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Intrathekale Lieferung von Antisense Oligonukleotiden im Zentralen Nervensystem der Ratte

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DOI:

10.3791/60274

29. Oktober 2019

* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine Methode zur Abgabe von Medikamenten an das zentrale Nervensystem der Ratte, indem wir einen Katheter in den lendenintrathekalen Raum der Wirbelsäule implantieren. Wir konzentrieren uns auf die Lieferung von Antisense-Oligonukleotiden, obwohl diese Methode auch für die Lieferung anderer therapeutischer Modalitäten geeignet ist.

Zusammenfassung

Die Blut-Hirn-Schranke (BBB) ist eine wichtige Abwehr gegen den Eintritt potenziell toxischer oder pathogener Wirkstoffe aus dem Blut in das Zentralnervensystem (ZNS). Seine Existenz verringert jedoch auch die Zugänglichkeit systemisch verabreichter therapeutischer Wirkstoffe zum ZNS drastisch. Eine Methode, dies zu überwinden, besteht darin, diese Wirkstoffe direkt in die Zerebrospinalflüssigkeit (CSF) zu injizieren und damit die BBB zu umgehen. Dies kann durch Implantation eines Katheters zur kontinuierlichen Infusion mit einer osmotischen Pumpe oder zur Einzelbolusabgabe erfolgen. In diesem Artikel beschreiben wir ein chirurgisches Protokoll zur Abgabe von CNS-targeting Antisense Oligonukleotiden (ASOs) über einen Katheter, der direkt in den Cauda-Equina-Raum der erwachsenen Rattenwirbelsäule implantiert wird. Als repräsentative Ergebnisse zeigen wir die Wirksamkeit einer einzelnen Bolus-ASO-Intrathekalinjektion (IT) über dieses Katheterisierungssystem bei der Abschlagsmenge der Ziel-RNA in verschiedenen Regionen des Ratten-ZNS. Das Verfahren ist sicher, effektiv und erfordert keine teure Ausrüstung oder chirurgische Werkzeuge. Die hier beschriebene Technik kann angepasst werden, um Medikamente auch in anderen Modalitäten zu liefern.

Einleitung

Das Gefäßsystem des Zentralnervensystems (ZNS) hat sich zu einem kritischen Regulator der Homöostase entwickelt, der den Handel mit Molekülen steuert, Nährstoffe liefert und Abfall loswird. Dieses System ist auch die erste Verteidigungslinie gegen Angriffe von externen Krankheitserregern, dank einer dichten Verteilung von engen Kreuzungen entlang der Wände der Endothelzellen. Diese engen Kreuzungen bilden einen Aspekt der Blut-Hirn-Schranke (BBB). Während das BBB den Transport von Molekülen ermöglicht, die zur Erfüllung des Nährstoff- und Energiebedarfs (z.B. Ionen, Glukose) erforderlich sind, begrenzt es auch selektiv den Durchgang von Krankheitserregern sowie toxisc....

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Protokoll

Alle In-vivo-Verfahren wurden im Rahmen des vom Biogen Institutional Animal Use and Care Committee (IACUC) genehmigten Protokollen durchgeführt, die den Richtlinien des United States National Institutes of Health Guide für die Pflege und Verwendung von Labortieren entsprechen.

1. Material- und Instrumentenvorbereitung

  1. Bereiten Sie die speziellen Führungskanülen vor.
    1. Verwenden Sie ein Drehwerkzeug mit Trennrad (oder einer scharfen Säge), um die beiden Enden einer 19 G Nadel abzuschneiden, was zu einer 1,5 x 2 cm langen Führungskanüle führt(Abbildung 1Aiii). Verwenden Sie die Sc....

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Ergebnisse

Mit der hier beschriebenen Methode injizierten wir zwei Gruppen erwachsener weiblicher Ratten (250-300 g; n = 10/Gruppe) entweder mit einem einzigen Bolus phosphatgepufferter Saline-PBS oder 300 g ASO, die auf die lange nicht-kodierende (linc) RNA Malat1 abzielten; in unserem Labor verwenden wir routinemäßig die Malat1 ASO als Werkzeugverbindung, weil Malat1 allgegenwärtig und auf hohen Ebenen in allen Geweben14ausgedrückt wird, einschließlich Gehirn und Rückenmark.......

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Diskussion

Der vorliegende Artikel zeigt eine leistungsfähige Methode, um therapeutische Wirkstoffe direkt in das CNS der Ratte zu liefern. Theoretisch kann eine ähnliche Technik auch bei Mäusen durchgeführt werden, obwohl aufgrund der kleineren Größe die Methode anspruchsvoller sein kann. Daher führt unsere Gruppe intracerebroventricular (ICV) Injektionen bei Mäusen für die CNS-Medikamentenabgabe durch, die die gleichen Ziele über einen anderen Verabreichungsweg erreichen. Diese Methode wurde in einer anderen Studie beschrieben

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Offenlegungen

Die Autoren sind alle Mitarbeiter von Biogen, Inc. oder Ionis Pharmaceuticals. Die Autoren erhalten die Antisense-Oligonukleotide, die in dem Artikel von Ionis Pharmaceuticals beschrieben werden.

Danksagungen

Wir danken Ionis Pharmaceuticals für die Lieferung der in dem Artikel beschriebenen ASOs.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
3M Steri-Drape Kleines Abdecktuch mit Klebeöffnung3M1020
70% EthanolDecon Laboratories, Inc8416-160Z
Alkoholtupfer StäbchenDynarexNO 1204
BD Spritzen für den allgemeinen Gebrauch 1 mL Luer-Lok SpitzeBD1ml TB Luer-Lok SpitzeBD 302830
BD Intramedic PE SchlauchBDPolyethylen Schlauch PE50 Durchmesser 0,023 ZollBD 427400 (10ft, Fischer Scientific 22-204008) oder 427401 (100ft, Fischer Scientific 14-170-12P)
BD Intramedic PE SchlauchBDPolyethylenschlauch PE10 Durchmesser 0,011 ZollBD 427410 (10ft, Fischer Scientific 14-170-11B) oder 4274011 (100ft, Fischer Scientific 14-170-12B)
BD Intramedic PE SchlauchadapterBD23 Gauge Intramedic Luer Stub AdaperBD 427565 oder Fisher Scientific 14-826-19E
BD PrecisionGlide Einwegnadeln 30GBDBD 305128
Buprenorphin Sustained Release-LaborZooPharmVerschreibungspflichtiger
Ethylenoxid-SterilisatorAndersen Sterilizer INC.AN 74i, GassterilisatorAN 74i
FührungskanüleBD19G x 1 WT (1,1 mm x 25mm) NadelBD 305186
Hamilton Spritze 100ulHamilton CompanyHamilton Spritze 100ul
HeißperlensterilisatorFine Science ToolsSTERILISATOR MODELLNR FST 250
AugensalbeDechra Veterranery Produkt17033-211-38
Pocket Pro HaustiertrimmerBraintree ScientificCLP-9931 B
Povidon-PeelingPDIS48050
KochsalzlösungBaxterNatriumchlorid 0,9% Intravenöse Infusion BP 50 mlFE1306G
SkalpellFederEinweg-SkalpellNr. 10
Heizkissen für KleintiereK& H Herstellungsmodell# 1060
StilettdrahtMcMaster-Carr1749T14LH-36233780
Chirurgie-HandtuchtuchDynarex4410
Chirurgische Schere und PinzetteFST und Fisher Scientific
NähteEthicon4-0 oder 5-0
Werkzeug zur Herstellung der FührungskanüleGraingerRotationswerkzeug (Dremel)14H446 (Hersteller: EZ456)
EZ lock Trennscheibe1PKX5 (Hersteller: 3000-1/24)
Schleifscheibe, Aluminiumoxid38EY44 (Hersteller: EZ541GR)
EZ lock Dorn1PKX8 (Hersteller: EZ402-01)
Diamantscheibe Boden Fliese3DRN4 (Hersteller: EZ545)
Alternative Quelle für vorgefertigte und sterilisierte Materialien für dieses Verfahren
DosierkathetersystemSAI InfusionssystemeRIDC-01
FührungskanüleSAI InfusionssystemeRIDC-GCA
Interne KatheterSAI InfusionssystemeRIDC-INC
StilettdrahtSAI InfusionssystemeRIDC-STY

Referenzen

  1. Abbott, N. J. Dynamics of CNS barriers: evolution, differentiation, and modulation. Cellular and Molecular Neurobiology. 25 (1), 5-23 (2005).
  2. Greene, C., Campbell, M. Tight junction modulation of the blood brain barrier: CNS deliv....

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Schlagwörter

KatheterimplantationInjektion in den SpinalkanalCerebrospinalfl ssigkeitRattenkrankheitsmodellepharmakokinetische Auswertungpharmakodynamische Bewertungtherapeutische Wirksamkeit

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