Hier wird ein Protokoll zur genetischen Manipulation im embryonalen Frettchenhirn unter Verwendung der Utero-Elektroporation vorgestellt. Diese Methode ermöglicht die Ausrichtung von neuronalen Vorläuferzellen im Neocortex in vivo.
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Methodenartikel
Hier wird ein Protokoll zur genetischen Manipulation im embryonalen Frettchenhirn unter Verwendung der Utero-Elektroporation vorgestellt. Diese Methode ermöglicht die Ausrichtung von neuronalen Vorläuferzellen im Neocortex in vivo.
Die Manipulation der Genexpression in vivo während der embryonalen Entwicklung ist die Methode der Wahl bei der Analyse der Rolle einzelner Gene während der Entwicklung von Säugetieren. In der Gebärmutterelektroporation ist eine Schlüsseltechnik für die Manipulation der Genexpression im embryonalen Säugetiergehirn in vivo. Ein Protokoll zur In-Utero-Elektroporation des embryonalen Neocortex von Frettchen, einem kleinen Fleischfresser, wird hier vorgestellt. Das Frettchen wird zunehmend als Modell für die Neocortex-Entwicklung verwendet, weil sein Neocortex eine Reihe anatomischer, histologischer, zellulärer und molekularer Merkmale aufweist, die auch bei menschlichen und nichtmenschlichen Primaten vorhanden sind, aber in Nagetiermodellen wie Maus oder Ratte fehlen. Bei der Utero-Elektroporation wurde am embryonalen Tag (E) 33, einem Midneurogenese-Stadium bei Frettchen, durchgeführt. In der Gebärmutter-Elektroporation zielt auf neuronale Vorläuferzellen, die die lateralen Ventrikel des Gehirns auskleiden. Während der Neurogenese, Diese Vorläuferzellen geben alle anderen neuronalen Zelltypen. Diese Arbeit zeigt repräsentative Ergebnisse und Analysen bei E37, Postnataltag (P) 1 und P16, entsprechend 4, 9 und 24 Tagen nach der Utero-Elektroporation. In früheren Stadien besteht die Nachkommenschaft der Zielzellen hauptsächlich aus verschiedenen neuronalen Vorläufersubtypen, während in späteren Stadien die meisten markierten Zellen postmitotische Neuronen sind. So ermöglicht die in der Utero-Elektroporation die Untersuchung der Wirkung genetischer Manipulation auf die zellulären und molekularen Merkmale verschiedener Arten von Nervenzellen. Durch seine Wirkung auf verschiedene Zellpopulationen, in der Utero Elektroporation kann auch für die Manipulation von histologischen und anatomischen Merkmalen des Frettchen neocortex verwendet werden. Wichtig ist, dass alle diese Effekte akut sind und mit einer vom Benutzer bestimmten spatiotemporalen Spezifität durchgeführt werden.
Der Neocortex ist das äußere Blatt des Säugetier-Großhirns und der Sitz der höheren kognitiven Funktionen1,2,3,4,5. Um eine akute genetische Manipulation des Säugetierneocortex in vivo während der embryonalen Entwicklung zu erreichen, wurden zwei verschiedene Methoden untersucht: Virusinfektion6 und utero Elektroporation7. Beide Methoden ermöglichen eine effiziente Ausrichtung auf neokortikale Zellen, leiden aber unter einigen Einschränkungen. Der hauptvorteil....
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Alle Versuchsverfahren wurden nach Genehmigung durch die Landesdirektion Sachsen (Lizenzen TVV 2/2015 und TVV 21/2017) in Absprache mit dem Tierschutzgesetz durchgeführt.
1. Vorbereitung für die in utero Elektroporation
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Bei der Utero-Elektroporation von Frettchen bei E33 wurde die neurale Vorläuferzelle gezielt, die die ventrikuläre Oberfläche des embryonalen Neocortex auskleide (Abbildung 1). Diese Zellen werden apikale Vorläufer genannt und sind sehr proliferativ, was zu allen anderen Zelltypen während der Entwicklung führt. Nach asymmetrischer Teilung erzeugten apikale Vorläufer einen weiteren apikalen Vorläufer und eine differenziertere Zelle, typischerweise einen Basalvorläufer (BP), der von der ventri.......
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In der Utero-Elektroporation in Frettchen ist eine wichtige Technik, mit Vor- und Nachteilen gegenüber anderen Methoden. Es gibt wichtige Schritte und Einschränkungen für diese Methode, sowie mögliche Änderungen und zukünftige Anwendungen zu beachten.
Seit der Pionierarbeit von Victor Borrell und Kollegen zur genetischen Manipulation des postnatalen Frettchenneocortex mittels Elektroporation oder Virusinjektion35,42,
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Die Autoren haben nichts zu verraten.
Wir danken den Dienstleistungen und Einrichtungen des Max-Planck-Instituts für Molekulare Zellbiologie und Genetik für die hervorragende Unterstützung, insbesondere dem gesamten Team des Biomedizinischen Dienstes (BMS) für die hervorragende Frettchenhaltung und J. Peychl und seinem Team der Lichtmikroskopieanlage. Besonders dankbar sind wir Katrin Reppe und Anna Pfeffer vom BMS für die außergewöhnliche tierärztliche Unterstützung und Lei Xing von der Huttner-Gruppe für die Unterstützung bei Frettchenoperationen.
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| 1ml Spritze | BD | 309628 | Elektroporation |
| 4-0 Vicryl Naht | Ethicon | V392ZG | Chirurgie |
| Aluminiumspray | cp-pharma | 98017 | Chirurgie |
| Amoxicilin+Clavulansäure (Synulox RTU) | WDT | 6301 | Chirurgie |
| Kappilenhalter | WPI | MPH6S12 | Elektroporation |
| Dexpanthenol Salbenlösung | Bayer | 6029009.00.00 | OP-Abdecktuch |
| 45x75cm | Hartmann | 2513052 | |
| Chirurgie-Elektrodenpinzette, platiniert 5mm | BTX | 45-0489 | Elektroporation |
| Elektroporator | BTX | ECM830 | Elektroporation |
| Fast Green | Sigma F7258-25G | Elektroporation | |
| Frettchen Mustela putorius furo | Marshall | NA | Experimenteller Organismus |
| Faseroptische Lichtquelle | Olympus | KL1500LCD | Elektroporationszange |
| Allgaier instrumente | 08-033-130 | Chirurgie | |
| Pinzette 3C-SA | Rubis Tech | 3C-SA | Chirurgie |
| Pinzette 55 | Dumostar | 11295-51 | Chirurgie |
| Pinzette 5-SA | Rubis Tech | 5-SA | Chirurgie |
| Mulltupfer groß | Hartmann | 401723 | Chirurgie |
| Mulltupfer klein | Hartmann | 401721 | Chirurgie |
| GFAP Antikörper | Dako | Z0334 | Antikörper |
| GFP Antikörper | Aves Labore | GFP1020 | Antikörper |
| Glas Kappilare (Borosilikatglas mit Filament, OD:1,2mm, ID: 0.69mm, 10cm Länge) | Sutter Instrument | BF120-69-10 | Elektroporation |
| Glukose | Bela-pharm | K4011-02 | Chirurgie |
| Wärmekissen | Hans Dinslage | Sanitas SHK18 | Chirurgie |
| Jod (Betadinlösung 100 mg/ml) | Meda | 997437 | Chirurgie |
| Isofluran | CP | 21311 | Chirurgie |
| Ladespitzen 20&Mikro; l | Eppendorf | #5242 956.003 | Elektroporation |
| Metamizol | WDT | 99012 | Chirurgie |
| Metzenbaum Präparierschere | Aesculap | BC600R | Chirurgie |
| Mikropipettenabzieher | Sutter Instrument | Modell P-97 | Elektroporation |
| pCAGGS-GFP | NA NA | Aus | Kalebic et al., eLife, 2018 |
| PCNA Antikörper | Millipore | CBL407 | Antikörper |
| pH3 Antikörper | Abcam | ab10543 | Antikörper |
| Skalpell | Aesculap | 294200104 | Chirurgie |
| Rasierer | Braun | EP100 | Chirurgie |
| Sox2 Antikörper | R+D Systems | AF2018 | Antikörper |
| Chirurgische Klemme 13cm | WDT | 27080 | Chirurgie |
| Chirurgischer Doppellöffel (Williger) | WDT | 27232 | Chirurgie |
| Chirurgisches Tuch | WDT | 28800 | Chirurgie |
| Chirurgische Schere klein | FST | 14090-09 | Chirurgie |
| Nahtnadelhalter | Aesculap | BM149R | Chirurgie |
| Tbr2 Antikörper | Abcam | ab23345 | |
| Antikörper-Transferpipette 3ml | Fischer wissenschaftliche | 13439108 | Chirurgie |
| Wasserbad | Julabo | TW2 | Chirurgie |
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