Hier werden detaillierte Methoden zur Zerlegung und Lipidtröpfchenfärbung von Önozyten in Drosophila-Larven mit BODIPY 493/503, einem Lipidtropfen-spezifischen fluoreszierenden Farbstoff, vorgestellt.
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Methodenartikel
* These authors contributed equally
Hier werden detaillierte Methoden zur Zerlegung und Lipidtröpfchenfärbung von Önozyten in Drosophila-Larven mit BODIPY 493/503, einem Lipidtropfen-spezifischen fluoreszierenden Farbstoff, vorgestellt.
Lipide sind wichtig für die Entwicklung der Tiere und physiologische Homöostase. Dysregulation des Fettstoffwechsels führt zu verschiedenen Entwicklungsfehlern und Krankheiten, wie Fettleibigkeit und Fettleber. In der Regel werden Lipide in Lipidtröpfchen gespeichert, die die multifunktionalen Lipidspeicherorganellen in Zellen sind. Lipidtröpfchen variieren in Größe und Anzahl in verschiedenen Geweben und unter verschiedenen Bedingungen. Es wurde berichtet, dass Lipidtröpfchen durch Regulierung seiner Biogenese und Abbau streng kontrolliert werden. Bei Drosophila melanogasterist das Onozyten ein wichtiges Gewebe für den Fettstoffwechsel und wurde vor kurzem als menschliches Leberanalogon in Bezug auf die Lipidmobilisierung als Reaktion auf Stress identifiziert. Die Mechanismen, die der Regulierung des Lipidtröpfchenstoffwechsels in Oenozyten zugrunde liegen, bleiben jedoch schwer fassbar. Um dieses Problem zu lösen, ist es von größter Bedeutung, eine zuverlässige und empfindliche Methode zu entwickeln, um dynamische Veränderungen des Lipidtröpfchens in Oenozyten während der Entwicklung und unter stressigen Bedingungen direkt zu visualisieren. Unter Ausnutzung der lipophilen BODIPY 493/503, einem lipidtropfenspezifischen Fluoreszenzfarbstoff, wird hier ein detailliertes Protokoll für die Zerlegung und anschließende Lipidtröpfchenfärbung in den Önozyten von Drosophila-Larven als Reaktion auf Hunger beschrieben. Dies ermöglicht eine qualitative Analyse der Lipidtröpfchendynamik unter verschiedenen Bedingungen durch konfokale Mikroskopie. Darüber hinaus kann diese schnelle und hochreproduzierbare Methode auch in genetischen Screens zur Indentifizierung neuartiger genetischer Faktoren verwendet werden, die den Fetttropfenstoffwechsel in Oenozyten und anderen Geweben beinhalten.
Lipide sind für das Überleben der Zelle unerlässlich. Neben ihrer traditionellen Rolle als integrale Bestandteile zellulärer Membransysteme spielen Lipide auch entscheidende Funktionen in der Energieversorgung und Signaltransduktion über die Lebenszyklen einzelner Tiere1. Daher muss der Fettstoffwechsel strengen Vorschriften entsprechen, um die physiologische Hämostase in den Zellen aufrechtzuerhalten. Es ist bekannt, dass die Dysregulation des Fettstoffwechsels zu verschiedenen Krankheiten führt, wie Diabetes und Fettleber. Trotz der großen Bedeutung des Fettstoffwechsels für die Tiergesundheit bleiben die Mechanismen, die der Lipidstoffwechse....
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1. Eilegen
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Die erfolgreiche Durchführung dieses Verfahrens sollte zu einer klaren Lipidtröpfchenfärbung führen, die die Anzahl und Größe der Lipidtröpfchen in den Oenozyten offenbart. Abbildung 1A,A',A'' zeigt, dass es in den Oenozyten normaler Fütterungslarven in verschiedenen Entwicklungsstadien nur wenige nachweisbare Lipidtröpfchen (grüne Punkte) gibt. Abbildung 1B,B',B'' zeigt erhöhte Lipidtröpfchen (g.......
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Unter den oben beschriebenen gibt es mehrere kritische Schritte in diesem Protokoll, wobei der Zeitraum der Eiablage einer davon ist. Als Lipid-mobilisierendes Gewebe ist die Onozyten hochempfindlich gegenüber dem Ernährungsstatus6,8. Längere Eislegerzeiten können zu krähigen Larven und einem verstärkten Lebensmittelwettbewerb führen, was zu ungenauen Ergebnissen führen kann. Die in diesem Protokoll verwendete 1 h Eilegezeit erlaubt es den Larven, sich ohne Ernäh.......
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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.
Diese Arbeit wurde durch Stipendien der National Natural Science Foundation of China (31671422, 31529004 und 31601112), das 111 Project (D18010), das Local Innovative and Research Teams Project of Guangdong Perl River Talents Program (2017BT01S155) und das China Postdoctoral Science Foundation (2018M640767).
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| 50 mL Zentrifugenröhrchen | Corning | 430829 | 50 mL |
| 6 cm Petrischale | Thermo Fisher | 150326 | 6 cm |
| Agar | Für Fliegenfutter | ||
| Aluminiumfolie | N/A | N/A | Schützen Sie Smaple vor Licht |
| BODIPY 493/503 | Invitrogen | D3922 | Lipidtröpfchen-Färbefarbstoff |
| Konfokales Mikroskop | Leica | Leica TSC SP5 | Konfokale Bildgebung |
| Maissirup | Für Fliegenfutter | ||
| Maismehl | Für Fliegenfutter | ||
| Deckglas | Citoglas | 10212424C | 20 > 20 mm, 0,13-0,17 dick |
| Präpariernadel | N/A | N/A | |
| Präparierplatte | N/A | N/A | |
| Filterpapier | N/A | N/A | Durchmesser: 11 cm |
| Fixierpuffer | N/A | N/A | 4% Paraformaldehyd (PFA) in 1x PBS |
| Pinzette | Dumont | 11252-30 | #5 |
| Inkubator | Jiangnan | SPX-380 | Für Fliegenkultur |
| Mikrozentrifugenröhrchen | Axygen | MCT-150-C | 1,5 mL |
| Objektträger für Mikroskopie | Citoglas | 10127105P-G | |
| Eindeckmittel | VECTASHIELDAntifade Eindeckmittel | H-1000 | Antifade Eindeckmittel |
| Nagellack | PanEra | AAPR419 | Deckglas versiegeln |
| Pinsel | N/A | N/A | |
| PBS | N/A | N/A 1x | PBS (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4,1.8 mM KH2PO4, pH 7,4) |
| Rotator | Kylin-Bell Lab Instruments | WH-986 | |
| Schere | Smartdata Medical | SR81 | Vannas Federschere |
| Sojamehl | Für Fliegenfutter | ||
| Spatel | N/A | N/A | |
| Entsprechend Bloomington Standard Maismehl Lebensmittel | |||
| Rezept Stereo Mikroskop | Leica | Leica S6E | Für die Dissektion |
| von Gewebe Wischpapier | N/A | N/A | |
| Hefe | Für Fliegenfutter | ||
| YW | Wird als Labormaterial aufbewahrt | N/A | Drosophila |
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