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Methodenartikel

Generation und Kultivierung der primären menschlichen Keratinozyten von Erwachsenen

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DOI:

10.3791/56863

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22. Dezember 2017

1Department of Dermatology, Aarhus University Hospital

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die menschliche Haut wirkt als eine erste Verteidigungslinie gegen die Außenumgebung. Wir präsentieren Ihnen eine Methode zur Isolierung von primären menschlichen Keratinozyten von Erwachsenen. Diese isolierten Keratinozyten eignen sich zahlreiche Versuchsaufbauten und sind ein sehr geeignetes Modell für die Untersuchung der molekularer Mechanismen in kutane Biologie in-vitro-.

Zusammenfassung

Die Hauptfunktion der Keratinozyten soll die strukturelle Integrität der Epidermis, eine mechanische Barriere für die Außenwelt erhalten bleibt. Darüber hinaus spielen die Keratinozyten eine wesentliche Rolle bei der Initiierung, Wartung und Regelung der epidermalen Immunantworten als Teil des angeborenen Immunsystems Reaktion auf Antigene Reize schnell und unspezifisch. Wir beschreiben hier, ein Protokoll für die Isolierung der primären menschlichen Keratinozyten von Erwachsenen Haut und zeigen, dass diese Zellen auf Kalzium-induzierte terminal Differenzierung, gemessen durch eine erhöhte Expression von Differenzierung Marker Involucrin reagieren. Darüber hinaus zeigen wir, dass die isolierte Keratinozyten, IL-1β-induzierte Aktivierung des intrazellulären Signalwege reagieren, wie durch die Aktivierung der p38 MAPK Weg gemessen. Zusammengenommen, beschreiben wir eine Methode zur Isolierung und Kultivierung von primären menschlichen Keratinozyten von Erwachsenen. Da die Keratinozyten die vorherrschenden Zelltyp in der Epidermis sind, eignet sich diese Methode zu molekulare Mechanismen in kutane Biologie in-vitro-Studie.

Einleitung

Die Haut ist das größte Organ des menschlichen Körpers und dient als eine schützende Barriere gegen die Außenwelt. Die Haut besteht aus zwei Schichten: die Dermis und Epidermis, wo die Epidermis die äußerste Schicht der Haut bildet. Die am häufigsten vorkommenden Zelltyp in der Epidermis ist die Keratinozyten, bestehend aus mehr als 95 % der Zelle Masse1,2. Die Keratinozyten werden in verschiedenen Stadien der Differenzierung in der Epidermis und gliedern sich in basalen, abstehenden, körnige und verhornten Schichten, die bestimmte Phasen der Differenzierung3entsprechen. Die primäre Funktion der Keratinozyten soll die strukturelle Integrität der Epidermis, wodurch eine intakte Barriere nach außen zur Verfügung zu stellen.

Die Keratinozyten auch die erste Linie der Verteidigung gegen Krankheitserreger in der Haut darstellen und daher eine wichtige Rolle in der angeborenen Immunantwort4,5. Exposition der Keratinozyten auf äußere Reize führt zu einer Aktivierung der intrazellulären Signalwege und anschließend Produktion einer Reihe von verschiedenen Entzündungsmediatoren wie Zytokine, Chemokine und antimikrobielle Peptide. Diese Keratinozyten gewonnenen Proteinen beteiligt die entzündliche Reaktion durch die Rekrutierung und Aktivierung von Immunzellen wie dendritische Zellen, Neutrophilen und spezifische T-Zellen6,7. So weil Keratinozyten in vielen biologischen Prozessen eine entscheidende Rolle spielen, war das Grundprinzip hinter der hier vorgestellten Technik erzeugen eine in-Vitro -Modell, um die Haut Biologie zu studieren. Primären Keratinozyten Kulturen gewonnenen neonatale Vorhaut werden häufig verwendet, um Haut Biologie8,9zu studieren. Jedoch mit der hier beschriebenen Technik Keratinozyten aus beiden Geschlechtern ergeben sich wiederum eine höhere biologische Vielfalt der Zellen.

Hier präsentieren wir Ihnen ein detailliertes Protokoll zur Isolierung und Generierung von primären menschlichen Keratinozyten aus Erwachsenen Haut, einschließlich Wartung und das Einfrieren der Keratinozyten. Das übergeordnete Ziel dieser Methode ist es, die primären menschlichen Keratinozyten zu generieren, die als Modell kann, zur kutanen Biologie in-vitro-Studie verwendet werden.

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Protokoll

Die Sammlung von Hautproben von gesunden Erwachsenen Probanden einer plastischen Operation erfordert Genehmigung durch die Ethik-Kommission in den Einrichtungen. Dieses Protokoll wurde von der regionalen ethischen Ausschuss der Region Midtjylland, Dänemark (M-20110027) genehmigt. Die hier beschriebene Methode leitet sich von ähnlichen Studien von Maciaq Et al. 10 und Liu und Karasek11.

1. Isolation von Keratinozyten aus der menschlichen Haut

  1. Beginnen, indem Sie die folgenden Lösungen: 50 mL Lösung von 0,25 % Trypsin und 0,1 % Glukose in DPBS. Mischung und Filter zu sterilisieren (0,2 µm) die Lösung. 10 mL RPMI-1640 + 2 % FBS Lösung, 50 mL des DPBS und Keratinozyten serumfreien Medium (KSFM) vorzubereiten. 500 mL KSFM KSFM Ergänzungen und 250 µL Gentamycin hinzufügen. Vorwärmen der Lösungen auf 37 ° C vor dem Gebrauch.
  2. Haut von gesunden Erwachsenen Probanden einer plastischen Operation zu sammeln. Die Hautproben verwendet sind ca. 10 cm x 15 cm, aber können in der Größe variieren. Halten Sie die Haut kühl unter Transport durch den Transport der Hautproben in einer Styropor-Box mit einem Kühlelement. Bei Bedarf kann die Hautprobe über Nacht bei 4 ° C gespeichert werden.
  3. Entfernen Sie Fett unter der Haut-Sektion mit sterilisierten Scheren, Skalpelle und Pinzetten.
  4. Schnalle aus Abschnitt Haut (ca. 10 cm x 15 cm) auf eine sterile Abdeckung oben auf einen Teller mit Nadeln. Zuerst reinigen Sie die Haut mit einem trockenen steriler Gaze-Pad. Dann reinigen Sie die Haut mit einem sterilen Tupfer mit 70 % Ethanol.
  5. Mit einem Fuß-Hobel, der obersten Hautschicht (Epidermis) des Abschnitts Haut schneiden Sie und legen Sie es in einem 9 cm Petrischale. Fügen Sie dann sofort 25 mL der DPBS/Trypsin/Glucose-Lösung (vorbereitet in Schritt 1.1) in der Petrischale. 30 min bei 37 ° c inkubieren
  6. Mit einer Pipette entfernen Sie die DPBS/Trypsin/Glukose-Lösung aus der Petrischale und 10 mL RPMI-1640 + 2 % FBS, die Trypsin zu inaktivieren.
  7. Mit zwei Pinzetten, lassen Sie jetzt die Epidermiszellen in das Medium durch sanft kratzen und rühren die epidermalen und dermalen Abteil des die Hautpartien.
  8. Filtern der epidermalen Zellsuspension durch einen Metallfilter (1 mm Lochgröße), und sammeln Sie in einem 50 mL-Tube. Hinzu kommt der übrigen Haut eine 50 mL-Tube mit 10 mL RPMI-1640 ohne FBS und Vortex für 10 S. Filter filtern die Aussetzung durch das Metall in ein 50 mL-Tube mit der epidermalen Zellsuspension. Einem Gesamtvolumen von 50 mL DPBS hinzufügen.
  9. Zentrifugieren der Zellsuspension für 10 min bei 450 X g bei Raumtemperatur.
  10. Entfernen Sie den Überstand und Aufschwemmen der epidermalen Zelle Pellet in ca. 10 mL von 37 ° C KSFM abhängig von der Größe des Pellet-Zelle. Zählen Sie die Zellen mit dem Trypan blau Färbung Methode unter Mikroskop. Die Anzahl der Zellen aus einen 10 x 15 cm-Haut-Abschnitt ist ca. 50-100 x 106 Zellen. Übertragen Sie an jedem 75 cm2 Kultur Kolben, 8 x 106 Zellen zusammen mit 12 mL von 37 ° C KSFM. Schütteln Sie die Kulturflaschen um gleichmäßige Verteilung der Zellen zu gewährleisten.
  11. Inkubieren Sie die Keratinozyten in einem Inkubator 37 ° C mit 100 % Luftfeuchtigkeit und 5 % CO2. Ändern Sie das Medium nach 2 Tagen und dreimal wöchentlich. Durchgang-Zellen, wenn die Kultur Zusammenfluss von 70-80 %, was ungefähr 2 Wochen je nach die Proliferationsrate der Keratinozyten dauert.

(2) Passagierung der Keratinozyten

  1. Erhitzen Sie die entsprechende Menge an Trypsin-EDTA-Lösung 0,05 % auf 37 ° C im Brutschrank. Verwenden Sie 4,5 mL 0,05 % Trypsin-EDTA-Lösung für eine 75 cm2 Kultur Kolben.
  2. Entfernen Sie Mittel aus den Zellen zu, und fügen Sie 4,5 mL/75 cm2 Kultur Flasche 0,05 % Trypsin-EDTA-Lösung zu den Zellen vorgewärmt. Legen Sie den Kultur-Kolben in den Inkubator (37 ° C) und nach ca. 5 min unter dem Mikroskop zu prüfen Sie, ob die Zellen lösen gestartet haben.
  3. Bei etwa 50 % der Zellen gelockert haben, schlagen Sie sanft den Kultur-Kolben gegen die Hand, die restlichen Zellen zu lösen. Fügen Sie dann um die Trypsin zu inaktivieren, 6 mL RPMI-1640 + 2 % FBS (37 ° C) in den 75 cm2 Kultur Kolben und übertragen Sie die Zellsuspension auf 50 mL Röhrchen.
  4. Spülen Sie die Kulturflaschen mit 3 mL RPMI 1640 + 2 % FBS und Hinzufügen der 50 mL-Tuben. Zentrifugieren Sie Zellen für 10 min bei 450 X g bei Raumtemperatur.
    1. Aufschwemmen der gebeizte Zellen in 10 mL KSFM (37 ° C). Zählen der Zellen und 3 x 106 Zellen auf ein 150 cm2 Kultur Fläschchen mit 20 mL KSFM (37 ° C) übertragen. Schütteln Sie den Kultur-Kolben um gleichmäßige Verteilung der Zellen zu gewährleisten. Einfrieren der Zellen, wenn die Kultur ist 80-90 % konfluierende, die dauert ca. 4-6 Tage je nach die Proliferationsrate der Keratinozyten (siehe Abschnitt 3, Einfrieren Protokoll unten). Erweitern Sie die Keratinozyten um entsprechende gefrorenen Vorräte zu generieren.

(3) Einfrieren von Keratinozyten

  1. Erhitzen Sie die entsprechende Menge an Trypsin-EDTA-Lösung 0,05 % auf 37 ° C im Brutschrank. Verwenden Sie 9 mL 0,05 % Trypsin-EDTA-Lösung für ein 150 cm2 Kultur Kolben.
  2. Entfernen Sie Mittel aus den Zellen zu, und fügen Sie 9 mL/150 cm2 Kultur Flasche 0,05 % Trypsin-EDTA-Lösung zu den Zellen vorgewärmt. Legen Sie den Kultur-Kolben in den Inkubator (37 ° C) und nach ca. 5 min unter dem Mikroskop zu prüfen Sie, ob die Zellen lösen gestartet haben.
  3. Bei etwa 50 % der Zellen gelockert haben, schlagen Sie sanft den Kultur-Kolben gegen die Hand um die verbleibenden Zellen zu lösen. Fügen Sie dann um die Trypsin zu inaktivieren, 12 mL RPMI-1640 + 2 % FBS (37 ° C) in den 150 cm2 Kultur Kolben und aspirieren der Zellsuspension auf 50 mL Röhrchen.
  4. Spülen Sie die Kulturflaschen mit 6 mL RPMI 1640 + 2 % FBS und Hinzufügen der 50 mL-Tuben. Zentrifugieren Sie die Rohre für 10 min bei 450 X g bei 4 ° C. Bereiten Sie eiskalte Zelle Medium (KSFM + 10 % DMSO) Einfrieren.
  5. Aufschwemmen der Zelle Pellet in KSFM + 10 % DMSO, zählen die Zellen und Zellen bei einer Dichte von 6 x 106 Zellen/mL mit standard langsam-Einfrieren Kryokonservierung Methoden12einfrieren.
  6. Die Keratinozyten in flüssigem Stickstoff (Dampfphase) erst unmittelbar vor Gebrauch zu speichern.

(4) Auftauen und Kultivierung gefrorenen Keratinozyten

  1. Tauen Sie schnell die entsprechenden gefrorenen Fläschchen in einem 37 ° C-Wasserbad. Verwenden Sie 70 % Ethanol, reinigen Sie die Außenseite der Cryoröhrchen. Die entsprechende Anzahl von Zellen (ca. 15.000 Zellen/cm2) auf einem Kultur-Kolben übertragen und sofort den Kultur-Kolben vorgewärmt Wachstumsmedium (KSFM) hinzufügen.
    Jede Größe von Kulturflaschen kann je nach Aufbau des Experiments verwendet werden.
  2. Verwenden Sie 5 mL Kulturmedium für eine 25 cm2 Kultur Kolben.
Die Anzahl der Zellen hinzugefügt, dass die Kultur-Flasche variieren kann, da das Wachstum der Zellen vom Spender, Spender variiert. Inkubieren Sie Zellen in einem Inkubator 37 ° C mit 100 % Luftfeuchtigkeit und 5 % CO2.
  • Änderung des Mediums nach 2 Tagen und dreimal Verwendung wöchentlich frisch vorgewärmte KSFM.
    Hinweis: Unsere Daten haben gezeigt, dass durchschnittlich 95 % der Zellen isoliert von dem hier beschriebenen Protokoll positiv für die Keratinozyten-Marker-Cytokeratine-14-13 sind.

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    Ergebnisse

    Kalzium-induzierte Terminal Differenzierung
    Menschlichen Keratinozyten unterziehen terminal Differenzierung bei der Behandlung mit Kalzium14,15,16. Primären menschlichen Keratinozyten waren isoliert und kultiviert wie im obigen Protokoll beschrieben. Bei ca. 50-60 % Zusammenfluss, die Zellen wurden mit Kalzium (1,2 mM) stimuliert oder Fahrzeug und Bilder der Zellen wurden am Tag 0, 1 und 2.

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    Diskussion

    Hier beschreiben wir, wie primären menschlichen Keratinozyten von Erwachsenen Haut leicht zu isolieren und sie in-vitro-Kultur. Dieses Modell kann nützlich sein für Forscher, die Interesse an einem Studium Haut-Krankheiten kann haben eine breite Anwendung für die Untersuchung der epidermalen Zelle Biologie

    Einige der Vorteile von dem hier beschriebenen Protokoll ist, dass im Gegensatz zu Keratinozyten isoliert von Neugeborenen Vorhaut erhalten von Neugeborenen männlichen Beschneidung ...

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    Offenlegungen

    . Der Autor hat keinen Interessenskonflikt.

    Danksagungen

    Der Autor bedankt sich bei Annette Blak Rasmussen und Kristine Moeller für ihre technische Unterstützung

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    Materialien

    Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
    NameUnternehmenKatalognummerKommentare
    KSFMThermoFisher Scientific17005-034Zellkulturmedium
    KSFM ErgänzungenThermoFisher Scientific37000-015Ergänzungen für KSFM
    DPBSThermoFisher Scientific14190-144DPBS ohne Calcium und Magnesium
    DMSOSigma-AldrichD8418Dimethylsulfoxid
    GentamycinThermoFisher Scientific15710-049Zellkulturmedium Additiv
    SterilisationsfilterSartorius16534Spritzenvorsatzfilter mit einer Porengröße von 0,2 &; Mikro; m
    TrypsinSigma-AldrichT7409Wird verwendet, um Zellen zu trypsinisieren
    GlukoseSigma-AldrichG7528-RPMI-1640
    ThermoFisher Scientific61870-010-FBS
    ThermoFisher Scientific16000044Wird verwendet, um Trypsin zu inaktivieren
    Pinzetten-Pinzetten von jedem Unternehmen können verwendet werden
    Schere--Scheren von jeder Firma können verwendet werden
    SkalpellSwann Morton0501Skalpelle von jeder Firma können verwendet werden
    70% Ethanol---
    MullpolsterNOBAMED875420Mullpolster von jedem Anbieter können verwendet werden
    FußhobelCredo Solingen1510Fußhobel von jedem Anbieter kann verwendet werden
    PetrischalenTPP93100Petrischalen aller Anbieter können verwendet werden
    Metallfilter-Hauseigene Metallfilter mit 1 mm Lochgröße
    75 cm2 KulturflaschenNUNC
    156499-150 cm2 KulturflaschenTTP90151-0,05
    % Trypsin-EDTA-LösungThermoFisher Scientific25300-062Zur Trypsinisierung von Zellen während der Passage

    Referenzen

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