Das Protokoll stellt eine Methode zur Kultivierung und Verarbeitung von lingualen Organoiden vor, die aus Geschmacksstammzellen gewonnen werden, die aus der hinteren Geschmackspapille erwachsener Mäuse isoliert wurden.
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Methodenartikel
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Das Protokoll stellt eine Methode zur Kultivierung und Verarbeitung von lingualen Organoiden vor, die aus Geschmacksstammzellen gewonnen werden, die aus der hinteren Geschmackspapille erwachsener Mäuse isoliert wurden.
Der Geschmackssinn wird durch Geschmacksknospen auf der Zunge vermittelt, die sich aus sich schnell erneuernden Geschmacksrezeptorzellen (TRCs) zusammensetzen. Dieser kontinuierliche Umsatz wird von lokalen Vorläuferzellen angetrieben und macht die Geschmacksfunktion anfällig für Störungen durch eine Vielzahl von medizinischen Behandlungen, was wiederum die Lebensqualität stark beeinträchtigt. Daher ist die Untersuchung dieses Prozesses im Kontext der medikamentösen Behandlung von entscheidender Bedeutung, um zu verstehen, ob und wie die Funktion des Geschmacksvorläufers und die TRC-Produktion beeinflusst werden. Angesichts der ethischen Bedenken und der begrenzten Verfügbarkeit von menschlichem Geschmacksgewebe werden häufig Mausmodelle verwendet, die ein ähnliches Geschmackssystem wie der Mensch haben. Im Vergleich zu In-vivo-Methoden, die zeitaufwendig, teuer und für Hochdurchsatzstudien nicht nutzbar sind, können murine linguale Organoide experimente mit vielen Replikaten und weniger Mäusen schnell durchführen. Hier wurden zuvor veröffentlichte Protokolle angepasst und eine standardisierte Methode zur Erzeugung von Geschmacksorganoiden aus Geschmacksvorläuferzellen vorgestellt, die aus der Circumvallat-Papille (CVP) erwachsener Mäuse isoliert wurden. Geschmacksvorläuferzellen im CVP exprimieren LGR5 und können mittels EGFP-Fluoreszenz-aktivierter Zellsortierung (FACS) von Mäusen isoliert werden, die ein Lgr5EGFP-IRES-CreERT2-Allel tragen. Sortierte Zellen werden auf ein Matrix-Gel-basiertes 3D-Kultursystem auf plattiert und 12 Tage lang kultiviert. Organoide dehnen sich für die ersten 6 Tage der Kulturperiode durch Proliferation aus und treten dann in eine Differenzierungsphase ein, in der sie alle drei Geschmackszelltypen zusammen mit Nicht-Geschmacksepithelzellen erzeugen. Organoide können bei der Reifung am Tag 12 oder jederzeit während des Wachstumsprozesses für die RNA-Expression und immunhistochemische Analyse entnommen werden. Die Standardisierung von Kulturmethoden zur Herstellung von lingualen Organoiden aus adulten Stammzellen wird die Reproduzierbarkeit verbessern und linguale Organoide als leistungsfähiges Arzneimittel-Screening-Werkzeug im Kampf gegen Patienten mit Geschmacksstörungen fördern.
Bei Nagetieren sind linguale Geschmacksknospen in fungiformen Papillen untergebracht, die anterior verteilt sind, bilaterale Blattpapillen nach dem Hinterteil sowie eine einzelne zirkumvallate Papille (CVP) an der posterodorsalen Mittellinie der Zunge1. Jede Geschmacksknospen besteht aus 50-100 kurzlebigen, sich schnell erneuernden Geschmacksrezeptorzellen (TRCs), zu denen gliaartige Unterstützungszellen vom Typ I, Zellen vom Typ II, die süße, bittere und Umami erkennen, und Typ III-Zellen, die saure2,3,4erkennen , umfassen. Im CVP der Maus produzieren....
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Alle Tierversuche wurden in einer AAALAC-akkreditierten Einrichtung in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Versuchstieren, dem Tierschutzgesetz und der Richtlinie des öffentlichen Gesundheitsdienstes durchgeführt und vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) am Anschutz Medical Campus der University of Colorado genehmigt. Lgr5EGFP-IRES-CreERT2 Mäuse, die in diesem Protokoll verwendet werden, stammen vom Jackson Laboratory, Stock No. 008875.
HINWEIS: Die folgenden Schritte sollten vor Beginn abgeschlossen werden, um einen reibungslosen und rechtzeitigen Ablauf des Protokolls zu gewährl....
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Mäuse haben ein CVP, das sich posterior auf der Zunge befindet, aus dem LGR5+ Stammzellen isoliert werden können (Abbildung 1A, Black Box). Die Injektion einer Enzymlösung unter und um das CVP (Abbildung 1B) führt zu einer leichten Schwellung des Epithels und einer Verdauung des Bindegewebes. Eine ausreichende Verdauung wird nach einer 33-minütigen Inkubation erreicht, die eine einfache Trennung des CVP-Epithels vom darunter liegenden.......
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Hier wird eine effiziente und leicht wiederholbare Methode zur Kultivierung, Aufrechterhaltung und Verarbeitung von lingualen Organoiden aus adulten Mausgeschmacksstammzellen berichtet. Es wurde festgestellt, dass die Verwendung von drei CVPs von 8 bis 20 Wochen alten Lgr5 -EGFP-Mäusen ausreicht, um ~ 10.000 GFP+ -Zellen für den experimentellen Einsatz zu erhalten, was zu 50 Wells mit einer Dichte von 200 Zellen pro Well in 48-Well-Platten führt. Die Entfernung von CVP-Grabenepithelien wird optimiert,.......
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Die Autoren haben nichts preiszugeben.
Die Autoren danken Dr. Peter Dempsey und Monica Brown (University of Colorado Anschutz Medical Campus Organoid and Tissue Modeling Shared Resource) für die Bereitstellung von WNR-konditionierten Medien und wertvollen Diskussionen. Wir danken auch dem University of Colorado Cancer Center Cell Technologies und Flow Cytometry Shared Resources, insbesondere Dmitry Baturin, für die Expertise in der Zellsortierung. Diese Arbeit wurde finanziert durch: NIH/NIDCD R01 DC012383, DC012383-S1, DC012383-S2 und NIH/NCI R21 CA236480 an LAB und R21DC016131 und R21DC016131-02S1 an DG und F32 DC015958 an EJG.
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Antikörper | |||
| Alexa Fluor 546 Esel Anti Ziegen IgG | Molekulare Sonden | A11056, RRID: AB_142628 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 546 Ziege Anti Kaninchen IgG | Molekulare Sonden | A11010, RRID:AB_2534077 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 568 Ziege Anti Meerschweinchen | IgG Invitrogen | A11075, RRID:AB_2534119 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 647 Esel Anti Kaninchen IgG | Molekulare Sonden | A31573, RRID:AB_2536183 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 647 Ziege Anti Ratte | IgG Molekulare Sonden | A21247, RRID:AB_141778 | 1:2000 |
| DAPI (für FACS) | Thermo Fischer | 62247 | |
| DAPI (für Immunhistochemie) | Invitrogen | D3571, RRID:AB_2307445 | 1:10000 |
| Ziege Anti-CAR4 | Forschung & Forschung D Systems | AF2414, RRID:AB_2070332 | 1:50 |
| Meerschweinchen anti-KRT13 | Acris Antikörper | BP5076, RRID:AB_979608 | 1:250 |
| Kaninchen anti-GUSTDUCIN | Santa Cruz Biotechnology Inc. | sc-395, RRID:AB_673678 | 1:250 |
| Kaninchen Anti-NTPDASE2 | CHUQ | mN2-36LI6, RRID:AB_2800455 | 1:300 |
| Rat anti-KRT8 | DSHB | TROMA-IS, RRID: | 1:100 |
| Ausrüstung | |||
| 2D Wippe | Benchmark Scientific Inc. | BR2000 | |
| 3D Rotator | Lab-Line Instruments | 4630 | |
| Big-Digit Timer/Stoppuhr | Fisher Scientific | S407992 | |
| Zentrifuge | Eppendorf | 5415D | |
| CO2 Tank | Airgas | CD USP50 | |
| FormaTM Series 3 Water Jackeed CO2 Inkubator | Thermo Scientific | 4110 | 184 L, poliert Edelstahl |
| Stahl Incucyte | Sartorius | Modell: S3 | Cancer Center Cell Technologies Shared Resource, University of Colorado Anschutz Medical Campus |
| MoFlo XDP100 | Cytomation Inc | Modell: S13211997 | Gates Center Durchflusszytometrie Core, University of Colorado Anschutz Medical Campus |
| Orbital Shaker | New Brunswick Scientific | Excella E1 | |
| Real-Time PCR System | Applied Biosystems | 4376600 | |
| Kühlzentrifuge | Eppendorf | 5417R | |
| Spektralphotometer | Thermo Scientific | ND-1000 | |
| Stereomikroskop | Zeiss | Stemi SV6 | |
| Thermocycler | Bio-Rad | 580BR | |
| Vortex | Fisher Scientific | 12-812 | |
| Wasserbad | Präzision | 51220073 | |
| Media | |||
| A83 01 | Sigma | SML0788-5MG | Stammkonzentration 10 mM, final Konzentration 500 nM |
| Advanced DMEM/F12 | Gibco | 12634-010 | |
| B27 Ergänzung | Gibco | 17504044 | Stammkonzentration 50X, Endkonzentration 1X |
| Gentamicin | Gibco | 15750-060 | Stammkonzentration 1000X, Endkonzentration 1X |
| Glutamax | Gibco | 35050061 | Stammkonzentration 100X, Endkonzentration 1X |
| HEPES | Gibco | 15630080 | Stammkonzentration 100X, Endkonzentration 1X |
| Maus EGF | Peprotech | 315-09-1MG | Stammkonzentration 500 & Mikro; g/mL, Endkonzentration 50 ng/mL |
| Murine Noggin | Peprotech | 250-38 | Stammkonzentration 50 &μm; g/mL, Endkonzentration 25 ng/mL |
| N-Acetyl-L-Cystein | Sigma | A9165 | Stammkonzentration 0,5 M, Endkonzentration 1 mM |
| Nicotinamid | Sigma | N0636-100g | Stammkonzentration 1 M, Endkonzentration 1 mM |
| Pen/Strep | Gibco | 15140-122 | Stammkonzentration 100X, Endkonzentration 1X |
| Primocin | InvivoGen | ant-pm-1 | Bestandskonzentration 500X, Endkonzentration 1X |
| SB202190 | F& D Systems | 1264 | Stammkonzentration 10 mM, Endkonzentration 0,4 & Mikro; M |
| WRN Konditionierte Medien | Von Dempsey Lab erhalten (AMC Organoid and Tissue Modeling Share Resource). Abgeleitet von L-WRN (ATCC® CRL-3276&Handel;) Zellen | ||
| Y27632 Dihydochlorid 10ug | APExBIO | A3008-10 | Stammkonzentration 10 mM, Endkonzentration 10 & Mikro; M |
| Other | |||
| 1 ml TB Spritze | BD Spritze | 309659 | |
| 2-Mercaptoethanol, min. 98% | Sigma | M3148-25ML | β-Mercaptoethanol |
| 2,0 mL Mikrozentrifugenröhrchen | USA Scientific | 1420-2700 | |
| 48-Well-Platten | Thermo Scientific | 150687 | |
| 5 3/4 Zoll Pasteur Pipets | Fisherbrand | 12-678-8A | |
| Albumin aus Rinderserum (BSA) | Sigma Life Science | A9647-100G | |
| Puffer RLT Lysepuffer | QIAGEN | 1015750 | |
| Zellwiederherstellungslösung | Corning | 354253 | |
| Cohan-Vannas Federschere | Fine Science Tools | 15000-02 | |
| Kollagenase aus Clostridium histolyticum, Typ I | Sigma Life Science | C0130-1G | |
| Cultrex RGF BME, Typ 2, Pathclear | R& D Systems | 3533-005-02 | Matrigel |
| Dispase II (neutrale Protease, Grad II) | Sigma-Aldrich (Roche) | 4942078001 | |
| Einwegfilter | Sysmex | 04-0042-2316 | |
| Dulbecco' s Phosphatgepufferte Kochsalzlösung pH 7,4 (1X) (Ca2+ & Mg2+ frei) | Gibco | 10010-023 | |
| Dulbecco' s Phosphatgepufferte Kochsalzlösung mit Ca2+ & Mg2+ | Sigma Life Sciences | D8662-500ML | |
| Dumont #5 Pinzette | Fine Science Tools | 11252-30 | |
| EDTA, 0,5M (pH 8,0) | Promega | V4231 | |
| Elastase Lyophilisiert | Worthington Biochemisches | LS002292 | |
| Extra feine Bonn Schere | Fine Science Tools | 14084-08 | |
| Fötales Rinderserum (FBS) | Gibco | 26140-079 | |
| Fluoromount G | SouthernBiotech | 0100-01 | |
| HEPES Solution | Sigma Life Science | H3537-100ML | |
| HyClone Tryspin 0,25% + EDTA | Thermo Scientific | 25200-056 | |
| iScript cDNA Synthesis Kit | Bio-Rad | 1706691 | |
| Modelliermasse, Grau | Sargent Art | 22-4084 | |
| Nadel | BD Spritze | 305106 | |
| Normales Eselsserum | Jackson ImmunoResearch | 017-000-121 | |
| Normales Ziegenserum | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | |
| Paraformaldehyd | Sigma-Aldrich | 158127 | |
| PowerSYBR Green PCR Master Mix | Angewandte Biosysteme | 4367659 | |
| RNeasy Micro Kit | QIAGEN | 74004 | |
| Safe-Lock Röhrchen 1,5 mL | Eppendorf | 022363204 | |
| Natriumchlorid | Fisher Chemical | 7647-14-5 | |
| Natriumphosphat zweibasisch wasserfrei | Fisher Chemical | 7558-79-4 | |
| Natriumphosphat monobasisch wasserfrei | Fisher Bioreagenzien | 7558-80-7 | |
| SuperFrost Plus Objektträger | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| Chirurgische Schere - Sharp | Fine Science Tools | 14002-14 | |
| Triton X-100 | Sigma Life Science | T8787-100ML | |
| VWR Mikro-Deckglas | VWR | 48366067 | 22x22mm |
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