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Methodenartikel

Ein bakterieller oraler Fütterungstest mit antibiotikabehandelten Moskitos

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DOI:

10.3791/61341

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12. September 2020

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieser Artikel stellt ein Protokoll vor, um die Wirkung einzelner Mückendarmbakterien zu untersuchen, einschließlich Isolierung und Identifizierung von Mücken-Mittelgut-anbaufähigen Mikroben, Antibiotika-Erschöpfung von Mückendarmbakterien und Wiedereinführung einer bestimmten Bakterienart.

Zusammenfassung

Die Mücke Midgut beherbergt ein hochdynamisches Mikrobiom, das den Wirtsstoffwechsel, die Fortpflanzung, die Fitness und die Vektorkompetenz beeinflusst. Es wurden Studien durchgeführt, um die Wirkung von Darmmikroben als Ganzes zu untersuchen; jedoch könnten verschiedene Mikroben unterschiedliche Auswirkungen auf den Wirt ausüben. Dieser Artikel enthält die Methodik, um die Wirkung jeder spezifischen Mückendarmmikrobe und den potenziellen Mechanismus zu untersuchen.

Dieses Protokoll besteht aus zwei Teilen. Der erste Teil stellt vor, wie man das Mückenmittelgut seziert, kultivierbare Bakterienkolonien isoliert und Bakterienarten identifiziert. Der zweite Teil sieht das Verfahren zur Erzeugung von antibiotikabehandelten Mücken und zur Wiedereinführung einer bestimmten Bakterienart vor.

Einleitung

Mücken gelten als die wichtigsten Vektoren menschlicher pathogener Krankheiten, die über hundert Krankheitserreger übertragen, darunter das Zika-Virus, das Dengue-Virus und die Plasmodium-Parasiten 1. Wenn Mücken eine Blutmahlzeit nehmen, um Nährstoffe für die Oviposition zu erhalten, können sie versehentlich Krankheitserreger von einem infizierten Wirt über den Verdauungstrakt2aufnehmen. Wichtig ist, dass das Mückenmittelgut, das sowohl bei der Blutmahlzeit als auch beim Eintritt von Krankheitserregern eine zentrale Rolle spielt, ein hochdynamisches Mikrobiom3beherbergt.

Mehrere Studien haben labor- und feldgesammelte Mückenmikrobiota entweder mit einer kulturabhängigen Methode oder einem Bakteriensequenzierungstest4,5,6charakterisiert. Arten wie Pantoea, Serratia, Klebsiella, Elizabethkingiaund Enterococcus sind häufig von Mücken in verschiedenen Studienisoliert 5,7,8,9. Interessanterweise schwankt die Moskitodarmmikrobiota dynamisch sowohl in der Vielfalt der Gemeinschaft als auch in der Menge der Bakterienarten, die von der Entwicklungsphase, der Art, der geografischen Herkunft und dem Fütterungsverhalten betroffen sind4. Studien zeigen, dass die Blutfütterung die gesamte bakterielle Belastung mit einer schnellen Ausdehnung der Arten von Enterobacteriaceae und einer Verringerung der Gesamtvielfalt10,11dramatisch erhöht. Darüber hinaus wird Mückendarmmikrobiota des Larvenstadiums in der Regel ausgerottet, wenn das Insekt während der Pupation und Scheidung einer Metamorphose unterzogen wird; Daher müssen neu entstandene erwachsene Mücken ihre Mikrobiota4wieder bevölkern.

Gut mikrobiota moduliert Insektenphysiologie in verschiedenen Aspekten, einschließlich Nährstoffaufnahme, Immunität, Entwicklung, Reproduktion und Vektorkompetenz12. Axenic Mückenlarven nicht über den ersten Instar entwickeln, während ein Bakterium orale Versorgung rettet Entwicklung, was darauf hindeutet, dass die Mücke Darm Mikrobe ist wichtig für die Larvenentwicklung13,14. Außerdem, Erschöpfung der Darmbakterien verzögert Blutmehl Verdauung und Nährstoffaufnahme, wirkt sich auf die Oozytenreifung, und verringert oviposition15. Darüber hinaus lösen Mücken mit Darmmikroflora höhere Immunantworten im Vergleich zu antibiotikabehandelten Mücken aus, mit ständig erhöhter antimikrobieller Peptidexpression gegen andere Krankheitserreger, um16zu infizieren. Antibiotika werden in der Regel oral verabreicht, um Pan-Darm-Bakterien in diesen Studien zu entfernen, und dann werden Experimente durchgeführt, um den Unterschied zwischen axtischen Mücken und Mücken mit commenalen Mikroben zu vergleichen. Allerdings beherbergt die Mücke Midgut eine vielfältige Gemeinschaft von Mikroben, und jede Bakterienart könnte eine deutliche Wirkung auf die Wirtphysiologie ausüben.

Mückenmikrobiota reguliert Vektorkompetenz mit divergierenden Effekten. Die Kolonisation durch Proteus, isoliert von feldabgeleiteten Mücken von Dengue-endemischen Gebieten, verleiht eine hochregulierte antimikrobielle Peptidexpression und Resistenz gegen Dengue-Virusinfektionen16. Der entomopathogene Pilz Beauveria bassiana aktiviert den Toll- und JAK-STAT-Immunweg gegen eine Arbovirus-Infektion17. Im Gegensatz dazu erleichtert der aus Aedes aegypti midgut isolierte Pilz Talaromyces die Infektion des Dengue-Virus, indem er die Darmtrypsin-Aktivitätmoduliert 18. Darüber hinaus fördert Serratia marcescens die Arbovirus-Übertragung durch ein sekretorisches Protein namens SmEnhancin, das die Mucin-Schicht auf dem Darmepithel von Mückenverdaut 19.

Dieses Verfahren bietet eine systematische und intuitive Methode zur Zerlegung des Mückenmittelguts, zur Isolierung von kulturierbaren Bakterienkolonien, zur Identifizierung der Bakterienarten und zur Wiedereinführung durch orale Fütterung. Es liefert repräsentative Ergebnisse der Blutfütterung mit einem commensal Bakterium, Chryseobacterium Meningosepticum, auf Mücken EierstockEntwicklung und Oviposition.

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Protokoll

1. Midgut-Sektion und kultivierbare Bakterienisolierung

  1. Bereiten Sie die Mücke für die Zerlegung vor.
    1. Sammeln Sie die Mücken 7-9 Tage nach der Entstehung mit einem Aspirator. Anästhesisieren Sie die gesammelten Mücken, indem Sie sie 3-5 min einer Temperatur von 4 °C unterziehen und die Mücken in einer eiskalten Petrischale bis zur Zerlegung anbesäufen.
  2. Sterilisieren Sie Laborinstrumente und die Mückenoberfläche.
    1. Sterilisieren Sie die Experimentierbank, sezieren Sie Mikroskop, Zange und Glasschlitten, indem Sie 75% Ethanol sprühen, um eine Kontamination durch Bakterien aus der Umwelt zu vermeiden.
    2. Bereiten Sie eine sterile Petrischale mit 75% Ethanol und zwei Petrischalen mit steriler 1x Phosphatgepufferte Saline (1x PBS) zu.
    3. Die Mücke durch Tauchen und Schütteln in 75% Ethanol für 3 min oberflächensterilisieren und zweimal mit 1x PBS-Puffer abspülen, falls das Ethanol die sezierte Darmflora beeinflusst.
  3. Sezieren Sie die Mücke Midgut.
    1. Übertragen Sie die oberflächensterilisierte Mücke mit einem Tropfen sterilem 1x PBS Puffer auf die Glasrutsche. Sezieren Sie unter dem Sezieren des Mikroskops.
    2. Entfernen Sie unter der unteren Vergrößerung des Sezierens mikroskops vorsichtig die Beine, Flügel und den Kopf der Mücke, um eine Flucht zu verhindern. Entfernen Sie die letzte Sobe der Mücke, indem Sie sie direkt schneiden, anstatt sie zu ziehen, um zu verhindern, dass der Verdauungstrakt bricht.
    3. Klemmen Sie den Thorax der Mücke und das Ende des Bauches mit Zange. Ziehen Sie vorsichtig den Verdauungstrakt der Mücke heraus. Der erworbene Verdauungstrakt enthält in der Regel die Ernte, Vorgut, Midgut, Hinterdarm, und die Malpighian Röhren.
    4. Stellen Sie das Sezieren des Mikroskops auf eine höhere Vergrößerung ein. Entfernen Sie die Ernte, Dasvorgut, Dasbauch, und die Malpighian Rohre aus dem sezierten Verdauungstrakt, um das Mittelgut der Mücke zu bekommen.
    5. Achten Sie beim Entfernen der Ernte darauf, da sich die Ernte aufbläht und dem Mittelgut ähnelt, nachdem die Mücke eine Zuckermahlzeit zu sich nimmt. Die Malpighian-Rohre, eine Gruppe von langen und dünnen Ausscheidungsrohren, befinden sich an der Grenze zwischen dem Mittelgut und dem Hintergut.
  4. Isolieren Sie Darmbakterien.
    1. Übertragen Sie das sezierte Mittelgut in ein steriles 1,5 ml-Rohr mit 200 l sterilem 1x PBS-Puffer.
    2. Schleifen Sie das Midgut auf einer sterilen Bank gründlich mit einem sterilen Stößel, um eine vollständige Freisetzung von Darmbakterien in den Puffer zu ermöglichen.
    3. Das Homogenat wird seriell auf drei 10-fache Verdünnungen verdünnt. Fügen Sie 50 l jeder Verdünnung in die LB (Luria-Brühe) Agarplatte, und verteilen Sie es dann auf der Platte. Wenn das Mittelgut eine hohe Konzentration von Darmflora enthält, ist es wichtig, mehr serielle Verdünnungen zu machen, um einzelne Kolonien herauszupicken.
    4. Inkubieren Sie die Platte bei 37 °C für 1-2 Tage, bis einzelne Kolonien sichtbar sind.
  5. Artenidentifikation
    1. Wählen Sie einzelne Kolonien und impfen Sie sie jeweils in einen 150 ml kegelförmigen Kolben mit 50 ml LB-Brühemedium.
    2. Schütteln Sie die Bakterien bei 37 °C über Nacht.
    3. Extrahieren Sie die gesamte DNA durch bakterielle genomische DNA-Extraktionkit. Verstärken Sie 16S rDNA durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR).
      HINWEIS: Es gibt mehrere Segmente in 16S rDNA, die konserviert werden. Basierend auf diesen konservierten Regionen können universelle Primer für Bakterien entwickelt werden, um 16S rDNA-Fragmente aller Bakterien zu verstärken. Diese Primer sind spezifisch für Bakterien, und der Unterschied in der variablen Region von 16S rDNA kann verwendet werden, um verschiedene Bakterien zu unterscheiden. Daher ist 16S rDNA weit verbreitet für die bakterielle Identifizierung verwendet.
    4. Wiederherstellen und Reinigen von DNA-Fragmenten aus PCR-Produkten durch Agarose-Gel-Elektrophorese und ein kommerzielles Gel-Recovery-Kit.
    5. Führen Sie eine DNA-Sequenzierung der gereinigten DNA-Fragmente durch, um bakterielle Gensequenzen zu erhalten.
    6. Vergleichen Sie die 16S rRNA-Gensequenz mit der in GenBank verfügbaren bakteriellen Sequenz. Wählen Sie die Datenbank Bakterien und Archaea aus.
      ANMERKUNG: Die Identifizierung auf Artenebene wurde definiert als eine Ähnlichkeit mit der Sequenz ähnlichkeitsweise 99 % 16S rDNA mit dem nächsten GenBank-Eintrag. Das Isolat wurde der entsprechenden Gattung zugewiesen, als seine 16S-rDNA-Sequenzähnlichkeit <99% und 95% betrug.

2. Antibiotika-Behandlung und Wiedereinführung des Bakteriums

  1. Bereiten Sie die Antibiotikum-Lösung vor.
    1. Wiegen Sie die erforderliche Menge an Saccharose, Penicillin und Streptomycin, um eine 10%ige Saccharoselösung mit 20 Einheiten Penicillin und 20 g Streptomycin pro ml vorzubereiten.
  2. Füttern Sie Mücken mit der Antibiotikalösung.
    1. Anästhesisieren Sie die Mücken in 4 °C für 3-5 min. Übertragen Sie die Mücken in eine Papiertasse. Bedecken Sie die Oberseite mit Gaze und wickeln Sie die Gaze mit Klebeband auf, um mückenverhindern zu entkommen.
    2. Tauchen Sie sterile Baumwollkugeln in die Antibiotikalösung und legen Sie sie vorsichtig auf die Mücke-Tasse. Drücken Sie die Baumwollkugeln vor dem Gebrauch, um zu verhindern, dass Mücken in den tropfenden Baumwollkugeln ertrinken.
    3. Bedecken Sie die Baumwollkugeln mit einer 10 cm Petrischale, um Feuchtigkeitsverdunstung zu verhindern. Ersetzen Sie die Baumwollkugeln zweimal täglich für drei aufeinanderfolgende Tage.
  3. Bestätigen Sie die Wirksamkeit der Antibiotika-Behandlung.
    1. Nach der oben genannten Methode, sezieren Sie das Mittelgut von antibiotikabehandelten Mücken.
    2. Übertragen Sie die sezierten Mittelguts in ein steriles 1,5 ml-Rohr mit 200 l sterilem 1x PBS-Puffer.
    3. Schleifen Midguts in einer sterilen Bank gründlich mit einem sterilen Stößel, um die vollständige Freisetzung von Darmbakterien in den Puffer zu ermöglichen.
    4. Extrahieren Sie die mikrobielle DNA des Darms durch bakterielle genomische DNA-Extraktionskit.
    5. Durchführung der bakteriellen Quantifizierung durch quantitative PcR (qPCR) in Echtzeit auf genomische DNA mit universellen Eubakterienprimern (16S rRNA F: TCCTACGGGAGGCAGCAGT und R: GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT).
  4. Herstellung der bakteriellen Suspension
    1. Messen Sie die bakterielle Lösung mit einem Spektralphotometer. Fügen Sie 1 OD (OD600) bakterielle Suspension in ein 1 ml Rohr. Zentrifugieren Sie die Suspension bei 5.000 x g für 5 min bei 4 °C.
    2. Entsorgen Sie den Überstand und fügen Sie 1 ml sterilen 1x PBS-Puffer zu 1,5 ml Rohr für Suspensionsfällung hinzu.
    3. Zentrifuge bei 5.000 x g für 5 min bei 4 °C; den Überstand zu entsorgen.
    4. Wiederholen Sie die Schritte 2.4.2 und 2.4.3.
    5. Fügen Sie dem bakteriellen Niederschlag 200 l sterilen 1x PBS-Puffer hinzu.
    6. Fügen Sie 600 l 10% Saccharoselösung, 200 l 10 mm ATP (die als Phagostimulans wirkt) und 200 l bakterielle Suspension in ein steriles 1,5 ml-Rohr geben. Mix durch Wirbel. Alternativ können Sie bakterielle Pellets in hitzeinaktiviertem Blut aussetzen.
    7. Zubereitung von wärmeinaktiviertem Blut
      1. Sammeln Sie frisches Blut mit einem gerinnungshemmenden Rohr.
      2. Nehmen Sie 2-3 ml frisches Blut. Zentrifuge bei 1.000 x g für 10 min bei 4 °C, um Plasma und Blutzellen zu trennen. Beachten Sie, dass das Blut während der Zentrifugation und Waschprozess verloren gehen; es ist notwendig, die Nutzung im Voraus zu berechnen.
      3. Das Plasma in ein neues 1,5 ml-Rohr einsammeln und bei 56 °C für 1 h wärmeinaktivieren.
      4. Fügen Sie 500 l sterilen 1x PBS-Puffer zu 1,5 ml Röhrchen für die Suspension von Blutzellen hinzu. Zentrifugieren Sie bei 1.000 x g für 10 min bei 4 °C und entsorgen Sie dann den Überstand.
      5. Wiederholen Sie Schritt 2.4.7.4 zweimal.
      6. Resuspend Blutzellen mit wärmeinaktiviertem Plasma, um wärmeinaktiviertes Blut zu erhalten.
      7. Befolgen Sie die Schritte 2.4.1 bis 2.4.4, um 1 OD-Bakteriengranat zu erhalten.
      8. Setzen Sie die mit 1 ml hitzeinaktiviertem Blut granulierten Bakterien wieder aus.
  5. Füttern Sie die Mücke mit Bakteriensuspension.
    1. Verhungern Sie die Mücken für 24 h, so dass Antibiotika verstoffwechseln, bevor Bakterien zu füttern.
    2. Montieren Sie das Membran-Zuführsystem.
    3. Versiegeln Sie die sterilisierte Feedereinheit mit einem Parafilm, alternativ einer Kollagenmembran.
    4. Setzen Sie einen Kunststoffring auf und fixieren Sie ihn mit Parafilm, um Reibungsbrüche während der Fütterung zu vermeiden.
    5. Fügen Sie die vorbereitete bakterielle Lösung langsam in die Feedereinheit ein. Beachten Sie, dass nur ein Brunnen der Zwei-Well-Feeder-Einheit mit der Lösung gefüllt werden kann und die Feedereinheit nur von der Reagenz-Abwurfseite abdeckt.
    6. Schließen Sie die Zuführeinheit an ein auf 37 °C vorgeheiztes Fütterungssystem an, das die menschliche Temperatur simuliert, um Mücken anzulocken. Legen Sie das Fütterungsgerät auf einen mit Mücken gefüllten Papierbecher und füttern Sie ihn 90 min.
    7. Nach der Fütterung die Mücken anästhesieren, indem Sie sie 3-5 min einer Temperatur von 4 °C unterziehen und die Mücken in einer eiskalten Petrischale anbesen.
    8. Wählen Sie die vollständig engorged Mücken für weitere Studien.

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Ergebnisse

Die Mittelguts von Mücken, die mit Antibiotika und ohne Antibiotika behandelt wurden, wurden zur DNA-Extraktion herausgenommen, und qPCR wurde mit universellen bakteriellen Primern durchgeführt. Abbildung 1 zeigt die Expression von bakteriellen 16S rRNA in der Kontrollgruppe und der Antibiotika-Behandlungsgruppe. Die Ergebnisse zeigen, dass etwa 98% der Darmbakterien entfernt wurden, und die Darmsterilisation von Penicillin und Streptomycin war erfolgreich.

Mit den beschrieben...

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Diskussion

Untersuchungen an Wirt-Mikroben-Wechselwirkungen haben ergeben, dass verschiedene Darmmikroben ihre Wirtsphysiologie über divergierende Mechanismen beeinflussen. Dieser Artikel stellt die Methode vor, um die jeweilige Rolle der Moskito-Darm-Mikrobe zu untersuchen, einschließlich der Sezieren von Mückenmittelgut, Kultivieren von kultivierbaren Darmbakterien, Antibiotika-Behandlung, und Wiedereinführung der Bakterien von Interesse.

Für eine erfolgreiche Antibiotikabehandlung müssen bei der Durch...

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (Grant No. 81902094, 81600497) und dem Science and Technology Plan Project der Provinz Hunan (2019RS1036) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Adenosin 5′-triphosphat DinatriumsalzhydratSigmaA2383Adenosin 5′-triphosphat Dinatriumsalzhydrat wurde zur Herstellung von Adenosintriphosphat (ATP) Standardlösungen verwendet
Aedes aegyptiWeibliche Mücken
AntikoagulanzienröhrchenBD Vacutainer363095Frisches Blut sammeln
ZentrifugenröhrchenSangon BiotechF601620-00101,5 ml, natürlich, graduiert, steril
Wattebällchen
Einweg-TaschentuchschleifstößelSangon BiotechF619072-000170 mm lang, konisch, blau, steril
Ethanol absolutPainiVerdünnen Sie es auf 75%
Ethanol PinzetteRWDF11029Dissektion
Hemotek Membran Zuführung SystemHemotekKomponenten des Fütterungssystems, einschließlich  Hemotek Temperaturregler, Dosierer-Gehäuse-Baugruppe, Metall-Dosierer montiert.
InkubatorschüttlerZQZY-78AN
ImpfösenSangon BiotechF619312-000110 μ l, Gelbes
LB Agar PulverSangon BiotechA507003Trypton 10,0 g, Hefeextrakt 5,0 g, NaCl 10,0 g, Agar 15,0 g.
LB Bouillon PulverSangon BiotechA507002Trypton 10,0 g, Hefeextrakt 5,0 g, NaCl 10,0 g.
MikroskopZeissStemi508
PappbecherPlace Moskito
ParafilmSangon BiotechF1040024 inx 125 ft
PetrischaleSangon BiotechF611203
Penicillin G Procainsalz hydratSangon BiotechA606248Weißes Pulver. Löslich in Wasser, löslich in Methanol, schwer löslich in Wasser, Ethanol
Single Channal PipettierGilson
StreptomycinsulfatSangon BiotechA610494Streptomycinsulfat ist ein Glucosamin-Antibiotikum, das die Synthese von prokaryotischen Proteinen stört.
SaccharoseSangon BiotechA502792Löslich in Wasser, Ethanol und Methanol, schwer löslich in Glycerin und Pyridin.
TIANamp Bakterien DNA KitTIANGENDP302Extrakt DNA 
Utility Fabric-Moskitonetz Weißer
Vortex-MischerScintic IndustriesS1-0246
1,5 ml EP-TubeSangon BiotechF600620
10X PBS-PufferSangon BiotechE607016Dieses Produkt ist eine 10-fache Lösung. Bitte vor Gebrauch 10 Mal verdünnen. Der pH-Wert liegt bei 7,4.

Referenzen

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