Die Messung der Wnt-Expressionsniveaus ist unerlässlich, wenn es darum geht, neue therapeutische Ziele für Wnt zu identifizieren oder zu testen. Frühere Studien haben gezeigt, dass die kanonische Wnt-Signalgebung über einen dosisgesteuerten Mechanismus funktioniert, was die Notwendigkeit motiviert, die Wnt-Signalgebung in verschiedenen Zelltypen zu untersuchen und zu messen. Obwohl mehrere Reportermodelle vorgeschlagen wurden, um die physiologische Wnt-Expression darzustellen, beeinflusste entweder der genetische Kontext oder das Reporterprotein die Validität, Genauigkeit und Flexibilität dieser Werkzeuge stark. In dieser Arbeit werden Methoden zur Erfassung und Analyse von Daten beschrieben, die mit dem Axin2-mTurquoise2-Maus-Wnt-Reportermodell erhalten wurden, das ein mutiertes Axin2em1Fstl-Allel enthält. Dieses Modell ermöglicht die Untersuchung des endogenen kanonischen Wnt-Signalwegs in einzelnen Zellen über einen weiten Bereich der Wnt-Aktivität.
Dieses Protokoll beschreibt, wie die Aktivität von Axin2-mTurquoise2-Reportern mithilfe der Zellpopulationsanalyse des hämatopoetischen Systems in Kombination mit Zelloberflächenmarkern oder intrazellulärer β-Catenin-Färbung vollständig erfasst werden kann. Diese Verfahren dienen als Grundlage für die Implementierung und Reproduktion in anderen Geweben oder Zellen von Interesse. Durch die Kombination von fluoreszenzaktivierter Zellsortierung und konfokaler Bildgebung können unterschiedliche kanonische Wnt-Expressionsniveaus sichtbar gemacht werden. Die empfohlenen Mess- und Analysestrategien liefern quantitative Daten über die Fluoreszenzexpressionsniveaus für eine präzise Beurteilung des kanonischen Wnt-Signalwegs. Diese Methoden sind nützlich für Forscher, die das Axin2-mTurquise2-Modell für kanonische Wnt-Expressionsmuster verwenden möchten.