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Methodenartikel

Retrovirale Überexpression von CXCR4 auf murine B-1a-Zellen und Adoptivtransfer für gezielte B-1a-Zellmigration zur Knochenmark- und IgM-Produktion

4.9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/61003

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31. Mai 2020

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine Methode zur retroviralen Überexpression und Adoptivübertragung von murinen B-1a-Zellen zur Untersuchung der in vivo B-1a-Zellmigration und -lokalisierung. Dieses Protokoll kann für verschiedene nachgelagerte funktionelle Assays erweitert werden, einschließlich der Quantifizierung der Spender-B-1a-Zelllokalisierung oder der Analyse von spenderzellabgeleiteten sekretierten Faktoren nach der Übertragung.

Zusammenfassung

Da die Zellfunktion von Nischen-spezifischen Faktoren in der zellulären Mikroumgebung beeinflusst wird, können Methoden zur Sezieren von Zelllokalisierung und Migration weitere Einblicke in die Zellfunktion liefern. B-1a-Zellen sind eine einzigartige B-Zell-Untergruppe in Mäusen, die schützende natürliche IgM-Antikörper gegen oxidationsspezifische Epitope produzieren, die während Gesundheit und Krankheit entstehen. Die B-1a-Zell-IgM-Produktion unterscheidet sich je nach B-1a-Zellposition, und daher wird es aus therapeutischer Sicht nützlich, die B-1a-Lokalisierung auf Nischen auszurichten, die eine hohe Antikörperproduktion unterstützen. Hier beschreiben wir eine Methode zur gezielten B-1a-Zellmigration in das Knochenmark durch retroviral-vermittelte Überexpression des C-X-C-Motiv-Chemokinrezeptors 4 (CXCR4). Die Geninduktion in primären murinen B-Zellen kann eine Herausforderung darstellen und führt je nach Technik zu niedrigen Transfektionseffizienzen von 10-20%. Hier zeigen wir, dass die retrovirale Transduktion von primären murinen B-1a-Zellen zu einer Transduktionseffizienz von 30-40% führt. Diese Methode nutzt die Adoptivzellübertragung von transduzierten B-1a-Zellen in B-Zell-mangelhafte Empfängermäuse, so dass spender-B-1a-Zellmigration und -lokalisierung visualisiert werden können. Dieses Protokoll kann für andere retrovirale Konstrukte modifiziert werden und kann in verschiedenen funktionellen Assays nach der Adoption verwendet werden, einschließlich der Analyse des Phänotyps und der Funktion von Spenderzellen oder Wirtszellen oder der Analyse von löslichen Faktoren, die nach der B-1a-Zellübertragung abgesondert werden. Die Verwendung von unterschiedlichen Spender- und Empfängermäusen, die nach CD45.1- und CD45.2-Allotyp unterschieden werden, und das Vorhandensein eines GFP-Reporters innerhalb des retroviralen Plasmids könnten auch den Nachweis von Spenderzellen in anderen, immunreichen Mausmodellen ermöglichen, die endogene B-Zellpopulationen enthalten.

Einleitung

Jüngste Studien haben eine beträchtliche Immunzelle, insbesondere B-Zelle, phänotypische und funktionelle Heterogenität in Abhängigkeit von der Zelllokalisierung1,2,3,4,5gezeigt. B-1a-Zellen sind eine solche Population mit heterogener Fähigkeit, schützende IgM-Antikörper zu produzieren; Knochenmark B-1a-Zellen sezernieren IgM konstitutiv und tragen signifikant zu Plasma-IgM-Titers6bei, während peritoneale B-1a-Zellen bei Homöostase eine niedrige IgM-Sekretion haben und stattdessen du....

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Protokoll

Alle Tierprotokolle wurden vom Animal Care and Use Committee der University of Virginia genehmigt.

1. Magnetische Trennung und Anreicherung von peritonealen B-1-Zellen

  1. Euthanisieren Sie eine 12-14 Wochen alte, männliche, CD45.1+ApoE-/- Maus mit CO2.
  2. Machen Sie einen oberflächlichen Schnitt in den Bauch mit geraden chirurgischen Schere und schälen Sie rücken Die Haut mit gebogenen Schere, um die Peritonealwand auszusetzen. Unterspülen Sie die Peritonealhöhle mit 10 ml 37 °C RPMI-1640 Medium mit einer 10 ml Spritze und einer 25 G Nadel. Schütteln Sie die Maus, um Zellen zu lösen, indem Sie ....

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Ergebnisse

Eine Übersicht über das Protokoll finden Sie in Abbildung 1. Abbildung 2 zeigt die Anreicherung von peritonealen B-1a-Zellen nach magnetischer Erschöpfung anderer Peritonealzelltypen. Lebende Singletzellen in der Post-Depletion-Fraktion haben einen größeren Anteil an CD19+ B-Zellen im Vergleich zu F4/80+ Makrophagen, fehlen CD5hi CD19- T-Zellen und enthalten eine erhöhte Frequenz von CD19+ CD5-Mittel-B-1a-Zellen im Ver.......

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Diskussion

Die hier angebotene Methode ermöglicht eine stabile und relativ effiziente primäre B-1a-Zellgenabgabe, in vivo-Adoptivübertragung sowie die Identifizierung und Lokalisierung der injizierten Zellen. Zellen konnten 17 Wochen nach der Zellübertragung nachgewiesen und eine erhöhte CXCR4-Expression beibehalten werden. Retrovirus-vermittelte Abgabe ergab 30-40% Transduktionseffizienz der primären murinen B-1a-Zellen mit minimalen Auswirkungen auf die Zelllebensfähigkeit in unseren Händen (Abbildung 4e

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde unterstützt von 1R01 HL107490, 1R01 HL136098, Project 3 von P01 HL055798, P01 HL136275-01 (C.A. McNamara) und R01GM100776 (T.P. Bender). A. Upadhye wurde von American Heart Association Pre-Doctoral Fellowship 16PRE30300002 und 5T32AI007496-20 unterstützt. Wir danken Joanne Lannigan, Mike Solga und Claude Chew von der University of Virginia Flow Cytometry Core für ihre ausgezeichnete technische Unterstützung.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
70 Mikron FilterkappenFalcon352235
Anti-Biotin-MikrokügelchenMiltenyi Biotec130-090-485
Anti-CD16/CD32 oder Fc-BlockLife TechnologiesMFCR00
B220 APCeBioscience17-0452-83Klon: RA3-6B2
Beta-MercaptoethanolGibco21985-023
CD19 APCef780eBioscience47-0193-82Klon: eBio1D3
CD23 BiotineBioscience13-0232-81Klon: B3B4
CD23 PECy7eBioscience25-0232-82Klon: B3B4
CD3e BiotineBioscience13-0033-85Klon: eBio500A2
CD45.1 ApoE-/- MäuseN/AN/AGezüchtet im Haus
CD45.1 PerCP-Cy5.5BD Biosciences560580Klon: A20
CD45.2 BV421BD Biosciences562895Klon: 104
CD45.2 Rag1-/- ApoE-/- MäuseN/AN/AGezüchtet im Haus
CD5 PEeBioscience12-0051-83Klon: 53-7.3
Ctl-GFP RetrovirusN/AN/AHaus erzeugt mit dem GFP-exprimierenden retroviralen Plasmid MigR1, zur Verfügung gestellt von Dr. T.P. Bender
CXCR4 APCeBioscience17-9991-82Klon: 2B11
CXCR4-GFP RetrovirusN/AN/AEigens erzeugt durch Klonierung von Maus CXCR4 in das retrovirale MigR1-Plasmid
F4/80 BiotinLife TechnologiesMF48015Klon: BM8
Flowjo Software v. 9.9.6Treestar Inc.Lizenz erforderlich
GentamicinGibco15710-064
Gr-1 BiotineBioscience13-5931-82Klon: RB6-8C5
hitzeinaktiviertes fötales RinderserumGibco16000-044
HEPESGibco15630-080
IgM PECF594BD Biosciences562565Klon: R6-60.2
InsulinspritzenBD Biosciences329461
IsofluranHenry Schein Animal Health029405
Lebend/tot GelbLife TechnologiesL34968
LS SäulenMiltenyi Biotec130-042-401
NK1.1 BiotinBD Biosciences553163Klon: PK136
Nicht-essentielle AminosäurenGibco11140-050
ODN 1668InvivoGentlrl-1668
PBSGibco14190-144
RPMI-1640Gibco11875-093
NatriumpyruvatGibco11360-070
Ter119 BiotineBioscience13-5921-82Klon: Ter119
Im

Referenzen

  1. Baumgarth, N. B-1 Cell Heterogeneity and the Regulation of Natural and Antigen-Induced IgM Production. Frontiers in Immunology. 7, 324(2016).
  2. Holodick, N. E., Vizconde, T., Rothstein, T. L.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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