Method Article

Generierung definierter genomischer Modifikationen mit CRISPR-CAS9 in humanen pluripotenten Stammzellen

DOI:

10.3791/60085

September 25th, 2019

In This Article

Summary

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Dieses Protokoll bietet eine Methode zur Erleichterung der Erzeugung definierter heterozygoter oder homozygoter Nukleotid-Änderungen mit CRISPR-CAS9 in menschlichen pluripotenten Stammzellen.

Abstract

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Menschliche pluripotente Stammzellen bieten ein leistungsfähiges System, um die Genfunktion zu untersuchen und modellspezifische Mutationen zu modellieren, die für Krankheiten relevant sind. Die Erzeugung präziser heterozygoter genetischer Modifikationen ist aufgrund der CRISPR-CAS9-vermittelten Indelbildung im zweiten Allel eine Herausforderung. Hier zeigen wir ein Protokoll, um diese Schwierigkeit zu überwinden, indem wir zwei Reparaturvorlagen verwenden, in denen nur eine die gewünschte Sequenzänderung ausdrückt, während beide Vorlagen stille Mutationen enthalten, um Nachschneiden und Indelbildung zu verhindern. Diese Methode ist am vorteilhaftesten für Gen-Editing-Codierungsregionen der DNA, um isogene Kontrolle und mutierte menschliche Stammzelllinien für die Untersuchung menschlicher Krankheiten und Biologie zu generieren. Darüber hinaus wurden Optimierungen von Transfektions- und Screening-Methoden durchgeführt, um Arbeit und Kosten eines Gen-Editing-Experiments zu reduzieren. Insgesamt ist dieses Protokoll weithin auf viele Genom-Editing-Projekte anwendbar, die das menschliche pluripotente Stammzellmodell verwenden.

Introduction

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Menschliche embryonale Stammzellen (hESCs) und induzierte pluripotente Stammzellen (iPSCs) sind wertvolle Werkzeuge zur Modellierung menschlicher Krankheiten aufgrund ihrer Fähigkeit zur Erneuerung, wobei die Fähigkeit zur Erzeugung von Zelltypen verschiedener Abstammungen beibehalten wird1,2 ,3,4. Diese Modelle eröffnen die Möglichkeit, die Genfunktion zu befragen und zu verstehen, wie spezifische Mutationen und Phänotypen mit verschiedenen Krankheiten zusammenhängen5,6. Um jedoch ....

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Protocol

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1. Entwurf und Konstruktion von Guide RNA (gRNA)

HINWEIS: Jede gRNA besteht aus zwei 60 Basenpaar (bp) Oligonukleotiden, die geglüht werden, um ein 100 bp Doppelsträngiges (ds) Oligonukleotid zu erzeugen (Abbildung 1A-C). Der Zeitplan für die Effizienz des gRNA-Designs, der Erzeugung und des Testens beträgt ca. 2 Wochen (Abbildung 2).

  1. Wählen Sie den DNA-Bereich aus, der für das Genom von Interesse ist, und identifizieren Sie 3-4 23 bp Sequenzen, die in das Format 5'-G(N19)NGG-3' passen. Diese Sequenzen sollten sich innerhalb von 20 bp der Inter....

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Results

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Generierung von gRNAs und Screening für Indels

Jede gRNA wird in einen Plasmidvektor geklont und mit dem U6-Promotor exprimiert. Das AflII Restriktionsenzym wird zur Linearisierung des Plasmids (Addgen #41824) verwendet und befindet sich nach dem U6-Promotor. Das nach dem Glühen der beiden 60 bp Oligos erzeugte 100 bp-Band wird mit Hilfe der DNA-Assembly in den gRNA-Expressionsvektor geklont. Sobald die gRNA-Plasmide erzeugt sind, werden sie zusammen mit einem CRISPS-.......

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Discussion

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In diesem Protokoll wird die Verwendung von CRISPR-CAS9 zusammen mit zwei ssODN-Reparaturvorlagen zur Erzeugung spezifischer heterozygoter oder homozygoter Genomveränderungen in menschlichen pluripotenten Stammzellen nachgewiesen. Diese Methode führte zur erfolgreichen Erzeugung isogener Zelllinien, die heterozygote genomische Veränderungen mit einer Effizienz von fast 10 % exdrücken. Dieses Protokoll wurde sowohl für menschliche ESCs als auch für iPSCs optimiert, die auf bestrahlten MEFs angebaut werden, die das Zellwac.......

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Disclosures

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Die Autoren haben nichts zu verraten.

Acknowledgements

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Diese Forschung wurde durch Fördermittel des National Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI), National Institutes of Health durch Die Stipendien U01HL099656 (P.G. und D.L.F.) und U01HL134696 (P.G. und D.L.F.) unterstützt.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5-ml-Röhrchen aus Polystyrol mit rundem Boden und Kappe für das ZellsiebCorning352235
6-Well-Gewebekulturschalen aus PolystyrolCorning353046
AflII-RestriktionsendonukleaseNew England BiolabsR0520
AgaroseVWRN605
DMEM/F12 MediumThermoFisher11320033
dNTPsRoche11969064001
Fluoreszenz-aktivierter Zellsortierer (FACS) Gerät
Gel-ExtraktionskitMacherey-Nagel740609
Gibson Assembly KitNew England BiolabsE2611
gRNA_Cloning VectorAddgene41824
LB Agarplatten mit 50 μa; g/ml Kanamycin
Lipofectamine Stem ReagenzThermoFisher(STEM00001)
Matrigel Wachstumsfaktor reduziert (GFR)Corning354230
murine embryonale Fibroblasten (MEFs)
Nukleospin Gel-Extraktions- und PCR-Clean-up-KitMacherey-Nagel740609
Orbitalschüttel-Inkubator
pCas9_GFP VektorAddgene44719
PCR-StreifenröhrchenUSA Scientific1402-2900
Phusion High Fidelity DNA-Polymerase und 5&fach; Phusion PufferNew England BiolabsM0530
PurelinkTM Quick Plasmid Miniprep KitInvitrogenK210011
Proteinase KQiagenQiagen 19133
StellarTM elektrokompetente Escherichia coli ZellenTakara636763
SOC MediumNew England BiolabsB9020S
TrypLE Express EnzymThermoFisher12605036
Y-27632 Dihydrochlorid/ROCK-Inhibitor (ROCKi)Tocris1254

References

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  1. Srivastava, D., Dewitt, N. Review In Vivo Cellular Reprogramming: The Next Generation. Cell. 166 (6), 1386-1396 (2016).
  2. Clevers, H. Review Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  3. Murry, C. E., Keller, G.

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CRISPR Cas9Human Pluripotent Stem CellsGene EditingIsogenic Cell LinesHeterozygous MutationsRepair TemplatesTransfection OptimizationColony PickingFluorescence Activated Cell SortingRestriction Enzyme Digestion

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