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Methodenartikel

Messung der relativen Insulinsekretion mit einem co-secreted Luciferase Surrogate

7.2K Aufrufe

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DOI:

10.3791/59926

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25. Juni 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt, wie man schnelle low-cost Luziferase-Assays bei mittlerem Durchsatz mit einer Insulin-verknüpften Gaußsia-Luziferase als Proxy für Insulinsekretion aus Beta-Zellen durchführt. Der Assay kann mit den meisten Lumineszenzplattenlesern und Mehrkanalpipetten durchgeführt werden.

Zusammenfassung

Die Durchführung von Antikörper-basierten Assays für die sekrete Insulin-Nachprobensammlung erfordert in der Regel ein paar Stunden bis zu einem Tag Assay-Zeit und kann teuer sein, je nach dem spezifischen Assay. Abgesonderte Luziferase-Assays beschleunigen die Ergebnisse und senken die Assay-Kosten pro Probe erheblich. Hier stellen wir einen relativ ungenutzten Ansatz zur Messung der insulinsekretotischen Aktivität von Bauchspeicheldrüsenzellen mit Gaussia luciferase vor, die genetisch in das C-Peptid eingefügt wurde. Während der proteolytischen Verarbeitung von Proinsulin wird das C-Peptid ausgeschnitten und die Luziferase innerhalb des Insulinsekretotische vesikelfrei freigesetzt, wo es mit Insulin mitsekretiert wird. Die Ergebnisse können innerhalb von Minuten nach der Probenentnahme aufgrund der Geschwindigkeit von Luziferase-Assays erhalten werden. Eine Einschränkung des Assays ist, dass es sich um eine relative Messung der Insulinsekretion handelt und nicht um eine absolute Quantifizierung. Dieses Protokoll ist jedoch wirtschaftlich, skalierbar und kann mit den meisten Standard-Leuchtplattenlesern durchgeführt werden. Analoge und digitale Mehrkanalpipetten ermöglichen mehrere Schritte des Assays. Viele verschiedene experimentelle Variationen können gleichzeitig getestet werden. Sobald eine fokussierte Reihe von Bedingungen entschieden ist, sollten Insulinkonzentrationen direkt mit Antikörper-basierten Assays mit Standardkurven gemessen werden, um die Ergebnisse des Luziferase-Assays zu bestätigen.

Einleitung

Die hier vorgestellte Methode ermöglicht es, die Insulinsekretion aus einer genetisch veränderten Beta-Zelllinie schnell und kostengünstig im 96-Well-Platten-Format zu erhalten. Der Schlüssel zu diesem Protokoll ist eine modifizierte Version von Insulin mit der natürlich sezernierten Gaussia-Luziferase (GLuc, 18 kDa) in das C-Peptid eingeführt, um Insulin-Gaussia (InsGLuc)1,2zu erzeugen. Andere größere Proteine, wie GFP (ca. 25 kDa), wurden erfolgreich in das C-Peptid von Insulin eingeführt und zeigten die erwartete posttranslationale Verarbeitung von Proinsulin-....

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Protokoll

1. Herstellung von Reagenzien, Medien und Puffern (Tabelle 1)

  1. Bereiten Sie MIN6-Komplettmedium in 500 ml hochglukosen (4,5 g/L) Dulbeccos modifiziertem Eagle Medium (DMEM) mit folgenden Additiven vor: 15% fetales Rinderserum (FBS), 100 Einheiten/ml Penicillin, 100 g/mL Streptomycin, 292 g/ml L-Glutamin und 50 Mercaptoethanol.
    HINWEIS: Die stabile Zelllinie wird in diesem Fall in 250 g/ml G418-Antibiotikum gehalten.
  2. Bereiten Sie Krebs-Ringer BicarbonatPuffer (KRBH) durch eine Lösung mit 5 mM KCl, 120 mM NaCl, 15 mM HEPES (pH 7.4), 24 mM NaHCO3, 1 mM MgCl2, 2 mM CaCl2und 1 mg/mL radioimmunoassay-grade Rinderserumal....

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Ergebnisse

Um die Leistung des Assays unter Kontrollbedingungen zu messen, kann eine einfache Glukose-Dosis-Wirkungs-Kurve oder eine Stimulation mit dem Diazoxid-Paradigma abgeschlossen werden. Im Falle ersterer sollte die Vorinkubation der Zellen für 1 h unter glukosefreien Bedingungen, gefolgt von der Behandlung von 1 h mit steigenden Glukosekonzentrationen, zu einer sehr geringen sekretotigen Aktivität bei und unter 5 mM führen, während eine erhöhte Sekretion über 8 mM Glukose (

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Diskussion

Hierbei stellen wir eine Methode zur schnellen Bewertung der Glukose-stimulierten Insulinsekretionsreaktionen aus MIN6-Zellen vor. Für die besten Antworten im Test ist es wichtig, die MIN6-Zellen bei der richtigen Dichte auszusäen und sie zu 85-95% konfluent zu machen. Dies verbessert die Zellreaktionen auf Glukose aufgrund verbesserter Zell-Zell-Kontakte und Synchronisation, die sowohl in primären Inselchen17,18,19,<.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Die Autoren danken allen aktuellen und ehemaligen Mitgliedern des Cobb-Labors für wertvolle Arbeit und Diskussionen und Dionne Ware für die Amtshilfe. Michael Kalwat wird von der Juvenile Diabetes Research Foundation SRA-2019-702-Q-R unterstützt. Möglich wurde diese Arbeit durch NIH R37 DK34128 und Welch Foundation Grant I1243 an Melanie Cobb. Frühe Teile dieser Arbeit wurden auch von einem NIH F32 DK100113 an Michael Kalwat unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Zellkulturmaterialien
rIns-GLuc stabile MIN6-ZellenElterliche MIN6-Zelllinie, die pcDNA3.1+rInsp-Ins-eGLuc stabil exprimiert und in 250 μg/ml G418
DMEMSigmaD64294,5 g/L Glukosemedium
fötales Rinderserum aufbewahrt, hitzeinaktiviertesSigmaF4135
Penicillin/ StreptomycinThermo-Fisher ScientificSV30010
Beta-MercaptoethanolThermo-Fisher ScientificBP 176-100
GlutaminThermo-Fisher ScientificBP379-100
Trypsin-EDTASigmaT3924-500
G418Gold BiotechnologyG418-10Stammlösung 250 mg/ml in Wasser. Frieren Sie die Aliquoten bei -20 °C ein.
T75 GewebekulturflaschenFisher Scientific07-202-000
96-Well-GewebekulturplattenCelltreat229196
Reagenzreservoire (50 mL)Corning4870
NameCompany<strong>KatalognummerKommentare
SekretionsassayBSA (RIA-Qualität
)Thermo-Fisher Scientific50-146-952
D-(+)-GlukoseSigmaG8270-1KG
KClThermo-Fisher ScientificP217-500
NaClThermo-Fisher ScientificS271-3
Hepes, pH 7,4Thermo-Fisher Scientific50-213-365
NaHCO3Thermo-Fisher Scientific15568414
MgCl2Thermo-FisherScientific M9272-500G
CaCl2SigmaC-7902
NameCompanyKatalognummer<>Kommentare
Optionale Medikamente für Stimulationsexperimente
DiazoxideSigmaD9035Stammlösung: 50 mM in 0,1N NaOH. Geben Sie die gleiche Menge von 0,1 N HCl zu jedem Puffer, dem Diazoxid zugesetzt wird.
Adrenalin (Bitartratsalz)SigmaE4375Stammlösung: 5 mM in Wasser
PMA (Phorbol-12-Myristat)SigmaP1585Stammlösung: 100 µ M in DMSO
strong>Name<>CompanyKatalognummerKommentare
Guassia Assay-Materialien
Dinatriumphosphat (Na2HPO4)Thermo-Fisher ScientificS374-500
GlycerinThermo-Fisher ScientificG334
NatriumbromidThermo-Fisher ScientificAC44680-1000
EDTAThermo-Fisher ScientificAC44608-5000Stammlösung: 0,5 M pH 8
TrisbaseRPIT60040-1000.0Stammlösung: 1 M pH 8
AscorbinsäureFisher ScientificAAA1775922Das US-Patent US7718389 darauf hindeutet, dass Ascorbat die Stabilität von Coelenterazin erhöhen kann.
Na2SO3SigmaS0505-250GUS-Patent US8367357 suggeriert, dass Sulfit den Hintergrund aufgrund von BSA verringern kann
Coelenterazin (nativ)Nanolight / Prolume3035MGStammlösung: 1 mg/ml in angesäuertem MeOH (2,36 mM)
OptiPlate-96, weiße, undurchsichtige 96-Well-MikroplattePerkin Elmer6005290Jede undurchsichtige weiße 96-Well-Platte sollte ausreichend sein. Durchsichtige Bodenplatten funktionieren auch, allerdings geht ein gewisses Signal verloren.
NameCompanyKatalognummerComments
<>Equipment
Synergy H1 Hybrid Plate Reader oder gleichwertigBioTek8041000Ein Platten-Reader mit Lumineszenzerkennung und 96-Well-Plattenfunktionen ist erforderlich.
8-Kanal VOYAGER Pipette (50-1250 &Mikro; L)Integra4724Eine automatisierte Mehrkanalpipette ist äußerst nützlich für die schnelle Zugabe von Luciferase-Reagenzien und Plattierungszellen im 96-Well-Format
8-Kanal 200 & Mikro; L PipetteTransferpette S 20-200 µ L2703710
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Referenzen

  1. Kalwat, M. A., et al. Insulin promoter-driven Gaussia luciferase-based insulin secretion biosensor assay for discovery of beta-cell glucose-sensing pathways. ACS Sensors. 1 (10), 1208-1212 (2016).
  2. Burns, S. M., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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