Das Dosimetrieverfahren wurde nach dem Behandlungsprotokoll "Radiometabolic Therapy (RMT) with 177Lu-PSMA-617 in advanced castration resistant prostate cancer (CRPC): efficacy and toxicity evaluation" (EUDRACT/RSO-Nummer: 2016-002732-32) (Abbildung 1) durchgeführt. Ausgewählte Patienten wurden einer Dosimetrie-Evaluierung auf der Grundlage des Leistungsstatus unterzogen. Alle Patienten unterzeichneten die Einwilligung in Kenntnis der Sachlage. Vor der Behandlung wurde jeder Patient einem 68Ga-PSMA-11 PET/CT Ganzkörperscan unterzogen.
HINWEIS: Es ist wichtig zu betonen, dass einige Schritte speziell mit dem verwendeten Scanner verknüpft sind.
1. Pre-Infusions-Bildgebung: Transmission und Blank-Bildaufnahme
HINWEIS: Bei dieser ersten Bildaufnahme wird die Wasseräquivalentdicke des Patienten ausgewertet. Dieser Wert wird für die Dämpfungskorrektur von Anzahlen verwendet, die aus 2D-planaren Bildern abgeleitet sind, die nach der Lu-PSMA-617-Injektion von 177Lu-PSMA-617 aufgenommen wurden.
- Stellen Sie niedrigenergetische hochauflösende Kollimatoren (LEHR) ein.
- Öffnen Sie die Bildprotokollaufnahme auf der Workstation und wählen Sie Transmissionscan ganzkörperplanare Bildaufnahme.
- Überprüfen Sie die Tischgeschwindigkeit (z. B. 7 cm/min) und zoomen (z. B. 1). Halten Sie diese Werte für die leere Scanerfassung gleich. Überprüfen Sie, ob die Option Körperkontur deaktiviert ist.
- Positionieren Sie den Patienten auf der Couch Füße-erste Supine mit Armen in Ruhe an der Seite des Körpers. Verwenden Sie diese Position für alle Bilder. Bei Bedarf verfügbare Stützen (Armstütze, Kniekeil, Kissen, Decke) verwenden.
- Beachten Sie die genaue Position des Patienten, mit der Skalennummer entlang der Couch: Scheitelkopfposition, Knieposition, Fußposition, Couchhöhe, alle verwendeten Stützen. Beachten Sie das Gewicht und die Körpergröße des Patienten.
- Stellen Sie die SPECT-Doppelköpfe an den entgegengesetzten Positionen (d. h. 0° und 180°) und im maximalen Abstand zum FOV-Zentrum ein. Heben Sie die Couch so an, dass der Patient im FOV-Zentrum und mit dem Kopf im Detektorzentrum positioniert ist.
- Positionieren Sie die 57Co-Flutunterstützung auf der hinteren Kamera und dann die 57Co Flut selbst auf der Stütze. Starten Sie die Bildaufnahme.
- Entfernen Sie am Ende der Bildaufnahme die 57Co-Flut und -Unterstützung. Drücken Sie Entladen auf dem Teach-Anhänger. Helfen Sie dem Patienten aufzustehen.
- Wiederholen Sie die Bildaufnahme auf die gleiche Weise, aber ohne dass der Patient auf der Couch positioniert ist.
HINWEIS: Couchgeschwindigkeit, Tischhöhe und Kameraabstand sollten auf den gleichen Wert wie das vorherige Übertragungsbild eingestellt werden.
2. Nachinfusion Bildaufnahme: Planares Bild
HINWEIS: Planare Post-Image-Erfassungen werden für eine effektive Halbwertszeit und eine mittlere absorbierte Dosisauswertung verschiedener Strukturen verwendet.
- Erfassen Sie das erste Bild 0,5-1 h nach 177Lu-PSMA-617 Infusion (Tag 1, Abbildung 1).
- Erfassen Sie das erste Bild vor blasenleerung. Wenn der Patient ein dringendes Bedürfnis nach Blasenentleerung verspürt, stellen Sie ein geeignetes Gefäß für die Urinentnahme zur Verfügung. Achten Sie darauf, das Gefäß (oder Urinbeutel, wenn der Patient einen Katheter hat) in das Bild aufzunehmen.
- Sammeln Sie eine 2 ml Blutprobe, schließen Sie das Sammelrohr und legen Sie es in eine abgeschirmte Box, unter Notierung der Zeit.
- Umstellung auf Mittelenergie-Hochauflösungskollimator (MEHR).
- Öffnen Sie die Bildprotokollaufnahme auf der Workstation, und wählen Sie die ganzkörperplanare Bildaufnahme aus. Überprüfen Sie die Tischgeschwindigkeit (z. B. 7 cm/min) und zoomen (z. B. 1). Halten Sie diese Werte für alle anderen Bilder gleich. Überprüfen Sie, ob die Option Körperkontur deaktiviert ist.
- Positionieren Sie den Patienten auf der Couch, um sicherzustellen, dass die Position mit der Position des vorherigen Bildes (d. h. dem Vorinfusionsübertragungsscan) identisch ist.
- Stellen Sie die SPECT-Doppelköpfe auf entgegengesetzte Positionen (d. h. 0° und 180°) ein. Heben Sie den Tisch so an, dass der Patient im FOV-Zentrum und mit dem Kopf im Detektorzentrum positioniert ist.
- Passen Sie mit dem Teach Pendent die Position der hinteren Kamera (d. h. bei 180°) manuell an, um den Mindestabstand vom unteren Couchprofil zu erreichen.
- Stellen Sie manuell die Position der vorderen Kamera (d. h. bei 0° positioniert) ein, um einen Mindestabstand vom Profil des Patienten zu erreichen. Berücksichtigen Sie die gesamte Körperoberfläche entlang der gesamten Patientenhöhe, um Kollisionen beim Scannen zu vermeiden.
- Nehmen Sie die Position der Duellköpfe, starten Sie die Bildaufnahme.
- Am Ende der Bildaufnahme drücken Sie auf den Teach-Anhänger entladen und helfen dem Patienten aufzustehen.
- Wiederholen Sie die gleiche Bildaufnahme mit den gleichen Kameraeinstellungen bei 16-24 h (zweites Bild, Tag 2), 36-48 h (drittes Bild, Tag 3). Zusätzliche Bilder (ein oder mehrere) können bis zu 120 h nach der Infusion (z.B. 66-70 h und 120 h) basierend auf Patientenkonformität und Ressourcen der Institution.
- Sammeln Sie eine 2 ml Blutprobe zur gleichen Zeit wie die SPECT-Bildaufnahme, schließen Sie das Sammelrohr und legen Sie es in eine abgeschirmte Box, um die Zeit zu notieren.
3. Nachinfusion Bildaufnahme: 3D SPECT/CT
HINWEIS: Am 2. Tag (16-24 h nach der Infusion) wird eine 3D-Bildaufnahme zusammen mit der planaren Bildaufnahme durchgeführt. Das 3D-SPECT/CT-Bild konzentriert sich auf den Bauchbereich und ermöglicht es, Organüberlappungen (z.B. Nieren oder Darmschlaufen) auf vorderen/posterioren Projektionen zu vermeiden.
- Wählen Sie nach der planaren Bildaufnahme das 3D-SPECT/CT-Bild innerhalb des Dosimetrieprotokolls auf der Workstation aus.
- Prüfen Sie, ob die richtigen Bildparameter eingestellt sind: Erfassungsmodalität (z. B. Step-and-Shoot), Winkel pro Projektion (z. B. 5°), Anzahl der Frames pro Drehung (z. B. 72), Rahmendauer (z. B. 3.000 ms). Überprüfen Sie, ob Body Contour deaktiviert ist.
- Positionieren Sie den Detektor im maximalen Abstand vom Zentrum, um Kollisionen zu vermeiden. Positionieren Sie den Patienten mit erhobenen Armen über dem Kopf. Positionieren Sie den Patiententisch innerhalb der Kamera, bis der gewünschte Bereich auf dem Detektor zentriert ist (z. B. Nieren und eine bestimmte Läsion, die sich in derselben Region befindet). Starten Sie die Bildaufnahme.
- Erfassen Sie das entsprechende CT-Bild.
- Am Ende der Bildaufnahme drücken Sie auf den Teach-Anhänger entladen und helfen dem Patienten beim Aufstehen.
4. Bildanalyse
HINWEIS: Streu-, Dämpfungs- und Hintergrundkorrekturen werden implementiert. Einzelorgan und Läsionsmasse werden für die Bewertung der absorbierten Dosis berücksichtigt. ROI und VOI sind auf planaren und 3D-Bildern konturiert.
- Senden Sie alle erfassten Bilder von der Erfassungsarbeitsstation an die Analysearbeitsstation.
- Wählen Sie für alle Bilder nach der Infusion emissive, niedrige und hohe Streuungsbilder aus
und klicken Sie wie folgt auf das rechte Feld des dedizierten Workflows, um ein streuungskorrigiertes Bild zu erstellen:

wobei
,
und sind emissiv, niedrigere Streuung und höhere Streuung 2D vorderoder oder hintere planare Ganzkörperbilder, bzw.;
,
und sind emissive, niedrigere Streuung und höhere Streuenergie Fensterbreiten.
- Öffnen Sie jedes hintere Bild, klicken Sie auf Bild, dann neu ausrichten, Schwenken, Zoomen..., Kennung Y Spiegelung, klicken Sie auf Anwenden & Beenden, und speichern Sie dann das gedrehte Bild von links nach rechts.
- Offene vordere und hintere (gedrehte) streuungskorrigierte planare Bilder, die nach der Infusion aufgenommen wurden.
- Wählen Sie das bildseitfest am 2. Tag aufgenommene Bild als am besten geeignet für die ROI-Abgrenzung aus. Konturorgane: Ganzkörper (bei Bedarf auch Uringefäß oder Beutel), Nieren, Leber, Milz (falls sichtbar), Ohrspeicheldrüsen, submandibuläre Drüsen, lachrymale Drüsen. Wenn möglich, konturieren Sie auch einige sichtbare Läsionen. Konturieren Sie die ROIs auf dem nützlichsten Bild zwischen vorderen und hinteren Ansichten (Abbildung 2). Konturieren Sie einen kleinen ROI neben jeder konturierten Struktur für Hintergrund.
- Kopieren und fügen Sie alle ROIs aus dem Bild, das am 2. Tag aufgenommen wurde, in die vorderen und hinteren Ansichten der anderen Bilder einfügen, die nach der Infusion aufgenommen wurden.
- Verwenden Sie nur die ROI-Übersetzung, und ändern Sie sie nicht, um die gleiche Organdimension beizubehalten. Wählen Sie für jede erfasste Postinfusion ein vorderes Bild aus. Speichern Sie konturierte ROIs.
- Beachten Sie für jedes Bild die durchschnittlichen Anzahlen [c] und die Pixeldimension innerhalb jedes ROI (einschließlich Hintergrund-ROIs) für vordere und hintere Ansichten3.
- Öffnen Sie vordere Übertragung und leere Scans, zusammen mit abgegrenzten ROIs. Kopieren und Einfügen von Organ enund und Läsionen ROIs auf Übertragung Scan. Passen Sie die Organinfehlstellung an, und vergrößern oder verringern Sie bei Bedarf die Organkonturen für eine unterschiedliche Bildvergrößerung.
- Für Körperdämpfung, Kontur eine Struktur umfasst Kopf, Schultern, Brust und Bauch, Vermeidung von Armen und Beinen (Abbildung 3).
- Kopieren und fügen Sie alle ROIs von der Übertragung bis zum leeren Scan ein.
- Bewerten Sie die Wasseräquivalentdicke z für jede Struktur, um die Selbstdämpfung zu schätzen. Beachten Sie die durchschnittlichen Zählungen innerhalb jedes ROI sowohl auf Übertragung(I-Übertragung) Übertragung und leere (Ichleer) Scans. Berechnen Sie die Wasseräquivalentdicke z als

wobei
der Dämpfungskoeffizient für 57Co-Hochwasser zuvor mit einem einheitlichen Phantom gemessen wurde.
- Verwenden Sie die Vorbehandlung 68Ga-PSMA-11 PET/CT Scan. Konturorgane auf CT-Bild: Nieren, Leber, Milz, Ohrspeicheldrüsen und submandibuläre Drüsen. Konturläsionen auf PET-Bildern. Unter der Annahme einer gleichmäßigen Wasserzusammensetzung für jede Struktur wird die Masse jeder konturierten Struktur mit einer Einheitendichte (1 g/ml) berechnet.
- Führen Sie die SPECT/CT-Bildrekonstruktion unter Berücksichtigung der Streukorrektur, der CT-Dämpfungskorrektur und der Auflösungswiederherstellung durch. Legen Sie die gleichen iterativen Rekonstruktionswerte fest, die für die SPECT-Kalibrierung verwendet werden (z. B. OSEM-Iteration und Teilmengennummern, Nachrekonstruktionsfilterung).
5. Blutprobenmessungen
HINWEIS: Blutprobenmessungen werden am Hochreinheitsdetektor Germanium (HPGe) zur Schätzung der Red-Marrow-Dosis durchgeführt.
- Lassen Sie die Blutprobe für etwa 2 Wochen zerfallen, um Detektorsättigung und hohe Totzeit zu vermeiden.
- Messen Sie nach 2 Wochen jeweils eine Probe. Aufgrund der geringen Aktivität beginnen Sie mit den Messungen der letzten entnommenen Blutprobe (d. h. ab Tag 6).
- Positionieren Sie das Blutproben-Entnahmeröhrchen auf dem entsprechenden Halter. Verwenden Sie dieselbe Geometrie wie für die HPGe-Kalibrierung. Positionieren Sie ihn auf dem HPGe-Detektor und schließen Sie das Detektor-Abschirmgehäuse.
- Öffnen Sie die Software für die Spektrumerfassung und -analyse. Überprüfen Sie, ob die Totzeit <3% beträgt. Wenn höher, warten Sie noch ein paar Tage und führen Sie die Messungen dann durch.
- Wählen Sie die richtige HPGe-Kalibrierungsdatei aus, die dem 2-ml-Sammelrohrgeometriehalter entspricht. Starten Sie Probenmessungen (mindestens 12 h Messungen).
- Analysieren Sie das Spektrum, indem Sie den mittleren Gamma-Peak identifizieren und die Aktivitätskonzentration berechnen. Beachten Sie sowohl die gemessene Stichprobenaktivität als auch die Zeit- und Datumsmessungen.
- Wiederholen Sie die gleichen Messungen und Analysen für alle Blutproben.
6. Dosimetrie-Evaluierung
HINWEIS: Die Analyse wird mit einer speziellen Dosimetrie-Software durchgeführt, die auf MIRD-Publikationen4,5,6,7,8basiert. Für jede betrachtete Struktur wird die effektive Halbwertszeit auf sequenziellen 2D-Ganzkörperbildern durch bi- oder monoexponentiale Kurven, die in Zeit-Aktivitätskurven passen, ausgewertet. 3D SPECT/CT-Bildgebung wird verwendet, um das Problem der Überlappung des Darms mit hoher Aufnahme auf der Nierenstruktur zu lösen, indem die aus planaren Bildern abgeleiteten Zeitaktivitätskurven skaliert werden. Die mittlere absorbierte Dosis wird dann für jede Strukturmasse berechnet. Für die Bewertung der Red-Marrow-Dosis werden Blutprobenmessungen verwendet und auf das Gewicht des Patienten skaliert.
- Planare Bilder
- Berechnen Sie für jedes Bild und jede
Struktur die Zählungen
auf anterior ( ) und hintere ( ) Ansicht als

Wobei
die durchschnittliche Anzahl [c]
für den berücksichtigten ROI ist, ist
die durchschnittliche Anzahl [c] im entsprechenden Hintergrundbereich und die Pixelzahl innerhalb des ROI.
- Berechnen Sie für jeden ROI die Aufnahme zu jedem Bildzeitpunkt als

wobei
der Dämpfungskorrekturfaktor für 177
Lu die physikalische Halbwertszeit von 177Lu ist, ist die Zeitdifferenz zwischen Infusion und Bildaufnahme9, und z ist die wasseräquivalente Dicke, die beim Transmissionsscan ausgewertet wird.
- Berechnen Sie die relative Aufnahme als

wobei
auf dem ersten Post-Infusionsbild für den ganzen Körper ausgewertet wird. Da vollständiger Urin im Bild enthalten ist, wird dies als Referenz für die gesamte effektive infundierte Aktivität betrachtet.
- Hybride 2D+3D SCPET/CT-Bilder
- Für die SPECT/CT-Aktivitätskalibrierung ein zylindrisches Phantom mit einer zentralen Sphäre bekannter Aktivität abbilden. Konturieren Sie die zentrale Kugel VOI und berechnen Sie den Kalibrierfaktor [cps/MBq] als

Wobei
die Gesamtzahlen innerhalb des VOI
[c], die
Bildaufnahmezeit [sek] und die bekannte injizierte Aktivität [MBq] innerhalb der zentralen Sphäre sind. DAS SPECT/CT-Bild für den Patienten wird mit den gleichen Erfassungs- und Rekonstruktionsparametereinstellungen durchgeführt.
- Öffnen Sie das SPECT/CT-Bild. Konturvolumen (VOIs) (z.B. Nieren, sichtbare Läsion) basieren sowohl auf Aufnahmeinformationen als auch auf CT-Morphologie. Berechnen Sie die Aktivität in der Struktur als
- Berechnen

wobei
die injizierte Aktivität während der Behandlung erfolgt.
- Berechnen Sie den Skalierungsfaktor für die Zeitaktivitätskurve als

wobei
das
auf planarem Bild berechnete planare Bild am Tag 2 (16-24 h) zerfallskorrigiert für die physische Halbwertszeit zum Zeitpunkt der Injektion ist.
- Skalieren Sie die Aktivitätskurve
der Niere 2D mit
dem Faktor entsprechend. Führen Sie eine Dosimetrieauswertung mit OLINDA/EXM durch, wie unten beschrieben.
- Erwachsene männliche Phantom
- Öffnen Sie Dosimetriesoftware. Wählen Sie das Radionuklid (z.B. 177Lu) im Modul Nuclide Input Formaus. Wählen Sie das Modell (z. B. Adult Male) im Modul Modelleingabeformular aus.
- Wechseln Sie zum Modul Kinetischeeingabeformular, und klicken Sie auf Alle Daten löschen. Klicken Sie auf An Modell anpassen und ein separates Fenster wird geöffnet.
- Fügen Sie in der Spalte Zeit (Hr) die Stunden nach der Infusion für jede Bildaufnahme im Stundenformat ein (z. B. 1 h und 30 min sind 1,50). Scrollen Sie auf dem Organmenü nach unten und wählen Sie Voninteresse sind (z. B. Nieren, Leber, Milz).
- Fügen Sie für jedes Organ
die relative Aufnahme zu jedem Bildzeitpunkt ein. Klicken Sie auf Aktualisieren.
- Für gepaarte Organe (d. h. Nieren) fügen Sie einen einzigen Wert
als Summe der linken und rechten einzelnen relativen Aufnahmeeinfügungen ein. Klicken Sie auf Aktualisieren, und überprüfen Sie die Punktverteilungen auf dem linken Seitendiagramm.
- Führen Sie ein Kurvenfitting mit einer exponentiellen Kurve als

DieParameter A , B und C können positive oder negative Werte für die Ein- bzw. Auswaschphasenmodellierung annehmen. Wenn Daten von Zeitaktivitätskurven zerfallskorrigiert sind, stellen a, b und c Parameter biologische Halbwertszeit -biol dar und sind alle positiv. Wählen Sie ein geeignetes Kurvenanpassungsmodell zwischen Mono-, Bi- oder Triexponentialkurven aus. Kennzeichnen Sie die erforderlichen Parameter, fügen Sie Startwerte ein, und klicken Sie auf Anpassen, bis die Anpassung ausgeführt wird.
- Beachten Sie die Kurvenanpassungsparameter. Berechnen Sie die effektive Halbwertszeit als

wobei die physikalische Halbwertszeitphys von 177Lu und diebiol biologische Halbwertszeit von 177Lu-PSMA-617-Verbindung ist. Berücksichtigen Sie für die Werte "biol"die niedrigsten Werte unter den Parametern a, b und c, die die Kurve anpassen (d. h. entsprechend der höheren effektiven Halbwertszeit).
- Wiederholen Sie dies von Schritt 6.3.3 bis Schritt 6.3.7. für jedes Organ.
- Fügen Sie die relative Aufnahme zu jedem Bildzeitpunkt für den Rest des Körpers (nämlich Gesamtkörper/Rem-Körper) ein, indem Sie die relative Aufnahme aller betrachteten Organe von der Ganzkörperaufnahme subtrahieren. Wiederholen Sie dies von Schritt 6.3.5 bis Schritt 6.3.7 für Total Body/Rem Body. Im Allgemeinen wird eine biexponentielle Kurvenanpassung empfohlen.
- Klicken Sie auf Fertig, und speichern Sie das Modell. Das Programm geht zurück auf das Kinetic Input Form Modul und die Anzahl der Disintegrationen pro Einheit der injizierten Aktivität (nämlich ND, ausgedrückt in Bq*h/Bq) wird für jedes betrachtete Organ visualisiert.
- Wechseln Sie zum Haupteingabeformular. Klicken Sie auf Dosen, und ändern Sie dann die Eingabedaten. In der Box unten Multiplizieren Sie alle Massen mit:, fügen Sie das Verhältnis zwischen dem Gewicht des Patienten und dem Phantomgewicht der Erwachsenen (d. h. 73,7 kg) ein. Klicken Sie auf die Multiply all masses by: button. Alle Orgelmassen werden dann entsprechend neu skaliert. Fügen Sie einzelne Organmassen ein, wie aus der CT-Abgrenzung für die analysierten Organe berechnet. Für gepaarte Organe wie Nieren, legen Sie die Summe der linken und rechten Nierenmassen. Klicken Sie auf Fertig.
- Der Bericht zeigt die mittlere absorbierte Dosis an, die in die injizierte Aktivität normalisiert wird, ausgedrückt in mGy/MBq. Beachten Sie die gesamte absorbierte Dosis für betrachtete Organe (d. h. Nieren, Leber, Milz und Gesamtkörper).
- Wiederholen Sie diesen Vorgang für Zeitaktivitätskurven, die von der hybriden 2D+3D SPECT/CT-Methode abgeleitet wurden.
- Rotes Mark
- Führen Sie die Skalierung für Blutwerte durch, um die Red Marrow-Dosis zu berechnen.
- Berechnen Sie die Blutaufnahme bei jeder Blutentnahme als

wobei M die Aktivitätsmessung [MBq] ist, die mit HPGe 2 ml Blutprobenmessung erhalten wurde.
- Berechnen Sie die
relative Blutaufnahme als

wobei das Blutvolumen [mL] die Gesamtblutvolumenschätzung für den jeweiligen Patienten ist. Dieser Wert wird den Standard-Phantomwerten von Adult Male10entnommen.
- Auf Red Marrow (RM) Masse umsleben
und die rm relative Aufnahme als

wobei
das Verhältnis des Standard-Erwachsenen-Männchen-Phantoms von
(Roter Marrow-Masse) gleich 1120 g und
(Ganzkörperblutmasse) gleich 5000 g ist.
- Wechseln Sie zum Kinetic Input Form-Modul, und klicken Sie auf Alle Daten löschen. Klicken Sie auf Fit to Model. Scrollen Sie in der Orgelkarte nach unten und wählen Sie Red Marrow aus.
- Fügen Sie in der Spalte Zeit (Hr) die Stunden nach der Infusion für jede Blutprobenerfassung im Stundenformat ein (d. h. 1 h und 30 min sind 1,50). Fügen Sie
die Werte von ein. Wiederholen Sie die Schritte 6.3.5-6.3.7. für Red Marrow.
- Scrollen Sie im Orgelmenü nach unten und wählen Sie Gesamtkörper/Rem Body. Fügen Sie in der Spalte Zeit (Hr) die Stunden nach der Infusion für jede Bildaufnahme im Stundenformat ein (d. h. 1 h und 30 min sind 1,50). Fügen Sie
die Werte gleich
der Differenz zwischen dem
ganzen Körper, der auf planaren Bildern berechnet wird, und .
- Wiederholen Sie dies von Schritt 6.3.5 bis Punkt für Red Marrow.
- Klicken Sie auf Fertig, und speichern Sie das Modell.
HINWEIS: Das Programm geht zurück auf das Kinetic Input Form Modul und die Anzahl der Disintegrationen pro Einheit der injizierten Aktivität (nämlich ND, ausgedrückt in Bq*h/Bq) wird für jede betrachtete Visualisierung visualisiert.
- Wechseln Sie zum Haupteingabeformular. Klicken Sie auf Dosen. Skala Organmasse Neuskalierung als die vorherige Analyse auf anderen Organen.
- Kugelmodell
- Verwenden Sie ein Einheitendichtekugelmodell für Strukturen, die im Phantom nicht verfügbar sind (z. B. Läsionen, Ohrspeicheldrüsen und submandibuläre Drüsen).
- Wiederholen Sie bei der Kurvenanpassung von Schritt 6.3.2 bis Schritt 6.3.10, indem Organwerte durch relative Aufnahme für getrennte Speicheldrüsen und Läsionen ersetzt werden.
- Klicken Sie auf Fertig, und speichern Sie das Modell.
- Das Programm geht zurück auf das Kinetic Input Form Modul und die Anzahl der Disintegrationen pro Einheit injizierte Aktivität [Bq*h/Bq] wird für jedes betrachtete Organ visualisiert. Beachten Sie ND für jede betrachtete Struktur.
- Wechseln Sie zum Modelleingabeformular. Klicken Sie auf Kugeln.
- Geben Sie für jede Struktur die berechnete NDein. Klicken Sie auf Dosen berechnen. Der Bericht zeigt die mittlere absorbierte Dosis an, die in die injizierte Aktivität normalisiert wird, ausgedrückt in mGy/MBq, für diskret eincreasing sphere masses (g). Passen Sie die Kurve mit monoexponentiellem Fitting an und berechnen Sie die absorbierte Dosis, die auf die injizierte Aktivität (mGy/MBq) normalisiert wird, für die spezifische Strukturmasse.
- Bei gepaarten Organen (z.B. Speicheldrüsen) führen Sie die Kugelmodellauswertung getrennt für linke und rechte Organe durch. Verwenden Sie den Mittelwert zwischen linker und rechter Struktur für die Bewertung der gesamten Organdosis.