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Methodenartikel

Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie als Vorbild chronischer Herzinsuffizienz bei Schweinen

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DOI:

10.3791/57030

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17. Februar 2018

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1Department of Physiology, First Faculty of Medicine, Charles University, 2Department of Cardiology, Na Homolce Hospital, 3Department of Cardiovascular Surgery, Second Faculty of Medicine, Charles University

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie bei Schweinen zu produzieren. Dieses Modell stellt einen potenten Weg, um die Hämodynamik der progressiven chronischen Herzinsuffizienz und die Auswirkungen der angewandten Behandlung zu studieren.

Zusammenfassung

Ein stabiles und zuverlässiges Modell der chronischen Herzinsuffizienz ist erforderlich für viele Experimente zu Hämodynamik zu verstehen oder zu Auswirkungen neuer Behandlungsmethoden zu testen. Hier präsentieren wir ein solches Modell von Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie, die durch schnelle kardiale Stimulation bei Schweinen hergestellt werden können.

Ein einzelner Tempo Lead ist eingeführten Transvenously in vollständig betäubt gesunde Schweine, an die Spitze des rechten Ventrikels und fixiert. Seinem anderen Ende ist dann der paravertebralen Region dorsal getunnelt. Dort ist es zu einer Inhouse modifizierte Herz-Schrittmacher-Einheit verbunden, die dann in einer subkutanen Tasche implantiert wird.

Nach 4-8 Wochen schnelle ventrikuläre Stimulation zu Preisen von 200-240 Schläge/min körperliche Untersuchung zeigte Anzeichen einer schweren Herzinsuffizienz - Tachypnoe, spontanen Sinus-Tachykardie und Müdigkeit. Echokardiographie und Röntgenbild zeigte Dilatation der Herzkammern, Ergüsse und schwere systolische Dysfunktion. Diese Ergebnisse entsprechen auch dekompensierten dilatative Kardiomyopathie und werden auch nach der Beendigung der Tempo beibehalten.

Dieses Modell der Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie kann verwendet werden, für das Studium der Pathophysiologie der progressive chronische Herzinsuffizienz, insbesondere hämodynamischen Veränderungen durch neue Behandlungsmethoden wie mechanische Kreislauf unterstützt. Diese Methode ist einfach durchzuführen und die Ergebnisse sind robust und reproduzierbar.

Einleitung

Die Vielfalt der neuen Behandlungsmethoden für Herzinsuffizienz (HF), vor allem die wachsende weltweite Nutzung von mechanischen Kreislauf unterstützt und extrakorporalen Membran Oxygenierung (ECMO) in der klinischen Praxis spiegelt sich in der präklinischen experimentelle Prüfung. Das Hauptaugenmerk wurde auf die hämodynamischen Veränderungen durch die untersuchten Behandlungsmodalitäten, nämlich auf den systemischen Blutdruck1, myokardialen Kontraktilität, Druck und Volumenänderungen in den Herzkammern und Herz arbeiten2,3, arteriellen Blutflusses im systemischen und peripheren Arterien, zusammen mit metabolischen Kompensation4 - regionale Gewebesättigung, pulmonale Perfusion und Blut-Gas-Analyse. Andere Studien richten sich über Langzeiteffekte der Kreislaufunterstützung5, begleitende Entzündungen oder Auftreten von Hämolyse. Alle diese Arten von Studien brauchen eine stabile Biomodel von kongestiver HF.

Die meisten der veröffentlichten Experimente auf Links ventrikulären (LV) Leistung und Hämodynamik der mechanischen Kreislaufunterstützung wurden auf experimentelle Modelle der akuten HF2,6,7,8 , 9 , 10, oder sogar auf völlig intakten Herzen. Auf der anderen Seite sind in der klinischen Praxis mechanische Kreislauf unterstützt oft in einen Status der Kreislauf Dekompensation angewandt, die aufgrund der bisher vorliegenden chronischen Herzkrankheiten entwickelt. In solchen Situationen die Anpassungsmechanismen sind ausgereift und können eine wichtige Rolle in der Widersprüchlichkeit der Ergebnisse nach dem "Schärfe oder Chronifizierung" beobachtet der zugrunde liegenden Herzerkrankung11. Deshalb kann ein stabiles Modell der chronischen HF neue Einblicke in pathophysiologischen Mechanismen und Hämodynamik bieten. Zwar gibt es Gründe, warum die Verwendung von chronischen HF Modelle knapp - sind zeitraubende Vorbereitung, Instabilität des Herzrhythmus, ethische Fragen und Sterblichkeit - ihre Vorteile klar, wie sie Anwesenheit von langfristigen neurohumoralen Aktivierung anbieten, allgemeinen systemischen Anpassung, funktionelle Veränderungen der Kardiomyozyten und bauliche Veränderungen des Herz Muskel und Ventile12,13.

In der Regel die Verfügbarkeit und Vielfalt von Tiermodellen zur hämodynamischen Untersuchungen ist breit und bietet für viele Bedürfnisse. Für diese Experimente, vor allem Schweine, Hunde, Schafe, oder mit kleineren Einstellungen Murine werden Modelle, ausgewählt und bieten eine gute Simulation des erwarteten menschliche körperliche Reaktionen14. Darüber hinaus werden Formen des einzelnen Organ Experimente immer häufiger15. Um die Pathophysiologie der HF zuverlässig zu imitieren, ist Verkehr künstlich verschlechtert wird. Schäden an das Herz kann durch verschiedene Methoden verursacht werden oft durch Ischämie, Arrhythmie, Drucküberlastung oder kardiotoxische Wirkung von Drogen, mit diesen hämodynamischen Verschlechterung des Modells. Zur Herstellung eines echten chronischen HF-Modells muss Zeit zur Verfügung gestellt werden, für die Entwicklung der langfristigen Anpassungdes des gesamten Organismus. Eine zuverlässige und stabile Modell wird auch Tachykardie-induzierten Kardiomyopathie (TIC), vertreten durch schnelle kardiale Stimulation bei Versuchstieren erzeugt werden können.

Es hat sich gezeigt, dass in prädisponierten Herzen, lang anhaltende unaufhörliche Tachyarrhythmien systolische Dysfunktion und Dilatation mit verminderter Herzleistung führen können. Die Bedingung gemäß TIC wurde zuerst im Jahre 191316, am meisten benutzt in den Experimenten seit 196217, beschrieben und ist jetzt eine allgemein anerkannten Störung. Seinen Ursprung kann in verschiedenen Arten von Herzrhythmusstörungen liegen - supraventrikuläre und ventrikuläre Tachykardie können zu progressive Verschlechterung der systolischen Funktion, biventrikuläres Dilatation und progressive klinische Anzeichen von HF einschließlich Aszites, Ödeme, Lethargie führen , und letztlich kardiale Dekompensation zu terminal HF und, wenn nicht behandelt, Tod.

Ähnliche Effekte der Kreislauf Unterdrückung wurden durch Einführung von hohen kardiale Stimulation in Tiermodellen beobachtet. In einem porcinen Modell eine Vorhofflimmern oder ventrikuläre Herzfrequenz über 200 Schläge/Minute ist potent genug, induzieren Endstadium HF in einem Zeitraum von 3 bis 5 Wochen (progressive Phase) mit Merkmalen der TIC, obwohl interindividuelle Unterschiede18, existieren 19. diese Ergebnisse entsprechen auch dekompensierten Kardiomyopathie und sind vor allem bewahrt auch nach der Beendigung der Stimulation (chronische Phase)19,20,21,22, 23.

Schweine, Hunde oder Schafe TIC-Modelle waren immer wieder bereit, die Pathophysiologie der HF14, studieren wie Änderungen an der LV die Merkmale der dilatative Kardiomyopathie24imitieren. Die hämodynamischen Eigenschaften sind gut beschrieben - erhöhte ventrikuläre End-diastolischen Druck, verminderte Herzleistung, erhöhten systemischen Gefäßwiderstand und Dilatation der beiden Ventrikeln. Im Gegensatz dazu Wand Hypertrophie ist nicht konsequent eingehalten und sogar Wand Ausdünnung wurde von einigen Forschern25,26beschrieben. Mit Fortschreiten der ventrikulären Dimensionen entwickelt Aufstoßen auf ventrikulären Ventile26.

In dieser Publikation präsentieren wir ein Protokoll, um einen Tick zu produzieren, indem langfristige schnell kardiale Stimulation bei Schweinen. Dieses Biomodel steht potenten Mittel, dekompensierten dilatative Kardiomyopathie, Hämodynamik progressive chronische HF mit niedrigen Herzleistung und Auswirkungen der angewandten Behandlung zu studieren.

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Protokoll

Dieses experimentelle Protokoll wurde überprüft und genehmigt durch das institutionelle Tier Expert Committee am ersten medizinischen Fakultät der Karls-Universität, und wurde an der Universität Versuchslabor, Institut für Physiologie, erste Fakultät durchgeführt Medizin, Karls-Universität in Prag, Tschechische Republik, in Übereinstimmung mit Gesetz Nr. 246/1992 Slg., über den Schutz der Tiere gegen Grausamkeit. Alle Tiere wurden behandelt und betreut gemäß dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren, 8. Auflage, veröffentlicht von National Academies Press, 2011. Alle Verfahren wurden nach tierärztlicher Standardkonventionen durchgeführt und am Ende jeder Studie, das Tier geopfert wurde und eine Autopsie durchgeführt. Durch geeignete Anatomie gekreuzt fünf gesunde weibliche Schweine (Sus Scrofa Domestica) bis zu 6 Monaten wurden in diesem Experiment. Ihre mittlere Körpergewicht war 66 ± 20 kg zum Zeitpunkt der Datenerhebung.

1. Allgemeine Anästhesie

  1. Nach 1 Tag des Fastens Anästhesie durch intramuskuläre Verabreichung von Midazolam (0,3 mg/kg) und Ketamin Hydrochlorid (15-20 mg/kg), der Glutealregion zu initiieren.
  2. Peripheren Kanüle in die Vene marginal Ohr für intravenös Anwendungen einfügen.
  3. Verwalten Sie intravenöse Dunkleosteus Propofol (2 mg/kg) und Morphin (0,1 - 0,2 mg/kg).
  4. Bieten Sie Tiere mit Sauerstoff über eine Gesichtsmaske und voraus Orotracheale Intubation mit einem gefesselten endotracheal Schlauch mit einem Durchmesser von 6,5-7,5 mm.
  5. Weiterhin die totale intravenöse Anästhesie durch Kombination von Propofol (6-12 mg/kg/h), Midazolam (0,1 - 0,2 mg/kg/h), und Morphin (0,1 - 0,2 mg/kg/h), Anpassung der Dosen nach individuellen Antworten - unterdrücken spontanen Atemzüge, Hornhaut Reflexe und motorische Reaktion. Schützen Sie das Tier Augen mit Salbe, Trockenheit zu verhindern.
  6. Betreiben Sie die Beatmung durch eine geschlossene automatische Vorrichtung auf adaptive Unterstützung Belüftung weiterhin Ziel Ende-Gezeiten CO2 von 38-42 MmHg und ausreichend Hämoglobin Sättigung von 95-99 % festgelegt. Überwachen Sie alle lebenswichtige Funktionen, insbesondere Herzfrequenz und Körpertemperatur.
  7. Legen Sie das Tier durch die Sicherung ihrer Beine sanft auf dem OP-Tisch in der Rückenlage.
  8. Verabreichen Sie breites Spektrum Antibiotika - 1 g Cefazolin durch die Ohr-Vene-Kanüle intravenös.

(2) ventrikuläre führen Implantation

  1. Suchen Sie chirurgische Websites und Rasieren Sie die Haut richtig mit einem Rasiermesser auf (1) der Vena Region über dem sternocleidomastoideus-Muskel und (2) die einseitige paravertebralen Region auf der Rückseite den Hals des Tieres.
  2. Mit vaskulären Ultraschallsonde, visualisieren Sie die äußere Halsschlagader zu und markieren Sie die Lage auf der Haut. Suchen Sie die Halsschlagader sowie zur Vermeidung von seinen Verletzungen.
  3. Decken Sie nach der breiten Hautdesinfektion mit Povidon-Jod mit einem sterilen OP-Tuch mit dem Loch über den markierten Bereich der Vena ab.
  4. Bereiten Sie alle notwendigen Werkzeuge für die Herzschrittmacher Implantation vor und halten sie steril. Es ist entscheidend für eine sterile Umgebung während des Verfahrens zu erhalten.
  5. Schneiden Sie die Haut parallel über die äußere Halsschlagader, bilden Sie eine flachere subkutane Tasche im weichen Gewebe zu, nicht mehr als 10 mm tief. Keine großen Schiffe nicht aussetzen.
  6. Legen Sie von der Unterseite der vorgeformten Tasche eine Hülle in äußere Halsschlagader, unter Verwendung der standard Seldingertechnik-Technik. Zunächst legen Sie eine Soft-Tip-Führungsdraht durch eine Punktionsnadel 12G, und dann über den Führungsdraht führen Sie ein 7-Französisch Kunststoff Träne Weg Einführhilfe Mantel mit einen Dilator ein.
  7. Führen Sie unter Röntgendurchleuchtung Anleitung eine 58 cm Tempo führen durch diese Scheide ein und positionieren Sie die Spitze an die Spitze des rechten Ventrikels. Dann die Hülle zu entfernen und die aktive Spitze der Elektrode auf das Myokard durch aufschrauben, die Helix zu fixieren.
  8. Testen der Tempo-Parameter - das Blei gefühlte Signal von ventrikulären Elektrokardiogramm und Impedanz muss stabil sein, Tempo Schwelle soll unter einer Amplitude von 1 V mit 0,4 ms Pulsdauer.
  9. Ziehen Sie eine Gummimanschette an Tempo Leine und fixieren Sie beide zusammen an der Unterseite der vorgeformten Vena subkutanen Tasche mit zwei nicht-resorbierbarem Nahtmaterial geflochten Thread Stichen. Wichtig ist, muss genügend Länge des Schrittmachers führen eingefügt werden, wenn man bedenkt das mögliche Wachstum des Tieres.

(3) subkutane führen Tunnelbau

  1. Das Tier auf seiner Seite umdrehen und zuvor rasierte Haut Region seitlich an den Backbone zu desinfizieren, dann abdecken mit einem sterilen OP-Tuch mit einem Loch. Sicherstellen Sie, dass die Vena subkutanen Tasche und die Führung steril bleiben.
  2. Schneiden Sie die Haut seitlich an den Backbone und bilden Sie eine Tiefe, geräumige, subkutane Tasche. Verwenden Sie stumpf Vorbereitung und stoppen Sie jede mögliche Blutung zu.
  3. Nehmen Sie eine Verlängerungsrohr Weichgummi aus einer sterilen Infusion gesetzt und die beiden Enden abschneiden. Mit einem tunneling Tool, Vorform einen direkte subkutanen Tunnel, die Vena und dorsalen subkutanen Taschen mit diesem Verlängerungsrohr.
  4. Schließen Sie freie Rohrende an die ventrikuläre Führung durch ziehen auf dem IS-1 Anschluss und ziehen Sie die Führung durch die vorgeformten Tunnel in der dorsalen subkutanen Tasche durch das Rohr dorsal ziehen. Es kann zur Sicherung der Verbindung mit einer Seidenkrawatte nützlich.
  5. Entfernen Sie das tunneling-Tool und das Verlängerungsrohr, Freilegung der ventrikuläre Blei aus der dorsalen subkutanen Tasche.

(4) Herzschrittmacher Implantation

  1. Implantierbare Doppelkammer-Herz-Schrittmacher-Einheit mit dem "Y" Verbindungsteil eingerichtet. Die "Y"-Verbindung ermöglicht eine konvergente Verbindung der beiden Schrittmacher Ausgänge verbunden und miteinander verbunden, um die einzelnen Tempo führen (Abbildung 1 und Abbildung 2). Diese Einstellung wird später eine Vielzahl von Frequenzen Tempo bieten.
  2. Nach dem Anschließen des Schrittmachers führen, Schrauben Sie alle der IS-1 Verbindung in der Herzschrittmacher-Header-Einheit und das "Y"-Leiter-Anschluss.
  3. Das ganze System in die Tiefe Rückentasche Tempo zu verstecken. Es muss genügend Platz um bequem die Schrittmacher-Einheit und eine redundante führen.
  4. Überprüfen Sie die endgültige Tempo-Parameter. Stellen Sie sicher, dass kardiale ventrikuläre Stimulation von beiden Schrittmacher-Ausgänge möglich ist.
  5. Spülen mit Povidon-Jod und schließen Sie beide subkutanen Taschen. Verwendung resorbierbar geflochten Thread um Bindegewebe Schichten und nicht resorbierbaren Naht Anpassungsbedarf Haut Naht.

5. postoperative Pflege

  1. Beobachten Sie das Tier genau, bis es ausreichend Bewusstsein wiedererlangt.
  2. In ein breites Spektrum intravenöse antibiotische Therapie fortgesetzt, bis die Wunden verheilt sind - Cefazolin 1 g alle 12 Std. verwalten Analgetika in Dosierung geeignete, z. B. Morphin 0,2 mg/kg alle 6-12 h für 3 Tage durch subkutane Injektion. Wenn nötig, machen Sie Dosisanpassungen Schmerzen adäquat zu verhindern.
  3. Legen Sie das Tier in eine komfortable, ruhige Anlage bei Raumtemperatur. Freien Zugang zu Wasser und geeignete Ernährung zu ermöglichen.
  4. Wunden Sie mit sterilen scheuert sich regelmäßig, um saubere Heilung zu erhalten.
  5. Um Ruhe nach dem chirurgischen Eingriff zu ermöglichen, halten Sie die Schrittmacher gehemmt durch native Herzrhythmus für mindestens 3 Tage.
  6. Entfernen Sie die nicht-resorbierbare Hautnähte als vollständig geheilt, ca. 10-14 Tage nach dem Eingriff.

6. Protokoll Tempo

  1. Starten Sie das Tempo Protokoll nach einer ausreichenden Ruhezeit. Zunächst, erhöhen Sie das Tempo ventrikuläre Herzfrequenz 200 Schläge/min durch Festlegen der Doppelkammer-Schrittmacher auf Modus D00, 100 Schläge/min und damit auch das AV-Delay bis 300 ms (entsprechend genau das Tempo um Tempo Intervall, siehe Tabelle 1) einstellen. Wählen Sie die unipolare Stimulation in beide Ausgänge.
  2. Erhöhen Sie schrittweise die rasante Herzfrequenz 220 Schläge/min nach 1 Woche bis zu 240 Schläge/min nach 2 Wochen (Abbildung 3). Halten Sie kontinuierliche Stimulation bei dieser Frequenz, wenn es nicht hämodynamisch toleriert wird. Wenn die HF zu schnell fortschreitet, reduzieren Sie die rasante Herzfrequenz bevor es wieder nach einer weiteren Woche erhöhen.
  3. Verwenden Sie Auskultation der Herzschlag, EKG und Herzschrittmacher Verhör täglich um die Herzfrequenz und konstante Tempo-Parameter, einschließlich Lebensdauer der Batterie zu überprüfen.

(7) Herzinsuffizienz Induktion und Überwachung

  1. Sorgen für regelmäßige Betreuung durch einen spezialisierten Tierarzt und allgemeinen Gesundheitszustand des Tieres zu überwachen. Klinische Beobachtungen native Herz- und Atemfrequenz, Bewertung der periphere Pulsoximetrie und Reduktion in spontane körperliche Aktivität oder Appetit zu erhöhen geben Auskunft über HF fortschreiten.
  2. Nutzen Sie den Vorteil der drahtlosen transkutane Herzschrittmacher Verhör und, wenn möglich, kontinuierliche EKG-Aufzeichnung - häufig nicht nachhaltig ventrikuläre Tachykardien (VT) sind ein Zeichen der schweren HF-Progression.
  3. Verwenden Sie echokardiographische Bewertungen, um die strukturelle und funktionelle Herz-Änderungen zu offenbaren. Achten Sie darauf, eine optimale Bildfenster nach Schweinen Anatomie und Herz Dilatation - für einen typischen 4-Kammer-Blick zu finden setzen Sie den Schallkopf auf der rechten Seite direkt unter dem Xiphoid und Winkel es auf den Hals oder Schulter zeigen. Verwenden Sie für kurze Achse Ansichten Intercostalneuralgie Windows. Reduktion der linksventrikulären Auswurffraktion in native Herzrhythmus und ventrikulären Auswürgen sollte nach ein paar Wochen spürbar sein.
    Hinweis: Erhebliche interindividuelle Unterschiede der hohen Rate ventrikulären Schrittmachers Toleranz vorhanden sein. Daher sind häufige Überwachung und individuell angepasste Einstellung des Schrittmachers Protokolls erforderlich.

figure-protocol-1
Abbildung 1: Herz-Tempo Einheit Schaltplan. Die Doppelkammer-Schrittmacher (1), ein "Y" geprägt-Adapter (2) Durchführung von konvergent führen beide Herzschrittmacher Ausgänge zusammen, um ein einzelnes Tempo (3). Die Spitze des potenziellen Kunden ist in der apikalen Teil des RV Hohlraums (4) fixiert. Diese Einstellung bietet eine breite Palette von hohem Tempo Frequenzen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

figure-protocol-2
Abbildung 2 : Herz-Tempo Einheit Röntgen (A) und Fotografie (B) von der zwei-Kammer-Schrittmacher (1), ein "Y" Form Adapter (2), und die ventrikuläre Stimulation (3) führen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Gewünschte HREingestellten Schrittmacher rateTempo, Tempo Intervall
Schläge/minSchläge/minMS
200100300
220110270
240120250
250125240

Tabelle 1: Parameter der Herzschrittmacher. Um hohe kardiale Stimulation mit dem implantierten house veränderten Doppelkammer-Herzschrittmacher-Gerät ermöglichen, zeigt die Tabelle die gewünschte Tempo Herzfrequenz (HF) und passenden Tempo, Intervallwerte Tempo. Der Schrittmacher muss auf D00 Betriebsart mit einer Rate von der Hälfte der gewünschten HR festgelegt werden, und das AV-Delay soll das entsprechende Tempo, Tempo Intervall in Millisekunden.

figure-protocol-3
Abbildung 3 : Pacing Protokoll. Die progressive Phase der TIC Induktion beginnt nach einer Ruhephase von 3 Tagen. Dann der Schrittmacher soll D00-Modus mit einer Tempo Frequenz von 50 % der gewünschten Tempo Frequenz und AV-Delay soll das passende Tempo, Tempo Intervall (siehe Tabelle 1). Dank der "Y" geprägt-Adapter sind beide Ausgänge Herzschrittmacher in einen einzigen Tempo Lead durchgeführt. BPM = Beats pro Minute. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

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Ergebnisse

Testen des Modells: Nach Anzeichen einer dekompensierten chronischen HF prominent wurde, Anästhesie und künstliche Beatmung verabreicht wurden, wieder nach den oben beschriebenen Prinzipien, aber Dosierung durch niedrige Herz-angepasst wurde Ausgabe27. Durch mögliche Cardiodepressive Wirkung von Anästhetika ist die sorgfältige intensive Überwachung der Vitalfunktionen nötig.

Das Tier in R...

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Diskussion

Chronische HF ist ein großes Gesundheitsproblem, das erheblich zur Morbidität und Mortalität beiträgt. Die Pathogenese und Progression von HF in den Menschen ist komplex, deshalb entsprechende Tiermodell ist entscheidend, um die zugrunde liegenden Mechanismen zu untersuchen und testen neuen Therapeutika, die native schweren Krankheitsverlauf beeinträchtigen sollen. Um die Pathogenese zu untersuchen, werden große Tiermodelle für experimentelle Erprobung eingesetzt.

Chirurgische Modelle von chro...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von Charles Universität Forschungsstipendien GA UK Nr. 538216 und GA UK Nr. 1114213 unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Medication
midazolamRocheDormicumAnästhetikum
KetaminhydrochloridRichter GedeonCalypsolAnästhetikum
PropofolB.BraunPropofolAnästhetikum
CefazolinMedochemieAzepoAntibiotikum
Silber Aluminium AerosolHenry Schein9003273Tinktur
Povidon JodEgis PrahaBetadineDesinfektion
MorphinBiotika BohemiaMorphin 1% injanalgetic
Tools
Metzenbaum Schere, Lanzette mit #22 Klinge, DeBakey Pinzette, Nadeltreiberchirurgische Grundausstattung
Kauterisierer
2-0 VicrylEthiconV323Hresorbierbares geflochtenes Nahtmaterial
2-0 Perma-Hand SilkEthiconA185HSeiden-Krawattennaht
2-0 ProleneEthicon8433Hnicht resorbierbares Nahtmaterial
Diagnosegeräte
ESP C-BogenGE HealthcareESPRöntgenfluor-C-Bogen
Acuson x300Siemens HealthcareUltraschallsystem
Acuson P5-1Siemens Healthcareechokardiographische Sonde
Acuson VF10-5Siemens Healthcaresonographische Gefäßsonde
perivaskuläre Durchflusssonden
TS420Transonic Systemsperivaskuläres Flussmodul
TruWave Edwards LifesciencesT001660Aflüssigkeitsgefüllter Druckwandler
7.0F VSL PigtailTransonic SystemsDrucksensorkatheter
INVOS 5100C Zerebrales/Somatisches OximeterSomanetics/MedtronicNahinfrarotspektroskopie
CCO Combo KatheterEdwards Lifesciences744F75Swan-Ganz Katheter für Lungenarterie
Vigillace IIEdwards LifesciencesVIG2EHerzzeitvolumen-Monitor
7.0F VSL PigtailTransonic SystemsDruck-Volumen-Katheter
ADV500Transonic SystemsDruck-Volumen-System
LabChart und PowerLabADInstrumentsDatenerfassungs- und Analysesystem
Prism 6GraphPadAnalyse software
Stimulationsgeräte
ICS 3000Biotronic349528Herzschrittmacher Programmierer
ERA 3000Biotronic128828externer Herzschrittmacher
Effecta DRBiotronic371199Zweikammer-Herzschrittmacher
Tendril STSSt. Jude Medical2088TC/58ventrikuläre Stimulation
Blei Permanent AdapterOsypkaArtikel 53422konvergentes "Y" Verbindungsteil
Blei Permanent AdapterOsypkaArtikel 53904konvergentes "Y" Verbindungsteil
Tear-Away Introducer 7FB.Braun5210593Tear Away Einführschleuse 
Split Cath TunnelermedCompAST-LTunnelwerkzeug
InfusionsleitungMPH Medical Devices2200045Verbindungsleitung
3PSB, 4PSB und 6PSB Transonic Systems statistische

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