren. Sichern Sie die Gliedmaßen auf dem OP-Tisch zu und pflegen Sie das Tier in Rückenlage. Vorab zu behandeln, das Tier mit 0,3 g Levofloxacin intravenös Guttae.
3. Schneiden Sie das Haar der Extremität Extremitäten. Schließen Sie die ECG Monitor-Kabel an den Hautelektroden und fügen Sie Hautelektroden an Gliedmaßen enden ein. Schalten Sie das ECG Monitor und wählen Sie Blei II für Intra verfahrenstechnische Überwachung.
4. Sterilisieren Sie nach der Rasur der Haare im Nacken der linken Halsbereich mit Jodophor und Drapieren Sie das sterile Blatt. Verwalten von Fentanyl durch eine kontinuierliche Rate Infusion (0,01 mg/kg/hr) intravenös während des gesamten Verfahrens.
5. Venösen Ansatz
   1. Machen Sie einen kleinen vertikalen Schnitt in der Nähe von den vorhergehenden Wunde auf der linken Seite des zervikalen Bereich. Trennen Sie stumpfe Dissektion verwenden, die Faszie, die die linke äußere Halsschlagader aussetzen. Trennen Sie die Vene von Bindegewebe sorgfältig mit einem Moskito-Klemme.
   2. Sanft Hochziehen der Vene mit einer geschwungenen Klammer und zwei 2-0/T Fäden unter die Vene übergeben. Binden Sie die distalen Naht.
   3. Heben Sie vorsichtig an der distalen Naht und schneiden Sie ein kleines Loch genau in der Mitte der zwei Nähte mit Iris-Schere. Mit einer Vene Pick, passive J-förmige RA Zuleitung und aktive RV Zuleitung in die linke äußere Halsschlagader einfügen.
6. RV-Blei-implantation
   1. Sobald die RV-Führung an den niedrigen rechten Vorhof oder minderwertige Vena Cava unter Röntgendurchleuchtung vorgebracht worden, zurücktreten Sie das gerade Stilett vom RV Blei. Eine J-Form am distalen Ende der Mandrin und setzen Sie ihn wieder durch die RV-Führung.
   2. Führen Sie mit Hilfe der gebogenen Mandrin die Führung über die Trikuspidalklappe und in den Ausflusstrakt ein. Ziehen Sie langsam die Führung und das Stilett, so dass den Blei-Tipp, um in Richtung der RV-Spitze Prolaps.
   3. Ersetzen Sie die gebogene Mandrin durch eine gerade. Drehen Sie die Mine in Richtung der Spitze.
   4. Die Prüfparameter Blei mit der Mandrin zurückgezogen über auf halbem Weg. Zufrieden stellenden Parameter umfassen eine Tempo Schwelle < V 1.0 bei 0,48 ms, R-Zacke Amplitude > 5,0 mV und Blei Impedanz < 2.000 Ω. Das gewonnene zulässigen elektrischen Parameter sind verlängern Sie die aktiven Helix, entfernen Sie das Stilett und nachmessen Sie der Parameter.
7. RA-Blei-implantation
   1. Halten Sie die RA-Führung richtet sich an die hohen vorderen Atrium, ziehen Sie langsam das gerade Stilett, so dass Retraktion des vorgeformten J-förmige Leads mit seiner Spitze in die Anhängsel. Eine charakteristische stundenlang Bewegung der Elektrode mit Vorhofflimmern Aktivität kann beobachtet werden.
   2. Zufrieden stellenden Parameter umfassen eine Tempo Schwelle < 1.0V bei 0,48 ms, P-Wellen-Amplitude > 2,0 mV und Blei Impedanz < 2.000 Ω. Ebenso bei der zulässigen Parameter erhalten werden, stellen Sie die Lead-Flaute und entfernen Sie das Stilett.
8. Ziehen Sie nach der Überprüfung auf die Stabilität der beiden führt die Naht proximal zu den Venotomy. Binden Sie beide führt zu die zugrunde liegende tiefe Faszie mit zwei oder drei 2-0/T Nähte um die Naht Ärmel. Überprüfen Sie die elektrischen Parameter und Position der beiden führt unter Röntgendurchleuchtung nach nähen.
9. Machen Sie eine Puls-Generator Tasche in der Nähe der venösen Eintrag und in einer Ebene oberhalb der faszialen Ebene und darunter das subkutane Fett. Erstellen Sie die Tasche mit stumpfer Präparation mit einer geschwungenen Klammer. Es sollte nur groß genug für den Generator und die redundante führt.
10. Reinigen Sie und trocknen Sie die Lead-Pins. Decken Sie die Klemme des Vorhofflimmern führen mit einer Isolierung Ärmel und Naht die Führung auf den Boden der Tasche. Ein Herzschrittmacher Impulsgeber stecken Sie die ventrikuläre Führung und ziehen Sie ihn mit der distalen Verbindungspin vorbei die Gewindestifte des Generators.
11. Ort der Generator in der Tasche mit redundanten führt unter dem Gerät aufwickeln. Binden Sie den Generator bis auf die Faszie mit einer 2-0/T Naht durch das Tie-Down-Loch in der Kopfzeile des Generators. Führen Sie die Röntgendurchleuchtung Prüfung des gesamten Systems.
12. Schließen Sie nach der Überprüfung für die Blutstillung Tasche und oberflächliche Faszie in Schichten mit 2-0/T Nähte. Schließlich ungefähre Haut Kanten mit 0-Nähte und der Schrittmacher in einen OVO-Modus mit einer Telemetrie-Zauberstab zu programmieren.
13. Für die Tiere der Sham-Gruppe Implantat die LV, RV und RA führt in ähnlicher Weise, aber mit keinen Generator einsetzen.

(4) LBB Ablation

1. Führen Sie die Katheterablation unter der Leitung von Fluoroskopie sofort nach RV und RA Implantation führen. Rasieren Sie die Haare an der Brust, Rücken und rechts inguinalen Region. Halten Sie das Tier in Rückenlage.
2. Bereiten Sie einen Multi-Channel elektrophysiologischen Recorder für gleichzeitige Oberfläche und intrakardialen Kardiogramm Aufnahme mit Filtereinstellungen von 30-400 kHz (bipolar) oder 0,05-500 kHz (unipolar) und eine Signalverstärkung 5.000 Falte. Legen Sie schnurlose Neutralelektrode nach hinten und 12-Kanal-Standardelektroden an Gliedmaßen und Brust. Schließen Sie alle Leitungen an den elektrophysiologischen Recorder und zeichnen Sie das Kardiogramm Sweep Geschwindigkeit 100 mm/s auf.
3. Venöse und arterielle Ansatz
   1. Machen Sie nach routinemäßige Desinfektion und in der rechten Leiste Region drapieren einen kleinen Schnitt senkrecht durch die Haut. Trennen Sie stumpfe Dissektion verwenden, die Faszie um rechts femoral Ader und Femoral Arterie zu identifizieren.
   2. Sanft die femorale Ader hochziehen und zwei Aufenthalt Nähte (2-0/T Naht) unter die Vene zu platzieren. Binden Sie die Vene am distalen Ende. Führen Sie die gleichen Manöver auf die Femoral Arterie.
   3. Leicht der femoral Ader holen Sie ab und stellen Sie eine Mikropunktion Nadel proximal in die Vene zwischen die beiden Fäden. Halten Sie die Nadel ruhig und legen Sie eine flexible Spitze (floppy J-förmige) Führungsdraht durch die Nadel.
   4. Wenn genügend Führungsdraht in die Vene übergeben wurde, ziehen Sie die Nadel heraus und fördern einen Dilator und Mantel Kombination (6-Fr) über den Führungsdraht in die femoral Ader. Entfernen Sie den Führungsdraht und Dilatator mit der Scheide, die für die Einführung der Katheter bleibt. Binden Sie eine lockere Naht um die Vene proximal zu den Venotomy mit der venösen Scheide im Ort.
   5. Ebenso legen Sie einen 7-Fr-Mantel in die Femoral Arterie. Liefern Sie einen Bolus von 100 U/kg Kochsalzlösung verdünnt Heparin in die arterielle Scheide, Gerinnung zu verhindern.
4. Kartierung der rechtsseitige sein Bündel potential
   1. Einen 6-Fr lenkbaren vierpolige Katheter in der femoral Ader über die venösen Schleuse vorantreiben. Verbinden Sie das Ende des Katheters an den Multi-Channel elektrophysiologische Recorder über den Katheter Eingangsmodul durch Kabel.
   2. Übergeben Sie den Katheter in den rechten Vorhof und über die Trikuspidalklappe bis es klar, in der rechten Herzkammer ist. In einer rechts anterior (RAO) 30° Fluoroskopie Schrägansicht zurückziehen des Katheters über die Trikuspidalklappe Öffnung bis ein Vorhofflimmern Potential erscheint und wird größer. Ein leicht im Uhrzeigersinn Drehmoment hilft, um die Elektroden in Kontakt mit dem Septum zu halten. Wenn das Vorhofflimmern und ventrikuläre Potenziale ungefähr gleich groß sind, erscheint eine biphasische oder Triphasische Auslenkung zwischen ihnen sein Bündel potenzielle repräsentieren die rechtsseitige.
5. Linken Bundle Branch potenzielle (LBP) Zuordnung und ablation
   1. Ein 7-Fr 4 mm-Tip lenkbaren Ablationskatheter in die Femoral Arterie über die arterielle Scheide einführen. Verbinden Sie das Ende der Ablationskatheter HF-Generator und Multi-Channel elektrophysiologische Recorder von Kabel.
   2. Übergeben Sie die arteriellen Katheter Doppelthebel über die Aortenklappe und Fortschritt an der LV in einer RAO 30° Ansicht. Die Katheterspitze in Richtung der interventricular Septum abzulenken. Halten Sie die Elektrode in engem Kontakt mit dem Septum.
   3. In einer linken vorderen (LAO) 45° Fluoroskopie Schrägansicht langsam zurückziehen des Katheters entlang das Septum bis die linksseitige nahm sein Bündel Potential zwischen Vorhofflimmern und ventrikuläre Kardiogramm, knapp unterhalb der Aortenklappe. Dann langsam voraus den Katheter entlang das Septum und manipulieren die Spitze einer diskreten LBP zu identifizieren, die unterhalb der Aortenklappe aufgenommen Ventil, in der Regel 1 bis 1,5 cm geringer als die linksseitige sein Bündel Website aufzeichnen.
   4. Wann ist das Potenzial, ventrikuläre Kardiogramm Intervall ca. 10 ms kürzer als das HV-Intervall und ein A / V Kardiogramm Verhältnis von < 01:10 ist zu beobachten, die LBP identifiziert. LBP zum frühesten ventrikuläre Kardiogramm Intervall (LBP-V) ist in der Regel kürzer als 20 ms, die das komplette A-V-Block zu minimieren könnte.
   5. Sobald eine befriedigende LBP-Position erreicht ist, beginnt Katheterablation mit einem HF-Generator, 500KHz unmodulierten Sinuswelle Energie (Strom reichen 30-40 W). Passen Sie die Befugnis, eine Solltemperatur von 60 ° C an der Elektrode-Gewebe-Schnittstelle zu erreichen. Wenn die Temperatur nicht über 50 ° C innerhalb von 15 steigt s, Energieabgabe einzustellen, stellen Sie die Katheterspitze und starten Sie erneut.
   6. Die Impedanz während der Energieanwendung kontinuierlich zu überwachen. Ein Rückgang der Impedanz größer als 6-8 Ω bei der Energielieferung gilt als ein Zeichen der guten Gewebekontakt und ausreichende Heizung.
   7. Typische mittels wird durch definiert: eine Verlängerung der QRS-Dauer; QRS positive führt I, II, V5, V6 mit gekerbten R-Zacke und negativ in führt aVR, V1; und einen Verlust von LBP Kardiogramm. Wenn es keine Änderung in QRS Morphologie nach 10 s, die Energieabgabe zu stoppen und passen Sie den Katheter um ein neues LBP Ziel zu finden. Wenn eine typische LBBB QRS-Morphologie auf der Oberfläche Kardiogramm erscheint, weiterhin die Energieanwendung für 60-90 s oder bis zu einem plötzlichen Anstieg der Impedanz.
   8. Stoppen Sie die Energielieferung sofort im Falle der vollständigen (3^rd Grad) AV Block oder Kammerflimmern (VF). Implementieren Sie elektrische Defibrillation schnell, wenn VF auftritt.
   9. Wenn eine LBBB QRS-Morphologie erreicht ist, beobachten Sie die Oberfläche Kardiogramm Stabilisierung beträgt 30 Minuten. Wenn eine normale QRS-Morphologie erneut angezeigt wird, wiederholen Sie die oben genannten Ablationsverfahren.
6. Sobald der Katheter-Ablationsverfahren abgeschlossen ist, entfernen Sie beide Katheter. Entfernen der venösen und arteriellen Scheide und enge Knoten schnell auf die proximalen Nähte um Blutungen zu verhindern.
7. Schließen Sie nach sorgfältiger Prüfung auszuschließen, aktive Blutungen die Faszie in Schichten mit 2-0/T Nähte. Endlich in der Nähe der Haut mit 0-Nähte.
8. Das Tier alle Elektroden trennen und das Tier häufig bis zur endgültigen Genesung aus der Narkose zu überwachen. Spritzen Sie intramuskulär 800.000 U des Penicillins alle 12 h für 1 Woche nach Operation.
9. LBB-Ablation ist nicht für die Sham-Gruppe durchgeführt.

5. schnelle Tempo für HF-Induktion

1. Wenn das Tier erholt sich von der Operation, Aufzeichnung der Oberfläche ECG erneut, um eine ständige Präsenz mittels 1 Woche später bestätigen. Dann programmieren des Herzschrittmachers zu einem VVI-Modus bei 260 Schlägen pro Minute (Bpm) mit einer Telemetrie-Zauberstab.
2. Induzieren Sie Anästhesie (wie in Schritt 1.1) und programmieren Sie der Schrittmacher OVO-Modus nach 4 Wochen der raschen Tempo.
3. Führen Sie Echokardiographie um LVEF (mit Bezug auf Schritt 1.4) zu beurteilen. Wenn die LVEF unter 35 % sinkt, bereiten Sie das Tier für CRT-Leistung. Wenn die LVEF noch über 35 % liegt, reichen Sie das Tier zu schnellen RV Tempo wieder durch Umprogrammieren der Schrittmacher VVI-Modus bei 260 Bpm ein.
4. Führen Sie Echokardiographie alle 2 Wochen bis die LVEF unter 35 % ist. Sobald die LVEF-Ziel zu erreichen, schnelle RV Tempo zu beenden und für CRT-Strategie vorbereiten.
5. Tiere der Sham-Gruppe werden nicht schnelles Tempo vorgelegt.

(6) kardiale Resynchronisation Therapie Leistung

1. Teilen Sie die Tiere mit HF in der Kontrollgruppe und CRT-Gruppe nach dem Zufallsprinzip. Lassen Sie für die HF-Kontrollgruppe das Tier ein anderes 8 Wochen ohne Eingriff überleben. Starten Sie für CRT-Gruppe CRT Leistung über biventrikuläres pacing.
2. Halten Sie nach Induktion der Anästhesie (wie in Schritt 1.1) das Tier in Rückenlage durch die Glieder zu einem OP-Tisch zu sichern. Vorab zu behandeln, das Tier mit 0,3 g Levofloxacin intravenös Guttae. Rasieren Sie die Haare im Nacken, Sterilisieren Sie der linken Halsbereich zu und Drapieren Sie das sterile Blatt.
3. Nach der Verabreichung von Fentanyl durch eine kontinuierliche Rate Infusion (0,01 mg/kg/hr) intravenös, machen einen kleinen vertikalen Schnitt unmittelbar neben der früheren Wunde auf der linken Seite des Halses. Stumpfe Dissektion mit trennen die Faszie, den Impulsgenerator zu isolieren und Tempo ohne Verletzung führt (einschließlich der RV, LV und RA führt).
4. Die Klemme RV Blei aus dem Generator Header durch Lösen der Schrauben zu lösen. Vorsichtig schneiden Sie die Fäden gespannt auf die LV und RA führt und Kreditnehmern Sie die Stiftkabelschuhe. Reinigen Sie die Pins aller Leads durch Eintauchen in Ethanol und trockene Gaze nacheinander verwenden.
5. Die RA, RV und LV führt in die Kopfzeile der CRT Impulsgeber richtig einsetzen und die Schrauben festziehen. Vergrößern Sie die Tasche mit stumpfe Dissektion fit für den neuen Generator. Legen Sie den Generator in der Tasche und binden Sie den Generator auf den Boden der Tasche mit einem 2-0/T Naht.
6. Überprüfen Sie die Tasche für die Blutstillung. Schließen Sie Tasche und oberflächliche Faszie in Schichten mit 2-0/T Nähte. Schließen Sie dann die Haut mit 0-Nähte.
7. Programm des Herzschrittmachers zu einem DDD-Modus mit AV (AV) Verzögerung auf einen Wert von 70 ms interventricular (VV) Verzögerung von 0 ms eingestellt und prüfen das Tier häufig bis zur Genesung aus der Narkose. Injizieren Sie 800.000 U von Penicillin intramuskulär alle 12 h für 1 Woche.
8. Nach 8 Wochen der CRT Leistung führen der transthorakalen Echokardiographie wieder auf Tiere aller Gruppen (wie in Schritt 1.4).

7. Opfer Tiere und histologische Analyse

1. Die Gliedmaßen des Tieres auf dem OP-Tisch unter Vollnarkose zu sichern. 100 mg/kg intravenös Pentobarbital Tieropfer durchführen zu injizieren. Tierischen Tod durch Abwesenheit von Herzschlag und Atmung Bewegung zu gewährleisten.
2. Die Haut des linken Halsbereich einzuschneiden. Mit einer Kombination von scharfen und stumpfen Dissektion kostenlos den Generator und die Leitungen. Trennen Sie alle Kabel vom Generator durch Lösen der Schrauben.
3. Frei vom subkutanen Gewebes führt allmählich und bis des venösen Einstiegspunkts zu verfolgen. Die Naht Ärmel zu identifizieren und alle Aufbewahrung Fäden schneiden. Zurückziehen der aktiven Fixierung Helix von der RV führen zu erleichtern.
4. Quereinschnitt im vierten Intercostalneuralgie Space von der sternalen Linie der linken Midclavicular Linie zu machen. Die LV-Führung aus den präkordialen Faszie entlang der subkutanen Tunnel, bis der linken Halsbereich mit einer geraden Klammer frei.
5. Stumpfe Dissektion der thorakalen Muskeln Öffnen der linken Pleurahöhle. Legen Sie einen Rippe Retraktor in der Intercostalneuralgie Raum. Öffnen Sie das Perikard vollständig.
6. Schneiden Sie die Naht auf epicardial LV-Blei-Elektrode. Trennen Sie die Elektrode aus dem Herzen, indem Sie ein kleines Stück von Herzmuskelgewebe Umwickeln der Elektrodendurchmessers abschneiden.
7. Schneiden Sie die richtigen Kammern zusammen mit dem Septum. Lösen Sie die RA und RV Elektroden von Myokard mit scharfer und stumpfer Präparation. In der Regel sind die Elektrodenspitzen faserig und myokardiale Gewebe eingekapselt. Schneiden Sie das umliegende Gewebe aus dem Herzen, wenn nötig.
8. Übergeben Sie ein gerader Mandrin an der Spitze jedes Blei durch die Klemme. Extrahieren Sie die RV und RA führt aus dem venösen Eintrag zu und entfernen Sie die LV-Führung aus dem subkutanen Tunnel. Wenn die Leitungen durch fibrösen Adhäsionen herausgerissen werden können nicht, Abstreifen der fibrösen Adhäsionen entlang führt mit stumpfe Dissektion.
9. Das Herz sanft hochziehen, und durch das Herzgewebe in der Nähe der Aorta zu Herzen Verbrauchsteuern clip. Das Herz in eine sterile Schüssel geben und spülen Sie es mehrmals mit physiologischer Kochsalzlösung. Schneiden Sie die Transmural Myokard aus der Seitenwand LV zur histologischen Untersuchung.
10. Myokardialen Gewebe mit gepuffertem Formalin fixieren dann entwässern und in Paraffin einbetten. Nach dem Schnitt in 5 µm dicke Abschnitte deparaffinize Proben und Flecken mit Hämatoxylin und Eosin (HE) und Masson trichrome.
11. Messen Sie die zelluläre Durchmesser aus der Längsprofile gefärbt mit er. Drücken Sie CVF als Prozentsatz der Kollagen-gefärbten Bereich geteilt durch Gesamt Gewebebereich in Masson trichrome gebeizt Abschnitten. Wählen Sie aus und zählen Sie fünf leistungsstarke Felder (400 X) nach dem Zufallsprinzip für jeden Abschnitt. Digital fotografieren und analysieren mit Hilfe einer hochauflösenden digitalen Bild-Analyse-System.

Ergebnisse

Erfolgreiche LBB Ablation:

Abbildung 2 stellt eine typische Oberfläche und intrakardialen Kardiogramm im Zuge der Katheterablation. Der Mittelwert, LBP-V gemessen, ist 18,8 ±2.8 ms, das war etwa 10 ms kürzer als die Grundlinie H-V-Intervall (28,8 ±2.6 ms, p < 0,01). Die QRS-Dauer verlängert von 59,2 ±6.8 ms 94,2 ±8.6 ms (p < 0,01) nach LBB Ablation. Der Verlust von LBP Kardiogra...

Diskussion

Dilatative Kardiomyopathie ist eine der Hauptursachen für CHF, charakterisiert durch ventrikuläre Dilatation, systolische Dysfunktion mit reduzierten LVEF und Anomalien der diastolische Füllung¹¹. Da chronische Tachykardie-vermittelten HF ist ein anerkannter klinischer Zustand, schnelle Tempo des Atrium oder Ventrikel für mindestens 3 bis 4 Wochen dient als eine häufig verwendete Tiermodell induzieren CHF¹¹. Hämodynamische Veränderungen auftreten, sobald 24 h nach dem schne...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Geschlossenes IV-Kathetersystem (0,9 mm& mal; 25mm)	Becton Dickinson Medical	5264442	Verwendet als venöse Retentionsnadel
Natrium-Pentobarbital	Sigma-Aldrich Company	130205	Für die Anästhesie
Haustierschermaschine	Wuhan Shernbao Haustierbedarf Co., Ltd.	PGC-660	Für die Haarrasur
Elektrokardiograph	Shanghai photoelektrisches medizinisches elektronisches Instrument Co., Ltd.	EKG-6511	Für die Aufzeichnung von Elektrokardiogrammen
Echokardiograph	GE-Vingmed Ultraschall Unternehmen	VIVID E9	Für die echokardiographische Beurteilung
EchoPAC-Software	GE Healthcare	Version201	Offline-Analyse
Laryngoskop	Shanghai Medical Instrument Co., Ltd		Orotracheale Intubation
Endotrachealtubus	SIMS Portex Inc, UK	274093	Orotracheale Intubation
Volumenzyklisches Beatmungsgerät	Newport Corporation	C100	Künstliche Beatmung
HeartStart XL Defibrillator/Monitor	Philips Medical Systems	M4735A	Elektrokardiogramm-Monitor während der Operation
Benzalkoniumbromid-Tinktur	Shanghai Yunjia Pharmaceutical Co., Ltd.	H31022694	Wird zur Hautdesinfektion verwendet
Rippen-Retraktor	Shanghai Medical Instrument Co., Ltd.		Für Thorakotomie
4-0 Naht	Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.	24L1005	Naht der LV-Epikardelektrode
2-0/T Naht	Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.	11M0505	Naht von Stimulationselektroden, Faszien, Gefäßen usw.
0 Naht	Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.	11P0501	Hautnaht
Penicillinpulver	North China Pharmaceutical Co., Ltd.
DSA-Röntgengerät	Philips	Allura Xper FD10	Röntgengerät für die Durchleuchtung LV-Stimulationselektrode
	Medtronic, Inc.	LBT 4965
RV Schrittmacherelektrode	St. Jude Medical	Tendril 1888
RA Schrittmacherelektrode	St. Jude Medical	IsoFlex 1642T
Herzschrittmacher-Impulsgenerator	Medtronic, Inc.	Enpulse E2DR01	Für schnelle RV-Stimulation
CRT-Impulsgenerator	St. Jude Medical	Anthem PM 3212	Für CRT-Leistung
Elektrophysiologischer Mehrkanal-Rekorder	GE Medical Systems	2003232-004	Für Oberflächen- und intrakardiale Elektrogramme
Katheter-Eingangsmodul	GE Medical Systems	301-00202-08	Mehrpolige Schalter für Stimulation oder Aufzeichnung
Radiofrequenz-Generator	Johnson-Johnson Company	ST-4460	Für die HF-Stromabgabe
Akku-Rücklaufelektrode	Covidien	E7509	Für die Stromkreisbildung
Cordis 6-Fr Schleuse	Johnson-Johnson Company	504-606X	Zugang für Mapping-Katheter
Cordis 7-Fr Schleuse	Johnson-Johnson Company	504-607X	Zugang für Mapping- und Ablationskatheter
6-Fr quadripolarer Katheter	Johnson-Johnson Company	F6QRA005RT	Mapping-Katheter
7-Fr steuerbarer Ablationskatheter mit 4-mm-Spitze	St. Jude Medical	402823	Mapping- und Ablationskatheter
Prucka Cardio-Lab® 2000	GE Medical Systems	6.9.00.000	Softwarepaket für die Aufzeichnung von Elektrogrammen
Heparin	Haitong Pharmaceutical Co., Ltd	160505	Antikoagulans während der Katheterablation
Digitales Bildanalysesystem	Leica Microsystems	Qwin V3	Für die histologische Analyse