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Methodenartikel

Bildgebung und Analyse des Neurofilamenttransports in verbraucheten Maus-Tibialnerv

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DOI:

10.3791/61264

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31. August 2020

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir beschreiben Fluoreszenz-Photoaktivierungsmethoden zur Analyse des axonalen Transports von Neurofilamenten in einzelnen myelinierten Axonen peripherer Nerven von transgenen Mäusen, die ein photoaktivierbares Neurofilamentprotein exprimieren.

Zusammenfassung

Neurofilament-Proteinpolymere bewegen sich entlang von Axonen in der langsamen Komponente des axonalen Transports bei Durchschnittsgeschwindigkeiten von 0,35-3,5 mm/Tag. Bis vor kurzem war die Untersuchung dieser Bewegung vor Ort nur mit radioisotopischer Pulsbeschriftung möglich, die eine Analyse des axonalen Transports in ganzen Nerven mit einer zeitlichen Auflösung von Tagen und einer räumlichen Auflösung von Millimetern ermöglicht. Um den Neurofilamenttransport vor Ort mit höherer zeitlicher und räumlicher Auflösung zu untersuchen, haben wir eine hThy1-paGFP-NFM transgene Maus entwickelt, die Neurofilamentprotein M mit photoaktivierbarem GFP in Neuronen ausdrückt. Hier beschreiben wir Fluoreszenz-Photoaktivierung Puls-Escape und Puls-Spread-Methoden zur Analyse des Neurofilamenttransports in einzelnen myelinierten Axonen von tibiaellen Nerven von diesen Mäusen ex vivo. Isolierte Nervensegmente werden auf der Mikroskopstufe durch Perfusion mit sauerstoffhaltiger Saline erhalten und durch drehende Plattenkonfokaleszenzmikroskopie abgebildet. Violettes Licht wird verwendet, um die Fluoreszenz in einem kurzen axonalen Fenster zu aktivieren. Die Fluoreszenz in den aktivierten und flankierenden Regionen wird im Laufe der Zeit analysiert, was die Untersuchung des Neurofilamenttransports mit zeitlicher und räumlicher Auflösung in der Größenordnung von Minuten bzw. Mikrometern ermöglicht. Mathematische Modellierung kann verwendet werden, um kinetische Parameter des Neurofilamenttransports einschließlich der Geschwindigkeit, der Richtungsverzerrung und des Pausungsverhaltens aus den resultierenden Daten zu extrahieren. Die Puls-Escape- und Puls-Spread-Methoden können auch angepasst werden, um den Neurofilamenttransport in anderen Nerven zu visualisieren. Mit der Entwicklung zusätzlicher transgener Mäuse könnten diese Methoden auch verwendet werden, um den axonalen Transport anderer zytoskelettaler und zytosolischer Proteine in Axonen abzubilden und zu analysieren.

Einleitung

Der axonale Transport von Neurofilamenten wurde erstmals in den 1970er Jahren durch radioisotopische Pulsbeschriftung1demonstriert. Dieser Ansatz hat eine Fülle von Informationen über Neurofilament-Transport in vivoergeben, aber es hat relativ geringe räumliche und zeitliche Auflösung, in der Regel in der Größenordnung von Millimetern und Tagen bestenfalls2. Darüber hinaus ist die radioisotopen pulsierende Kennzeichnung ein indirekter Ansatz, der die Injektion und das Opfer mehrerer Tiere erfordert, um einen einzigen Zeitverlauf zu erzeugen. Mit der Entdeckung fluoreszierender Proteine und Fortschritten in der F....

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Protokoll

Alle hier beschriebenen Methoden wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Ohio State University genehmigt.

1. Vorbereitung der Nervensalinelösung

  1. Machen Sie 100 ml Breuer-Salzlinie10: 98 mM NaCl, 1 mM KCl, 2 mM KH2PO4, 1 mM MgSO4, 1,5 mM CaCl2, 5,6% D-Glucose, 23,8 mM NaHCO3 in doppelt destilliertem Wasser.
  2. Blase 95% Sauerstoff/5% Kohlendioxid (Carbogen) durch die Saline-Lösung für mindestens 30 Minuten vor der Verwendung. Rest-Saline kann innerhalb einer Woche wiederverwendet werden; es muss jedoch vor jedem Gebrauch....

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Ergebnisse

Abbildung 3 zeigt repräsentative Bilder von Puls-Escape- und Puls-Spread-Experimenten. Wir haben mehrere Studien veröffentlicht, die Daten beschreiben, die mit der Puls-Escape-Methode und unseren Methoden zur Analyse dieserDaten5,6,7,8,17. Im Folgenden zeigen wir, wie die Puls-Spread-Daten Informationen über die Richtung und Gesch.......

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Diskussion

Bei der Analyse von Puls-Escape- und Puls-Spread-Experimenten ist Vorsicht geboten, da ein erhebliches Potenzial für die Einschleppung von Fehlern während der Nachbearbeitung, vor allem während der Flachfeldkorrektur, Bildausrichtung und Bleichkorrektur, besteht. Die Flachfeldkorrektur ist notwendig, um die Ungleichmäßigkeit in der Beleuchtung zu korrigieren, was zu einem Rückgang der Intensität über das Sichtfeld von der Mitte zur Peripherie führt. Das Ausmaß der Ungleichmäßigkeit ist wellenlängenabhängig und sollte dah.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Die Autoren danken Paula Monsma für die Unterweisung und Unterstützung bei der konfokalen Mikroskopie und tibialen Nervensektion und Dr. Atsuko Uchida, Chloe Duger und Sana Chahande für die Unterstützung bei der Maushaltung. Diese Arbeit wurde teilweise durch die kollaborativen National Science Foundation Grants IOS1656784 an A.B. unterstützt. und IOS1656765 an P.J., und National Institutes of Health Grants R01 NS038526, P30 NS104177 und S10 OD010383 an A.B. N.P.B. wurde durch ein Stipendium des Postdoctoral Scholars Program der Ohio State University unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
14 x 22 Rechteck Dichtung 0,1mmBioptechs1907-1422-100Innendichtung
2-Deoxy-D-GlukoseSigmaD6134
30mm Runde Dichtung mit LöchernBioptechs1907-08-750Außendichtung
35 x 10mm SchaleThermo Fisher153066Sezierschalen
40mm runde DeckgläserBioptechs40-1313-0319
60mL Spritze - Luer-Lock-SpitzeBD309653
Andor Revolution WD Spinning-Disk KonfokalsystemAndorausgestattet mit Perfect Focus und FRAPPA
Systemen CalciumchloridFisherC79
DeckgläserFisher12-541-Bfür Fluoreszein-Objektträger
D-(+)-GlukoselösungSigmaG8769
PräpariernadelnFine Science Tools26001-70
PräparierzangeFine Science Tools11251-30Pinzette mit feiner Spitze
PräpariermikroskopZeiss47 50 03
Sezierpfanne mit WachsGinsberg Scientific568859
PräparierschereFine Science Tools14061-09Initiale Dissektionsschere
FCS2 PerfusionskammerBioptechs060319-2-03
Fluorescein-NatriumFluka46960
Inline-LösungsheizungWarner InstrumentsSH27-B
Laminektomie-PinzetteFine Science Tools11223-20Erstdissektionszange
MagnesiumsulfatSigma-AldrichM7506
Mikroaquädukt-ObjektträgerBioptechs130119-5
ObjektträgerFisher12-544-3für Fluoreszein-Objektträger
MikroskoptischeinsatzAngewandte wissenschaftliche InstrumenteI-3017
Objektiv-HeizsystemOkolabOko Touch mit Objektivkragen
Objektivöl - Typ ANikonabgekündigt
Plan Apo VC 100x 1.40 NA ObjektivNikonMRD01901
KaliumchloridFisherP217
KaliumphosphatSigma-AldrichP0662
NatriumbicarbonatSigma-AldrichS6297
NatriumchloridSigma-AldrichS7653
Natrium JodacetatSigma-AldrichI2512
SpritzenpumpeSage InstrumentsModell 355
Schlauchadapter - weiblichKleinteile Inc.
Schlauchadapter - männlichKleinteile Inc.
Tygon SchlauchBioptechs1/16" ID, 1/32" Wandstärke
Vannas FederschereFine Science Tools15018-10Feinschere
10051091005012

Referenzen

  1. Hoffman, P. N., Lasek, R. J. The slow component of axonal transport. Identification of major structural polypeptides of the axon and their generality among mammalian neurons. Journal of Cell Biology. 66 (2), 351-366 (1975).
  2. Brown, A. Slow Axonal Transport.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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