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Methodenartikel

3D Multicolor DNA FISH Tool zur Erforschung der Kernarchitektur in menschlichen Primärzellen

10.4K Aufrufe

DOI:

10.3791/60712

25. Januar 2020

In diesem Artikel

Zusammenfassung

3D-Mehrfarben-DNA-FISH stellt ein Werkzeug dar, um mehrere genomische Loci innerhalb von 3D-konservierten Kernen zu visualisieren und ihre wechselseitigen Wechselwirkungen und Lokalisierungen innerhalb des Kernraums auf einer einzigen Zellebene eindeutig zu definieren. Hier wird ein Schritt-für-Schritt-Protokoll für ein breites Spektrum menschlicher Primärzellen beschrieben.

Zusammenfassung

Eine wichtige Frage in der Zellbiologie ist die genomische Organisation im Kernraum und wie die Chromatinarchitektur Prozesse wie Genexpression, Zellidentität und Differenzierung beeinflussen kann. Viele Ansätze, die zur Untersuchung der 3D-Architektur des Genoms entwickelt wurden, lassen sich in zwei sich ergänzende Kategorien unterteilen: Chromosomen-Konformationserfassungs-basierte Technologien (C-Technologien) und Bildgebung. Während ersteres auf der Erfassung der Chromosomenkonformation und proximalen DNA-Wechselwirkungen in einer Population fester Zellen basiert, ermöglicht letztere, basierend auf DNA-Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) auf 3D-konservierten Kernen, eine zeitgemäße Visualisierung mehrere Loci auf einer einzelzelligen Ebene (mehrfarbig), die ihre Wechselwirkungen und Dieverteilung innerhalb des Zellkerns untersuchen (3D-Mehrfarben-DNA-FISCH). Die Technik der 3D-Mehrfarben-DNA FISH hat eine Einschränkung der Visualisierung nur ein paar vorbestimmte loci, nicht erlaubt eine umfassende Analyse der nuklearen Architektur. Angesichts der Robustheit der Ergebnisse ist 3D-Mehrfarben-DNA-FISH in Kombination mit 3D-Mikroskopie und Bildrekonstruktion jedoch eine mögliche Methode, um C-Technologie-basierte Ergebnisse zu validieren und die Position und Organisation spezifischer Loci eindeutig zu untersuchen. auf einer Einzelzellebene. Hier schlagen wir eine Schritt-für-Schritt-Methode der 3D-Mehrfarben-DNA-FISH vor, die für eine Vielzahl menschlicher Primärzellen geeignet ist, und diskutieren alle praktischen Maßnahmen, entscheidenden Schritte, Vorstellungen von 3D-Bildgebung und Datenanalyse, die erforderlich sind, um eine erfolgreiche und informative 3D-Multicolor-Funktion zu erhalten. DNA FISH in verschiedenen biologischen Kontexten.

Einleitung

Höhere Eukaryoten müssen systematisch eine riesige Menge an genetischen Informationen im winzigen 3D-Raum des Kerns1,2,3,4kondensieren und verdichten. Heute wissen wir, dass das Genom räumlich in Kompartimenten und topologisch assoziierten Domänen5 angeordnet ist und dass die verschiedenen Ebenen der DNA-Faltung Kontakte zwischen verschiedenen genomischen Regionen erzeugen, die Chromatin-Schleifenbildung6,7beinhalten können. Die 3D-dynamische Schleife von Chro....

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Protokoll

1. DNA-Sondenvorbereitung und Etikettierungsverfahren mit Nick-Übersetzung

  1. Reinigen und reinigen Sie bakterielle künstliche Chromosomen (BACs), Plasmide oder PCR-Produkte mit spezifischen Kits (Materialtabelle), resuspendieren in ddH2O, überprüfen Sie durch Elektrophorese auf einem Agarorosengel und quantifizieren.
  2. Führen Sie die Nick-Translation auf 1,5 x 2 g DNA aus Schritt 1,1 in einem Endvolumen von 50 l durch Mischen aller Reagenzien in einem 0,5 ml niedrig bindenden DNA-Rohr gemäß Tabelle 1durch.
    HINWEIS: Direkt gekennzeichnete Sonden können das Signal-Rausch-Verhältnis verbessern. Kits zur indi....

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Ergebnisse

Die in diesem Artikel beschriebene Methode der 3D-Mehrfarben-DNA FISH ermöglicht eine zeitgemäße Visualisierung verschiedener genomischer Loci innerhalb konservierter 3D-Kerne (Abbildung 1B). Dieses Protokoll ermöglicht die Messung von Entfernungen zwischen Allelen und verschiedenen genomischen Loci, um ihre räumliche Nähe zu bewerten und ihre Position innerhalb des Kernraums zu bewerten (z. B. Loci-Entfernung vom Schwerpunkt oder der Peripherie der Kerne)1.......

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Diskussion

Die aktuelle Methode beschreibt ein Schritt-für-Schritt-Protokoll, um 3D-Mehrfarben-DNA-FISH auf einer Vielzahl menschlicher Primärzellen durchzuführen. Obwohl DNA FISH eine Technologie im breiten Einsatz ist, ist 3D-Mehrfarben-DNA-FISH auf konservierten 3D-Interphasenkernen in vielen Laboratorien immer noch schwierig durchzuführen, vor allem aufgrund der Eigenschaften der verwendeten Proben23,24.

Probe nick Translation ist ein grundle.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Die Autoren würdigen die technische Unterstützung der INGM Imaging Facility (Istituto Nazionale di Genetica Molecolare "Romeo ed Enrica Invernizzi" (INGM), Mailand, Italien), insbesondere C. Cordiglieri, für die Unterstützung bei 3D-Mehrfarben-DNA-FISH-Bildern Erwerb. Diese Arbeit wurde durch folgende Stipendien an B.B. unterstützt: EPIGEN Italienisches Flaggschiff-Programm, Association Francoise contre les Myopathies (AFM-Telethon, Grant nr 18754) und Giovani Ricercatori, italienisches Gesundheitsministerium (GR-2011-02349383). Diese Arbeit wurde durch folgenden Zuschuss an F.M. unterstützt: Fondazione Cariplo (Bando Giovani, Grant nr 2018-0321).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
24-Well-PlattenThermo Fisher Scientific142475
6-Well-PlattenThermo Fisher Scientific140675
Anti-Digoxigenin 488DBADI7488
b-MercaptoethanolSigmaM3148
bFGFPeproTech100-18B
Biotin 11 d-UTPThermo Fisher ScientificR0081
BSA (Rinderserumalbumin)SigmaA7030
CoverlsipsMarienfeld117500
CY3 d-UTPGE HealthcarePA53022
DAPI (4,6-Diamidino-2-phenylindole)Thermo Fisher ScientificD21490
Desoxyribonukleinsäuren Einzelstrang aus LachshodenSigmaD7656
Dextransulfat (Pulver)Santa Cruzsc-203917A
Digoxigenin 11 d-UTPRoche11093088910
DMEMThermo Fisher Scientific21969-035 500 mL
DNA-Polymerase IThermo Fisher Scientific18010-017
DNase ISigmaAMPD1
dNTPs (C-G-A-T)EurocloneBL0423A/c/g
EGFSigmaE9644.2MG
EthanolSigma02860-1L
FBS HycloneThermo Fisher ScientificSH30109
FormaldehydlösungSigmaF8775-25mL
FormamidSigmaF9037
GlutamminThermo Fisher Scientific25030-024 100 mL
GlycerinSigmaG5516-100 mL
GlykogenThermo Fisher ScientificAM9510
HClSigma30721
Human Cot-1 DNAThermo Fisher Scientific15279-001
Insulin HumanSigmaI9278-5 mL
MgCl2Sigma63069
NaAc (Natriumacetat, pH 5,2, 3 M)SigmaS2889
NaClSigmaS9888
ParaformaldehydSigma158127-25G
PBS (phosphatgepufferte Kochsalzlösung)SigmaP4417
Pennycillin/StreptavidinThermo Fisher Scientific15070-063 100 ml
PepsinBioradP6887
PhasePrep BAC DNA KitSigmaNA0100-1KT
Poly-L-Lysin-LösungSigmaP8920
ProLong Diamond Antifade EindeckmittelThermo Fisher ScientificP36970
PureLink Quick Gel Extraktion & PCR-Aufreinigungs-Combo-KitThermo Fisher ScientificK220001
PureLink Quick Plasmid Miniprep KitThermo Fisher ScientificK210010
RNAseCocktail Thermo Fisher ScientificAM2288
GummizementBostik
ObjektträgerVWR631-0114
Streptavidina Alexa Fluor 647Thermo Fisher ScientificS21374
TrinatriumcitratSigma1110379026
Tris-HClSigmaT3253-500g
Triton X-100SigmaT8787-250mL
TWEEN 20SigmaP9416-100mL

Referenzen

  1. Cremer, T., Cremer, C. Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells. Nature Reviews: Genetics. 2 (4), 292-301 (2001).
  2. Lieberman-Aiden, E., et al. Comprehensive mapping of long-rang....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Vorbereitung von DNA-SondenFluoreszenz-in-situ-Hybridisierung3D-BildgebungChromatinorganisationVisualisierung genomischer Locizytoplasmatische PepsinierungFormamid-Behandlung