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Methodenartikel

Kurzfristig frei schwebende Scheibenkulturen aus dem erwachsenen menschlichen Gehirn

9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/59845

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5. November 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Ein Protokoll zur Vorbereitung frei schwebender Scheibenkulturen aus dem erwachsenen menschlichen Gehirn wird vorgestellt. Das Protokoll ist eine Variation der weit verbreiteten Slice-Kultur-Methode mit Membraneinsätzen. Es ist einfach, kostengünstig und wird für die Durchführung von kurzfristigen Assays empfohlen, die darauf abzielen, Mechanismen der Neurodegeneration hinter altersbedingten Hirnerkrankungen zu entwirren.

Zusammenfassung

Organotypische, oder Scheibenkulturen, wurden weit verbreitet verwendet, um Aspekte des zentralen Nervensystems zu modellieren, das in vitro funktioniert. Trotz des Potenzials von Schnittkulturen in der Neurowissenschaft sind Studien, die erwachsenes Nervengewebe zur Vorbereitung solcher Kulturen verwenden, immer noch rar, insbesondere solche von menschlichen Probanden. Die Verwendung von erwachsenem menschlichem Gewebe zur Vorbereitung von Scheibenkulturen ist besonders attraktiv, um das Verständnis menschlicher Neuropathologien zu verbessern, da sie einzigartige Eigenschaften besitzen, die typisch für das reife menschliche Gehirn sind, das an Scheiben aus Nagetieren fehlt (in der Regel neonatal) Nervengewebe. Dieses Protokoll beschreibt, wie Man Gehirngewebe von lebenden menschlichen Spendern gesammelt verwendet, um resekttive Gehirnchirurgie zur Vorbereitung kurzfristiger, frei schwebender Scheibenkulturen. Es werden auch Verfahren zur Aufrechterhaltung und Durchführung biochemischer und zellbiologischer Assays mit diesen Kulturen vorgestellt. Repräsentative Ergebnisse zeigen, dass die typische kortikale Kaschierung des Menschen nach 4 Tagen in vitro (DIV4) in Scheiben konserviert wird, wobei die Hauptanzahl der neuronalen Zelltypen zu erwarten ist. Darüber hinaus erleiden Scheiben bei DIV4 einen robusten Zelltod, wenn sie mit einem toxischen Reiz herausgefordert werden (H2O2), was auf das Potenzial dieses Modells hindeutet, als Plattform in Zelltod-Assays zu dienen. Diese Methode, eine einfachere und kostengünstigere Alternative zum weit verbreiteten Protokoll mit Membraneinsätzen, wird hauptsächlich für die Durchführung von kurzfristigen Assays empfohlen, die darauf abzielen, Mechanismen der Neurodegeneration hinter altersbedingten Hirnerkrankungen zu entwirren. Obwohl das Protokoll der Verwendung von kortikalem Gewebe gewidmet ist, das von Patienten gesammelt wurde, die zur chirurgischen Behandlung einer pharmakoresistenten temporalen Lappenepilepsie eingereicht wurden, wird argumentiert, dass Gewebe, das aus anderen Hirnregionen/-bedingungen gesammelt wurde, auch als Quellen betrachtet werden, um ähnliche frei schwebende Scheibenkulturen zu erzeugen.

Einleitung

Die Verwendung menschlicher Proben in der Forschung ist eindeutig eine großartige Option, um menschliche Hirnpathologien zu untersuchen, und moderne Techniken haben neue Wege für robuste und ethische Experimente mit Patientengewebe eröffnet. Methoden wie organotypische/Slice-Kulturen aus erwachsenen menschlichen Gehirn wurden zunehmend in Paradigmen wie Optogenetik1, Elektrophysiologie2,3,4,5, Plastizität 6,7,8,

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Protokoll

Lebende erwachsene Hirngewebe wurden von Patienten gewonnen, die sich einer resekttiven Neurochirurgie zur Behandlung einer pharmakoresistenten temporalen Lappenepilepsie unterziehen (Abbildung 1A). Alle Verfahren wurden von der Ethikkommission des Klinikkrankenhauses der Ribeiréo Preto Medical School (17578/2015) genehmigt, und die Patienten (oder ihre verantwortliche Person) stimmten zu und unterzeichneten die Vereinbarten Zustimmungsbedingungen. Die Entnahme des Gewebes erfolgte durch das Neurochirurgie-Team am Epilepsie-Chirurgiezentrum (CIREP - Clinics Hospital an der Ribeiréo Preto Medical School, Universität Sao Pa....

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Ergebnisse

Ein kritischer Aspekt, um die Qualität und Gesundheit von kultivierten Scheiben zu bewerten, ist das Vorhandensein und die typische Morphologie der erwarteten neuronalen Zelltypen, Neuronen und Gliazellen. Die typische Architektur der menschlichen kinetischen Laminierung wurde in einer Scheibe bei DIV4 beobachtet, die durch neuronale Immunlabelierung(Abbildung 2D) offenbart wurde. Darüber hinaus wurde auch das erwartete Vorhandensein von Mikroglia und Astroglia (

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Diskussion

Dieses Protokoll zur Herstellung frei schwebender, kurzfristiger Scheibenkulturen ist eine alternative Methode zur Kultivierung erwachsener menschlicher neokortikaler Scheiben. Ein solches Protokoll für Scheibenkulturen kann für Studien über (aber nicht beschränkt auf) Optogenetik1,44,45, Elektrophysiologie2,3,4,

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Arbeit wird unterstützt von FAPESP (Grant 25681-3/2017 to AS), CAPES (Post-Doctoral fellowship PNPD/INCT-HSM to A.F. and Pre-Doctoral fellowship to N.D.M.) und FAEPA. G.M.A. hält ein Master-Stipendium von FAPESP (MS 2018/06614-4). N.G.C. besitzt ein CNPq Research Fellowship. Wir danken den Patienten und ihren Familien für die Vermehrung der resezierten Gewebe für diese Studie. Wir möchten die Unterstützung von Bewohnern, Krankenschwestern, Technikern und dem CIREP-Team des Klinischen Krankenhauses der Ribeiréo Preto Medical School, Universität von Sao Paulo, würdigen, die in verschiedenen Phasen des Prozesses geholfen haben.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
2-PropanolMerck1096341000
Acrylamid/Bis-Acrylamid, 30%ige LösungSigma AldrichA3449 
AgaroseSigma AldrichA9539
AmmoniumpersulfatSigmaA3678-25G
Amphotericin BGibco15290-018
Antikörper anti-ERK 2 (Kaninchen)Santa Cruz Biotecnologysc-154Verdünnung 1:1.000 in BSA 2,5%
Antikörper anti-pERK (Maus)Santa Cruz Biotecnologysc-7383Verdünnung 1:1.000 in BSA 2,5%
B27Gibco17504-044
BDNFSigma AldrichSRP3014
Rinderserum AlbuminSigma AldrichA7906
Bradford 1x FarbstoffreagenzBioRad500-0205
EDTASigmaT3924Verwendet in RIPA-Puffer
GlukoseMerck108337
GlutamaxGibco35050-061
Hank's Balanced SaltsSigma AldrichH1387-10X1L
HepesSigma AldrichH4034
SalzsäureMerck1003171000
Wasserstoffperoxid (H2O2)Vetec194
Maus IgG, HRP-gebundenes ganzes Ab (Anti-Maus)GENA931-1ML
NaClMerck1064041000Verwendet in RIPA-Puffer
Neurobasal AGibco10888-022
Fettfreie Trockenmilch (Molico)NestléWird zur Membranblockierung
verwendet: PBS-Puffer, pH 7,2Laborclin590338
Penicilin/Streptomicin,Sigma AldrichP4333,
KaliumchloridMerck1049361000
Prime Western Blotting Detection ReagenzGERPN2232
Kaninchen-IgG, HRP-gebundenes ganzes Ab (Anti-Kaninchen)GENA934-1ML
SDSSigmaL5750Wird in RIPA-Puffer
verwendet TEMEDGE17-1312-01
Thiazolylblaues Tetrazoliumbromid (MTT)Sigma AldrichM5655
TrisSigmaT-1378Wird in RIPA-Puffer
verwendet Triton x-100SigmaX100Verwendet in RIPA-Puffer
ReinstwasserMilliporeSteriles Wasser, gewonnen aus dem MiliQ Wasseraufbereitungssystem
Equipment and Material24-Well-Platten
CorningCL S3526Flacher Boden mit Deckel
Amersham Potran Premium (Nitrozellulosemembran) GE29047575
Carbogen MixtureWhite Martins95% O2, 5% CO2
CO2 InkubatorNew Brunswick ScientificCO-24Inkubation von Scheiben 5% CO2, 36º C
Microplate ReaderMolecular Devices
MikroröhrchenGreiner0016081,5mL Mikroröhrchen
Motorisierter StößelKimble Chase
PlastiklöffelGröße eines Dessertlöffels
RasierklingeBicChrome Platinum, wird beim Schneiden mit Vibratom
verwendet SkalpellklingeBecton Dickinson (BD)Nummer 24Zum Schneiden von Gewebe; empfohlener Sekundenkleber in gleicher oder kleinerer Größe
(Loctite Super Bonder)HenkelZusammensetzung: Etilcianoacrilato; 2-Propensäure; 6,6'-di-terc-butil-2,2'-metilenodi-p-cresol; Homopolymer
Vibratom Leica14047235612 - VT1000S
Name des Materials/ Ausrüstung für Immunhistochemie
Antikörper anti-NeuN (Maus)Millipore MAB377Verdünnung 1:1.000 in Phosphatpuffer
Antikörper gegen GFAP (Maus)MerckMAB360Verdünnung 1:1.000 in Phosphatpuffer
Antikörper gegen Iba1 (Kaninchen)AbcamEPR16588 - ab178846Verdünnung 1:2.000 in Phosphatpuffer
Biotinylierter Anti-Maus-IgG-Antikörper (H+L)VectorBA-9200
DABSigma AldrichD-9015
EntellanMerck107960
EthanolMerck1.00983.1000
GelatinSynth00G1002.02.AEWird zur Beschichtung von Objektträgern
verwendet MikrotomLeicaSM2010RAusgestattet mit Gefriertisch (BFS-10MP, Physiotemp), eingestellt auf -40º C
Normales EselserumJackson Immuno Research017-000-121
ParaformaldehydSigma Aldrich158127
Kaninchen IgG, HRP-linked whole Ab (Anti-Kaninchen)GENA934-1ML
Objektträger (Star Frost)Knittel GlaserGelatine beschichtete Objektträger
SaccharoseVetec60REAVET017050
Vectastain ABC HRP Kit (Peroxidase, Standard)VectorPK-4000, Kit Standard
XylolSynth01X1001.01.BJ
, , , ,

Referenzen

  1. Andersson, M., et al. Optogenetic control of human neurons in organotypic brain cultures. Scientific Reports. 6, April issue 1-5 (2016).
  2. Granholm, A. C., et al. Morphological and electrophy....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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