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Methodenartikel

In Vivo CRISPR/Cas9 Screening zur gleichzeitigen Bewertung der Genfunktion in Maushaut und Oralhöhle

6.4K Aufrufe

DOI:

10.3791/61693

2. November 2020

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine schnelle und direkte in vivo CRISPR/Cas9 Screening-Methodik mit Ultraschall-geführten in utero embryonalen lentiviralen Injektionen, um gleichzeitig die Funktionen mehrerer Gene in der Haut und Mundhöhle von immunkompetenten Mäusen zu bewerten.

Zusammenfassung

Genetisch veränderte Mausmodelle (GEMM) waren maßgeblich an der Beurteilung der Genfunktion, der Modellierung menschlicher Krankheiten und als präklinisches Modell zur Bewertung therapeutischer Wege beteiligt. Ihre zeit-, arbeits- und kostenintensive Natur schränkt jedoch ihren Nutzen für die systematische Analyse der Genfunktion ein. Jüngste Fortschritte in den Genom-Editing-Technologien überwinden diese Einschränkungen und ermöglichen die schnelle Generierung spezifischer Genstörungen direkt in bestimmten Mausorganen in multiplexierter und schneller Weise. Hier beschreiben wir eine CRISPR/Cas9-basierte Methode (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats), um Tausende von Gen-Knock-out-Klonen innerhalb des Epithels der Haut und der Mundhöhle von Mäusen zu erzeugen, und liefern ein Protokoll, das die Schritte beschreibt, die notwendig sind, um einen direkten in vivo   CRISPR-Bildschirm für Tumorsuppressorgene durchzuführen. Dieser Ansatz kann auf andere Organe oder andere CRISPR/Cas9-Technologien wie CRISPR-Aktivierung oder CRISPR-Inaktivierung angewendet werden, um die biologische Funktion von Genen während der Gewebehomöostase oder in verschiedenen Krankheitssituationen zu untersuchen.

Einleitung

Eine der Herausforderungen für die Krebsforschung in der postgenomischen Ära besteht darin, die riesige Menge an Genomdaten für kausale Genmutationen zu abbauen und Knoten im Gennetzwerk zu identifizieren, die therapeutisch anvisiert werden können. Während bioinformatische Analysen enorm dazu beigetragen haben, diese Ziele zu erreichen, ist die Etablierung effizienter In-vitro- und In-vivo-Modelle eine Voraussetzung, um die Komplexität biologischer Systeme und Krankheitszustände zu entschlüsseln und die Entwicklung von Arzneimitteln zu ermöglichen. Während herkömmliche transgene Mausmodelle ausgiebig für in vivo Krebsgenetik-Studien verwendet wurden, hat ihre kosten-,....

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Protokoll

Dieses Protokoll wurde in Übereinstimmung mit der IACUC der University of Toronto genehmigt und durchgeführt.

1. Entwerfen und Klonen von gepoolten CRISPR-Bibliotheken

  1. Wählen Sie 4-5 sgRNAs aus, die auf Mausgene von Interesse aus Ressourcen wie dem Broad Institute sgRNA Designer (https://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design) oder dem CHOPCHOP-Server (https://chopchop.cbu.uib.no) abzielen. Wählen Sie eine gleiche Anzahl von nicht-zielgerichteten sgRNAs aus z.B. Sanjana et al.9 aus, um eine gleich große gRNA-Bibliothek für nicht-zielgerichtete Steuerelemente zu generieren.
  2. <....

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Ergebnisse

Abbildung 1A zeigt das Design der Oligonukleotide zum Multiplexieren mehrerer benutzerdefinierter CRISPR-Bibliotheken auf kostengünstige Weise in einem einzigen 12k- oder 92k-Oligochip. Sobald die sgRNAs (blaue Farbe kodiert) ausgewählt sind, werden die Oligonukleotide mit Restriktionsstellen (orange farbene BsmBI) und bibliotheksspezifischen PCR-Primer-Paaren (grüne Farbe codiert) entworfen. Mehrere Bibliotheken können mit einer einzigartigen Kombination von Primerpaaren für Multiplexing in.......

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Diskussion

Die CRISPR/Cas9-Genombearbeitung wurde in In-vitro- und In-vivo-Studien häufig zur Untersuchung von Genfunktionen und zellulären Prozessen eingesetzt. Die meisten In-vivo-Studien verwenden CRISPR/Cas9-Gen-editierte Zellen, die in ein Tiermodell (Allograft oder Xenograft) eingepfropft wurden. Während dies ein leistungsfähiges Werkzeug ist, um Krebsgenetik und zelluläre Funktionen zu studieren, fehlt es immer noch an der einheimischen Gewebemikroumgebung und könnte Wund- und/oder Immunreaktionen hervorrufen.

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch ein Projektstipendium des Canadian Institute of Health Research (CIHR 365252), der Krembil Foundation und des Ontario Research Fund Research Excellence Round 8 (RE08-065) unterstützt. Sampath Kumar Loganathan ist Träger eines Stipendiums der Canadian Cancer Society (BC-F-16-31919).

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,45 Mikron FilterSigmaS2HVU02RE
12k oder 92kOligo Chip Customarray Inc. (Genscript)
15 cm ZellkulturplattenCorning
293FTInvitrogenR70007
293NTSystems BiosciencesLV900A-1
Alkalische PhosphataseNEBM0290L
AmplicillinFisher ScientificBP1760-25
ATPNEB9804S
BsmBINEBR0580L
Chromische DarmnahtCovidien
Tiefensequenzierung (Next-Seq oder Hi-Seq)Illumina
DNA-AufreinigungskitZymo ResearchD4008
DNAesy Blut und Gewebe DNA-ExtraktionskitQiagen69506
Endura elektrokompetente ZellenLucigen60242-1
GlaskapillarenDrummond3-000-203-G/X
HEK293T ZellenATCCCRL-3216
HochgeschwindigkeitszentrifugeBeckman CoulterMLS-50
LB AgarWisent Technologies800-011-LG
MikropipettenabzieherSutter InstrumentP97
MineralölSigmaM5904
Mini-Prep Plasmid KitFrogga BioPDH300
Maus SauerstoffanästhesiesystemVisual Sonics
Nanoject II MikromanipulatorDrummond
NEBuffer 3.1 ( Puffer für BsmBI)NEBR0580L
NadelschärferSutter InstrumentBV-10
Oligo Cleanup KitZymo researchD4060
PAGE gereinigte illumina SequenzierungsgrundierungIDT DNA
PEI (Polyethylenimin)Sigma408727-100ML
Permoplast Modelliermasse
Petrischale mit zentraler ÖffnungVisual Sonics
pMD2.GAddgene12259
psPAX2Addgene12260
Q5 Polymerase 2x MastermixNEBM0494L
Qubit Fluorometrische QuantifizierungInvitrogenQ33327
Halbkreisförmiger SilikonstopfenCorning
SilikonmembranVisual Sonics
T4 DNA-LigaseNEBM0202L
Ultra-ZentrifugenröhrchenBeckman Coulter344058
Vevo2000 UltraschallsystemVisual Sonics

Referenzen

  1. Beronja, S., Fuchs, E. RNAi-mediated gene function analysis in skin. Methods in Molecular Biology. 961, 351-361 (2013).
  2. Beronja, S., Livshits, G., Williams, S., Fuchs, E. Rapid functional dissection of genetic networks via tissue-specific transduct....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

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