Method Article

Anwendung des High-Speed-Höchstauflösung Geschwindigkeit Mikroskopie in Live primäre Zilie

DOI:

10.3791/56475

January 16th, 2018

In This Article

Summary

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Vor kurzem abgebildet wir die dreidimensionale (3D) räumlichen Positionen der Transportwege für verschiedene Proteine in primäre Zilien in lebenden Zellen translocating. Hier leben diese Papier-Details, die in der Versuchsanordnung, den Prozess der biologischen Proben und der Datenanalyse für die 3D Höchstauflösung Fluoreszenz imaging Ansatz neu angewendet primäre Zilien.

Abstract

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Die primäre Zilie ist eine Vorwölbung Mikrotubuli-basierte auf der Oberfläche vieler eukaryotischer Zellen und enthält einer einzigartige Ergänzung der Proteine diese Funktion kritisch in Zelle Motilität und Signalisierung. Da Zilien nicht in der Lage eigene Protein zu synthetisieren sind, müssen fast 200 einzigartige ciliary Proteine zwischen dem Cytosol und primäre Zilien verschleppt werden. Es ist jedoch immer noch eine technische Herausforderung für dreidimensionale (3D) Standorte der Transportwege für diese Proteine in live primäre Zilien aufgrund der Einschränkungen der derzeit bestehenden Karte Techniken. Um die Herausforderung zu erobern, haben vor kurzem wir entwickelt und beschäftigt eine High-Speed-virtuelle 3D Höchstauflösung Mikroskopie, Einpunkt-Kante-Erregung Sub Beugung (Geschwindigkeit) Mikroskopie, um festzustellen, die 3D räumliche Lage der Transportwege für bezeichnet Beide cytosolischen und Membranproteine in primäre Zilien von lebenden Zellen. In diesem Artikel zeigen wir die detaillierte Setup SPEED-Mikroskopie, die Vorbereitung der Zellen mit dem Ausdruck Fluoreszenz-Protein-Label ciliary Proteine, die Echtzeitverfolgung der Einzelmolekül-einzelne Proteine in live Zilie und die Erreichung Karten 3D räumliche Wahrscheinlichkeitsdichte der Transportwege für ciliary Proteine.

Introduction

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Da Ernst Abbe im Jahre 1873 erklärte, hat die Auflösung der konventionellen Lichtmikroskopie angenommen wurde, beschränkt sich auf etwa 200 nm durch Lichtbeugung aus dem Ziel1,2. Derzeit Höchstauflösung lichtmikroskopische Techniken brechen diese Einschränkung und ermöglicht die Erfassung von dynamischen Bildern mit Sub-Beugung (< 200 nm) Auflösung. Die Techniken in der Regel fallen in zwei Hauptkategorien: stimulierte Emission Depletion (STED) Mikroskopie-basierte Ansätze, die Sub-Beugung Beleuchtung Volumen durch nichtlineare optische Reaktion des Fluorophore Proben3; generieren und p....

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Protocol

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(1) NIH-3 t 3 Zelle Vorbereitung für Geschwindigkeit Mikroskopie ab Lager

  1. 1,5 Wochen vor dem Experiment, Wiederherstellen einer frischen Kultur NIH-3 t 3 Zellen aus einem gefrorenen bestand bei 37 ° C Auftauen und die Zellen in einem 25 cm2 Zelle Kultur Kolben mit 3 mL der Dulbeccos geändert Eagle Medium (DMEM) ergänzt mit 110 mg/mL Natrium-Pyruvat, 2 mM Glutamin fötalen Rinderserum 10 % und 1 % Penicillin/Streptomycin.
  2. Inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C in einem 5 % CO2 Inkubator.
  3. Teilen von Zellen bei 80 % Konfluenz, etwa alle zwei Tage mindestens dreimal vor experimentellen am Tag, um Homogenität des Zellzyklus.....

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Results

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Dieser Abschnitt zeigt die Durchführung Geschwindigkeit Mikroskopie in der TZ primäre Zilien den Transportweg von SSTR3, verbunden durch ein ~ 15 nm externe Linker, Alexa647 studieren gewonnenen Daten(Abbildung 3). Es dient dem doppelten Zweck der Überprüfung des 3D-Transformation Algorithmus. Alexa647 sollten nur Label die Außenfläche der primäre Zilie und sich somit der 3D Transportweg High-Density Transportweg an dieser Stelle verraten sol.......

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Discussion

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Dieses Protokoll beschreibt die Anwendung der Geschwindigkeit Mikroskopie auf die primäre Zilie, ein zellulärer Signalisierung Organell, das hoch effiziente Protein Transport abhängig ist. Geschwindigkeit-Mikroskopie kann hochauflösende (< 10 nm) für Gewebekulturen beschriftet Moleküle bieten Durchschreiten der Einzelpunkt-Beleuchtung auf die TZ zentriert. Zuvor ist angewendet worden, um das Protein des Menschenhandels durch die NPC-6,7,

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Disclosures

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Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.

Acknowledgements

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Wir danken Dr. Kristen Verhey (University of Michigan, Ann Arbor) und Dr. Gregory Pazour (University of Massachusetts Medical School) für die Bereitstellung von einigen Plasmide. Das Projekt wurde unterstützt durch Zuschüsse aus dem National Institutes of Health (NIH-GM097037, GM116204 und GM122552, W.Y.).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
25 cm2 GewebekulturschaleCorningVV-01936-00
Penicillin/StreptomycinThermoFisher15140122
fötales RinderserumThermoFisher10438018
DMEMThermoFisher10566-016
OPTIMEMThermoFisher31985062
TrypsinThermoFisher25300054
Phosphatgepufferte KochsalzlösungSigma-AldrichP3813-1PAK
Transit LT1MirusMIR 2300
35 mm GlasbodenschaleMatTekP35GCOL-0-14-C
AlexaFluor 647-konjugiertes StreptavidinThermoFisherS21374
BiotinSigma-AldrichB4501-100MG
633 nm He-Ne-LaserMelles Griot25-LHP-928-249
561 nm FestkörperlaserCoherentOBIS 561-50 LS
488 nm FestkörperlaserCoherent1185053
Inverses FluoreszenzmikroskopOlympusIX81
1,4-NA 100- und 100-faches apochromatisches ÖlimmersionsobjektivOlympusUPLSAPO 100&mal;
On-Chip-Multiplikationsverstärkung Kamera für chargengekoppelte GeräteRoper ScientificCascade 128+
dichroitischer FilterSemrockDi01- R405/488/561/635-25x36
EmissionsfilterSemrockNF01-405/488/561/635-25X5.0
Slidebook 6.0Intelligent Imaging Innovationsdigitale Mikroskopie-Software

References

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  1. Huang, B., Bates, M., Zhuang, X. Super-resolution fluorescence microscopy. Annu Rev Biochem. 78, 993-1016 (2009).
  2. Leung, B. O., Chou, K. C. Review of super-resolution fluorescence microscopy for biology. Appl Spectrosc. 65, 967-980 (2011).
  3. Willig, K. I., Rizzoli, S. O.,....

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