Vierfach-Schachbrett: Eine Modifikation des dreidimensionalen Schachbretts zur Untersuchung von Arzneimittelkombinationen

Mit der Zunahme der Resistenz aufgrund des übermäßigen Einsatzes und Missbrauchs von Antibiotika^1,2ist die Notwendigkeit, neue Medikamente und Mittel zur Behandlung bakterieller Infektionen zu entwickeln, entscheidend geworden. Neue Ansätze wie die Entwicklung neuer Medikamente sind sehr wichtig, um die Resistenzkrise zu überwinden. Die pharmaindustrie ist jedoch nicht daran interessiert, neue antimikrobielle Wirkstoffe zu entwickeln. Darüber hinaus werden sich Bakterien, wenn neue Medikamente entwickelt werden, weiterentwickeln und Resistenzen gegen diese neuen Medikamente entwickeln^3,4. Somit wird das Problem der Resistenz nicht gelöst, was die Notwendigkeit eines anderen Ansatzes zu einem Muss macht, das in Betracht gezogen und untersucht werden sollte, um bakterielle Resistenzen zu überwinden.

Die Arzneimittelkombination ist ein sehr wichtiges Konzept zur Behandlung bakterieller Infektionen, hauptsächlich solche, die durch multiresistente Erreger verursacht werden^5,6. Es verringert den Verlauf der Behandlung, verringert die verabreichte Dosis; So hilft die Verringerung der Toxizität des gegebenen Arzneimittels, die Rate der Resistenzentwicklung zu verringern und sensibilisiert in gewisser Weise die Bakterien für die gegebenen Arzneimittel, wie im Konzept der Kollateralempfindlichkeit^5,7^,8,9beschrieben .

Die Entwicklung von Resistenzen gegen ein Medikament erfordert eine einzige Mutation; Die Entwicklung von Resistenzen gegen eine Kombination von Medikamenten, die auf mehrere Signalwege abzielen, erfordert jedoch mehrere unabhängige Mutationen, die durch diese Kombination verlangsamt werden. Ein Beispiel für eine verminderte Resistenz während der Kombinationstherapie ist die verminderte Resistenzrate gegen Rifampin bei Mycobacterium Tuberculosis¹⁰. Ein weiteres Beispiel ist eine Studie von Gribble et al., die zeigte, dass die Rate des Auftretens resistenter Stämme bei Patienten, die Piperacillin allein einnehmen, höher ist als bei Patienten, die eine Kombination aus Carboxypenicillin und Aminoglycosid¹⁰einnehmen. Studien haben gezeigt, dass die Entwicklung von Resistenzen gegen Aminoglykoside in sich entwickelnden Bakterien diese Stämme empfindlich gegenüber verschiedenen anderen Medikamenten machte⁵. Die Kombination zwischen dem Beta-Lactam-Klasse-Medikament Amoxicillin und dem Lactamase-Inhibitor Clavulansäure zeigte Erfolge bei der Behandlung resistenter Bakterienstämme⁸.

Die Verkürzung der Behandlungszeit ist ein guter Vorteil, der sich aus Arzneimittelkombinationen ergibt. Zum Beispiel wird eine Therapie von kombiniertem Penicillin oder Ceftriaxon mit Gentamicin für 2 Wochen die gleiche Wirksamkeit von Penicillin oder Ceftriaxon allein geben, wenn es für 4 Wochen¹¹gegeben wird. Die Kombination von Medikamenten ermöglicht die Verwendung niedrigerer Dosierungen von Medikamenten, die nicht wirksam sind, wenn sie allein verabreicht werden, wie die Sub-MICs. Das Beispiel von Sulfonamiden kann gegeben werden, wenn die Verwendung von Tripelsulfonamiden bei niedrigeren Dosen die Toxizität minimiert, die bei der Verwendung unlöslicher Sulfonamide in vollen Dosen entsteht¹².

So wird die Verringerung der verabreichten Dosierung und der Behandlungszeit schließlich die Toxizität der Medikamente auf dem Körper verringern. Die Idee, Methoden zu entwickeln, um die Wechselwirkung zwischen kombinierten Medikamenten zu bewerten, ist sehr wichtig. In einer Studie zeigten die Ergebnisse, dass die Kombinationstherapie bei der Behandlung resistenter Arten von Acinetobacter und P. aeruginosa wirksamerist⁸.

Medikamente in Kombination verern
Es gibt verschiedene Methoden, mit denen wir Arzneimittelkombinationen untersuchen können, wie die Schachbrettmethode, die Time-Kill-Kurvenmethode und die E-Testmethode¹³. Die Schachbrettmethode kann alle möglichen Kombinationen zwischen den beiden fraglichen Medikamenten in einem Experiment selbst untersuchen. Darüber hinaus wurde es entwickelt, um eine Kombination von drei Medikamenten¹⁴zu untersuchen. Nun erweitern wir dies, um eine Kombination von vier Medikamenten hauptsächlich zur Behandlung von multiresistenten Krankheitserregern zu untersuchen.

Der Time-Kill-Curve-Assay wird normalerweise durchgeführt, um die bakterizide Wirkung eines bestimmten Arzneimittels zu testen. Es wurde auch verwendet, um die Wirkung von Arzneimittelkombinationen zu testen, bei denen mehrere Medikamente in bestimmten Konzentrationen kombiniert werden. Dieses Protokoll erfordert die Herstellung mehrerer steriler Röhrchen oder Becher, in denen wir in jede Tasse die Brühe, die Kombination von Medikamenten und den erforderlichen Bakterienstamm hinzufügen. Nach Inkubation und Aufzeichnung der optischen Dichte zu mehreren Zeitpunkten werden die Ergebnisse mit der normalen Wachstumsrate der verwendeten Sorte verglichen, um zu sehen, ob die Wachstumsrate zugenommen, abgenommen oder sich nicht verändert hat¹³.

Die E-Test-Methode wird normalerweise durchgeführt, um auf die minimale hemmende Konzentration (MIC) zu testen, bei der ein Streifen, der eine Gradientenkonzentration des betreffenden Arzneimittels enthält, auf eine geimpfte Platte gelegt wird. Es wurde auch verwendet, um die Kombination zwischen zwei Medikamenten zu testen, bei denen zwei Streifen senkrecht zur Platte hinzugefügt werden, die sich an ihren MICs¹³schneiden.

Laut Literatur gibt es keinen Goldstandard, um Synergien zu definieren und zu untersuchen; Daher ist es schwierig zu beurteilen, welche der Methoden, die zur Untersuchung der Kombination verwendet werden, besser ist und welche bessere und zuverlässigere Ergebnisse liefert, hauptsächlich¹³. Der Time-Kill-Assay ist jedoch arbeitsintensiv, zeitaufwendig und teuer^15,16, während die E-Test-Methode entwickelt wurde, um nur eine Kombination zwischen zwei Medikamenten zu untersuchen. Checkerboard kann alle möglichen Kombinationen zwischen den beiden getesteten Medikamenten untersuchen und deshalb wurde diese Technik ausgewählt, um entwickelt zu werden.

1. Vorbereitungsschritte

1. Muller-Hinton-Brühe (MHB) zubereiten, indem Sie 25 g MH-Brühe zu 1 L destilliertem Wasser geben und mischen. Autoklav bei 121 °C für 2,5 h. Anschließend lagern Sie die autoklavierten Medien bei Raumtemperatur oder im Kühlschrank.
2. Subkulturieren Sie die betreffenden Bakterien (E. coli ESBL) auf dem Agarmedium mit der Vier-Quadranten-Streifenmethode und inkubieren Sie über Nacht bei 37 °C.
   1. Nehmen Sie mit einer sterilen Schlaufe eine Kolonie und verteilen Sie sie in der ersten Hälfte der MacConkey-Agarplatte, indem Sie enge parallele Streifen machen.
   2. Verteilen Sie mit der Schleife die Bakterien im zweiten Quadranten, indem Sie sie aus dem ersten Quadranten streifen.
   3. Verlängern Sie vom zweiten Quadranten aus die Streifen im dritten Quadranten mit engen parallelen Streifen.
   4. Verbreiten Sie die Bakterien in der Mitte des vierten Quadranten, indem Sie sie aus dem dritten Quadranten streifen.

2. Vorbereitung des Panels

1. Platzieren Sie vier 96-Well-Platten nebeneinander, um ein Quadrat zu bilden. Kleben Sie ihren Boden mit einem Band zusammen.
2. Wiederholen Sie diesen Schritt, um vier Panels mit jeweils 4 Platten zu erhalten und sie A1, A2, A3 und A4 zu nennen.
3. 50 μL MH-Brühe in die Vertiefungen zwischen Spalte 2 und Spalte 11 in den 16 96-Well-Platten der vier Paneele geben.
4. Fügen Sie 200 μL MH-Brühe in die Vertiefung H12 ein, die als Negativkontrollbohrung in den 16 96-Well-Platten der vier Panels dient.
5. Fügen Sie 150 μL MH-Brühe zu den Vertiefungen A1 und H1 hinzu, die als Positivkontrollbrunnen in den 16 96-Well-Platten der vier Panels dienen.

3. Medikament 1, Cefotaxim, serielle Verdünnung

1. In ein konisches Röhrchen werden 15 ml steriles_dH2O gegeben.
   1. Berechnen Sie das Volumen, das aus der Stammlösung des Arzneimittels nach der Formel_C1V1 =_{C2 V2}entfernt werden_soll. Somit ist_V1 = (C₂ x 15 mL) / C₁.
      HINWEIS: In unserem Fall beträgt die Cefotaxim-Stammlösung 10⁵ μg / ml und C₂ 256 μg / ml; somit_V1 = 38,4 μL.
2. Entfernen Sie das berechnete Volumen aus den 15 ml sterilem dH₂O und fügen Sie dann das Medikament hinzu.
3. 50 μL der hergestellten Wirkstofflösung werden in jede Vertiefung in Spalte 11 und Spalte 12 außer H12 pipetten.
4. Beginnen Sie die serielle Verdünnung, indem Sie 50 μL aus Spalte 11 entfernen und in die entsprechenden Vertiefungen in Spalte 10 und dann von 10 bis zum Erreichen von Spalte 2 geben, wo die 50 μL aus Spalte 2 verworfen werden.
5. Wiederholen Sie die Schritte 3.4 und 3.5 für alle 16 96-Well-Platten der vier Panels.

4. Medikament 2, Amkacin, serielle Verdünnung

1. In ein konisches Röhrchen werden 10 ml steriles_dH2O gegeben.
2. Berechnen Sie das Volumen, das aus der Stammlösung des Arzneimittels nach der Formel_C1V1 =_{C2 V2}entfernt werden_soll. Somit ist_V1 = (C₂ x 10 mL) / C₁.
   HINWEIS: In unserem Fall beträgt die Amikacin-Stammlösung 10³ μg/ml und_C2 64 μg/ml; somit_V1 = 64 μL.
3. Entfernen Sie das berechnete Volumen aus den 10 ml sterilem dH₂O und fügen Sie dann das Medikament hinzu.
4. Nehmen Sie acht separate 96-Well-Platten.
5. Zu jeder Platte werden 100 μL MHB zu den Vertiefungen zwischen den Reihen G und B hinzugefügt.
6. 100 μL der zuvor hergestellten Wirkstoff-2-Lösung in die Vertiefungen der Reihe G geben.
7. Verdünnen Sie seriell von Zeile G nach Reihe B, indem Sie 100 μL aus jeder Vertiefung nehmen und schließlich die 100 μL aus den Vertiefungen von Reihe B verwerfen.
8. Wiederholen Sie die Schritte 4.5, 4.6 und 4.7, um acht Platten vorzubereiten.

5. Übertragung von Medikament 2 auf die vier Panels

1. Pipetten Sie 50 μL des Arzneimittels 2 aus den Vertiefungen zwischen den Reihen G und B in die entsprechenden Vertiefungen in jeder Platte in den vier Paneelen. Eine vorbereitete 96-Well-Platte enthält 100 μL Medikament 2, was für zwei Platten in einem Panel ausreicht.

6. Arzneimittel 3, Levofloxacin, Zusatz

1. Zu vier verschiedenen konischen Röhrchen werden 14 ml steriles_dH2Ohinzugefügt.
2. Berechnen Sie das Volumen, das aus der Stammlösung des Arzneimittels nach der Formel_C1V1 =_{C2 V2}entfernt werden_soll. Somit ist_V1 = (C₂ x 14 mL) / C₁.
   HINWEIS: In unserem Fall wird Levofloxacin in vier verschiedenen Konzentrationen aus einer Stammlösung von 5 x 10³ μg/ml hergestellt.
   C₁ = 2 μg/ml, V₁ = 5,6 μL
   _C2 = 4 μg/ml,_V1 = 11,2 μL
   _C3 = 8 μg/ml, V₁ = 22,4 μL
   _C4 = 16 μg/ml, V₁ = 44,8 μL
3. Entfernen Sie das berechnete Volumen aus den 14 ml sterilem dH₂O aus jedem Röhrchen und fügen Sie dann das Medikament hinzu.
4. Nach der Herstellung der erforderlichen Konzentrationen des dritten Arzneimittels nehmen Sie 50 μL und fügen Sie es den entsprechenden Vertiefungen zwischen den Reihen B und G und den Spalten 2 und 12 in der entsprechenden Platte in jeder Platte hinzu, wobei C1 den vier P1-Platten in den vier Platten entspricht, C2 entspricht den vier P2-Platten in den vier Platten C3 entspricht den vier P3-Platten in den vier Panels und C4 entspricht den vier P4-Platten in den vier Panels.

7. Arzneimittel 4, Trimethoprim-Sulfamethoxazol, Zusatz

1. In ein konisches Röhrchen werden 14 ml steriles_dH2O gegeben.
2. Berechnen Sie das Volumen, das aus der Stammlösung des Arzneimittels nach der Formel_C1V1 =_{C2 V2}entfernt werden_soll. Somit ist_V1 = (C₂ x 14 mL) / C₁.
   HINWEIS: In unserem Fall wird Trimethoprim-Sulfamethoxazol in vier verschiedenen Konzentrationen aus einer Stammlösung von 48 x 10³ μg/ml hergestellt.
   _C1 = 512 μg/ml, V₁ = 149,33 μL
   _C2 = 1024 μg/ml, V₁ = 298,66 μL
   _C3 = 2048 μg/ml, V₁ = 597,33 μL
   C₄ = 4096 μg/ml, V₁ = 1 194,66 μL
3. Entfernen Sie das berechnete Volumen aus den 14 ml sterilem dH₂O jedes Röhrchens und fügen Sie dann das Medikament hinzu.
4. Nach der Vorbereitung der erforderlichen Konzentrationen des vierten Arzneimittels nehmen Sie 50 μL und fügen Sie es den entsprechenden Vertiefungen zwischen den Reihen B und G und den Spalten 2 und 12 in den vier Platten des entsprechenden Panels hinzu, wobei C1 Panel 1, C2 Panel 2, C3 Panel 3 und C4 Panel 4 entspricht.

8. Herstellung und Zugabe von bakteriellem Inoculum E. coli ESBL

1. Übertragen Sie mit einer sterilen Schleife eine Kolonie des Bakterienisolats E. coli ESBL, das zuvor auf einer Platte kultiviert wurde, in 2 ml steriles MHB und Wirbel.
2. Überprüfen Sie die Trübung, wo sie 0,5 McFarland mit einem Densitometer betragen sollte.
3. Fügen Sie 80 ml sterile MH-Brühe in einen sterilen Urinbecher hinzu.
4. Bakterielles Inokum aus dem 0,5 McFarland Inokum in den Urinbecher nach_C1V₁ =_C2V2hinzufügen, wobei_V1 = (10⁶ x 80 ml) / 10⁸ = 800 μL.
5. Pipette 50 μL der Inokkulumlösung 10⁶ KBE/ml in jede Vertiefung außer H12, die die Sterilitätskontrollbohrung ist.
6. Inkubieren Sie die Platten bei 37 °C über Nacht.
7. Nach der Inkubation 50 μL Iodotetrazolium hinzufügen, um das Wachstum in den Vertiefungen aufzuzeichnen.

9. Protokoll für die FIC-Vorlage (Supplemental File)

1. Schreiben Sie die höchste Konzentration von Medikament 1 (Cefotaxim) in die gelbe Zelle in Panel A.
2. Schreiben Sie die höchste Konzentration von Medikament 2 (Amikacin) in die gelbe Zelle in Panel B.
3. Schreiben Sie die höchste Konzentration von Medikament 3 (Levofloxacin) in die gelbe Zelle in Panel C.
4. Schreiben Sie die höchste Konzentration von Medikament 4 (Trimethoprim-Sulfamethoxazol) in Panel D.
5. Verfolgen Sie die rote Linie (Growth/no Growth interface), indem Sie die Bohrbrunnen mit Wachstum rot hervorheben.
6. Schreiben Sie das MIC von Medikament 1 in die Tabelle von Medikament 1 (ATB1).
7. Schreiben Sie das MIC von Medikament 2 in die Tabelle von Medikament 2 (ATB2).
8. Schreiben Sie das MIC von Medikament 3 in die Tabelle von Medikament 3 (ATB3).
9. Schreiben Sie das MIC von Medikament 4 in die Tabelle von Medikament 4 (ATB4).
10. So berechnen Sie FIC für ATB1
    1. Bestimmen Sie die Vertiefungen auf der Schnittstelle Wachstum/kein Wachstum.
    2. Doppelklicken Sie in Tabelle ATB1 auf die Zelle neben FIC1 und ziehen Sie die gelbe Zelle links neben Bedienfeld A an die erste ausgewählte Vertiefung.
    3. Wiederholen Sie Schritt 9.10.2 für jede ausgewählte Vertiefung, bei der Vertiefung 1 FIC1, Vertiefung 2 FIC2 usw. entspricht.
11. So berechnen Sie den FIC für ATB2
    1. Doppelklicken Sie in tabelle ATB2 auf die Zelle neben FIC1 und ziehen Sie die gelbe Zelle links neben Feld B zur ersten vorausgewählten Vertiefung.
    2. Wiederholen Sie Schritt 9.11.1 für jede vorausgewählte Vertiefung.
12. So berechnen Sie den FIC für ATB3
    1. Doppelklicken Sie in Tabelle ATB3 auf die Zelle neben FIC1 und ziehen Sie die gelbe Zelle links neben Bedienfeld C zur ersten vorausgewählten Vertiefung.
    2. Wiederholen Sie Schritt 9.12.1 für jede vorausgewählte Vertiefung.
13. So berechnen Sie den FIC für ATB4
    1. Doppelklicken Sie in Tabelle ATB4 auf die Zelle neben FIC1 und ziehen Sie die gelbe Zelle links neben Feld D zur ersten vorausgewählten Vertiefung.
    2. Wiederholen Sie Schritt 9.13.1 für jede vorausgewählte Vertiefung.
14. Summieren Sie in der Tabelle atB1+2+3+4 automatisch den FIC1 jedes ATB. Dasselbe gilt für die anderen FICs (FIC2, FIC3 usw.).
    1. Doppelklicken Sie in der Zelle, die FIC enthält und gelb hervorgehoben ist, darauf und wählen Sie die summierten ΣFICs aus der Tabelle ATB1+2+3+4 aus.
15. Wiederholen Sie diese Schritte für jedes der neun Blätter, die die neun Blätter darstellen.
    HINWEIS: Im Blatt FIC all zeigt die Tabelle den endgültigen summierten FIC mit der Interpretation des erhaltenen Wertes.

10. MIC-Bestimmung mit dem Mikrodilutionsassay für die vier Medikamente

1. Kennzeichnen Sie vier verschiedene Zeilen mit der Abkürzung jedes getesteten Medikaments. Zum Beispiel CTX für Cefotaxim, AMK für Amikacin, LEVO für Levofloxacin und SXT für Trimethoprim-Sulfamethoxazol.
2. 200 μL sterile Muller Hinton Brühe in Vertiefung Nummer 1 und Vertiefung Nummer 12 in jeder verwendeten Reihe pipetten. Bohrfach Nummer 12 wird als Negativkontrollbrunnen dienen.
3. 100 μL sterile Muller Hinton Brühe in die Vertiefungen 2 bis 11 in jeder verwendeten Reihe pipetten.
4. Berechnen Sie das Volumen jedes zuzugesetzten Arzneimittels mit der Formel_C1V1 =_C2V2. Somit ist V₁ = (C₂ x 4 x V₂) / C₁. V₂ ist das Endvolumen in den Bohrungen, das 200 μL beträgt, C₁ ist die Konzentration der Stammlösung und_C2 ist die Anfangskonzentration, die wir in der ersten Bohrung haben müssen.
   HINWEIS: Hier verwenden wir Folgendes:
   Cefotaxim:_C1 = 10⁵ μg/ml, wobei wir es auf 10⁴ μg/ml verdünnen,_C2 = 256 μg/ml; somit_V1 = 20,48 μL
   Amikacin: C₁ = 10³ μg/ml,_C2 = 64 μg/ml; somit_V1 = 51,2 μL
   Levofloxacin: C₁ = 5 x 10³ μg/ml, wobei wir es auf 5 x 10² μg/ml verdünnen,_C2 = 16 μg/ml; somit_V1 = 25,6 μL
   Trimethoprim-Sulfamethoxazol:_C1 = 48 x 10³ μg/ml,_C2 = 4096 μg/ml; somit_V1 = 68,26 μL
5. Pipetten Sie das erforderliche Volumen für jedes Medikament in der ersten Vertiefung der entsprechenden Reihe, nachdem Sie das gleiche Volumen aus der 200 μL-Brühe entfernt haben, um nach der Zugabe des Arzneimittels ein Gesamtvolumen von 200 μL zu erhalten.
6. Seriell verdünnen, indem 100 μL aus Bohrung 1 in Vertiefung 2 und so weiter entfernt werden, bis Bohrung 10 erreicht wird, wo die aus Vertiefung 10 entfernten 100 μL verworfen werden. Beachten Sie, dass Gut 11 als Positivkontrollbrunnen dient.
7. Pipette 100 μL von 10⁶ vorbereiteten bakteriellen Inokum in jede Vertiefung in jeder verwendeten Reihe mit Ausnahme von Bohrstätte Nummer 12, die als Negativkontrolle dient.
8. Über Nacht bei 37 °C inkubieren.

Abbildung 2A stellt die Ergebnisse dar, die durch die Kombination von Cefotaxim und Amikacin mit spezifischen Konzentrationen von Levofloxacin und Trimethoprim-Sulfamethoxazol erzielt werden. Wir können im linken Teil der Abbildung die vier Platten sehen, die schematisch mit den Konzentrationen der Medikamente im rechten Teil der Abbildung dargestellt sind. Die Pfeile stellen die Vertiefungen auf der Schnittstelle Wachstum/kein Wachstum dar. Die farbigen Brunnen sind die Brunnen, die Wachstum enthalten. Wir stellen fest, dass die vierte Platte kein Wachstum im Quadranten enthält, der die Kombination enthält. Dies liegt daran, dass wir in dieser Platte das MIC von Levofloxacin haben, das das Wachstum hemmt. In dieser Abbildung können wir sehen, dass das MIC des Cefotaxims in der Vertiefung A8 erhalten wird, was 32 μg / ml entspricht. Das MIC von Amikacin wird in der Vertiefung E1 erhalten, die 16 μg/ml entspricht. Ein Hemmwirkung ist in der Reihe zu sehen, die 1/2 MIC von Amikacin (Reihe D) zusätzlich zu mehreren SubMICs von Cefotaxim und Levofloxacin zusätzlich zu 1/8 MIC von Trimethoprim-Sulfamethoxazol enthält. Diese Hemmung des Bakterienwachstums in Vertiefungen, die SubMIC-Konzentrationen enthalten, könnte eine Form des Synergismus zwischen diesen Konzentrationen der vier Medikamente sein.

Abbildung 2B stellt die Ergebnisse dar, die durch die Kombination von Cefotaxim und Amikacin mit spezifischen Konzentrationen von Levofloxacin und Trimethoprim-Sulfamethoxazol erzielt wurden. Wir können im linken Teil der Abbildung die vier Platten sehen, die schematisch mit den Konzentrationen der Medikamente im rechten Teil der Abbildung dargestellt sind. Die Pfeile stellen die Vertiefungen auf der Schnittstelle Wachstum/kein Wachstum dar. Die farbigen Brunnen sind die Brunnen, die Wachstum enthalten. Folgen Sie der gleichen Interpretation für die vierte Platte. In dem durch diese Abbildung dargestellten Panel können wir sehen, dass das Hemmungsmuster des Bakterienwachstums auch in Reihe D auftrat, wo die Vertiefungen SubMICs von Cefotaxim und Levofloxacin, 1/2 MIC von Amikacin und 1/4 MIC von Trimethoprim-Sulfamethoxazol enthalten.

Abbildung 2C stellt die Ergebnisse dar, die durch die Kombination von Cefotaxim und Amikacin mit spezifischen Konzentrationen von Levofloxacin und Trimethoprim-Sulfamethoxazol erzielt wurden. Wir können im linken Teil der Abbildung die vier Platten sehen, die schematisch mit den Konzentrationen der Medikamente im rechten Teil der Abbildung dargestellt sind. Die Pfeile stellen die Vertiefungen auf der Schnittstelle Wachstum/kein Wachstum dar. Die farbigen Brunnen sind die Brunnen, die Wachstum enthalten. Folgen Sie der gleichen Interpretation für die vierte Platte. Was das Hemmungsmuster in diesem Panel betrifft, können wir sehen, dass in den Reihen C und D kein Wachstum zu sehen ist. Dies bedeutet, dass in den Vertiefungen mehrere SubMICs von Cefotaxim und Levofloxazin zusätzlich zu 1/2 MIC von Trimethoprim-Sulfamethoxazol und 1/4 MIC und 1/2 MIC von Amikacin enthalten sind.

Abbildung 2D stellt die Ergebnisse dar, die durch die Kombination von Cefotaxim und Amikacin mit spezifischen Konzentrationen von Levofloxacin und Trimethoprim-Sulfamethoxazol erzielt werden. Wir können im linken Teil der Abbildung die vier Platten sehen, die schematisch mit den Konzentrationen der Medikamente im rechten Teil der Abbildung dargestellt sind. Die Pfeile stellen die Vertiefungen auf der Schnittstelle Wachstum/kein Wachstum dar. Folgen Sie der gleichen Interpretation für die vierte Platte. Wir können sehen, dass wir nur in Zeile A und Spalte 1 farbige Vertiefungen haben, die Wachstum bedeuten. Dies liegt daran, dass wir in diesem Panel das MIC von Trimethoprim-Sulfamethoxazol haben, das das Wachstum vollständig hemmt.

Abbildung 1: Schematische Darstellung des Q-Schachbrett-Setups und der Panels sowie eine Karte, wie die Medikamente hinzugefügt werden.

Abbildung 2: Die experimentellen Ergebnisse, die in Versuch 1 für bestimmte getestete Kombinationen erzielt wurden. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.

Ergänzende Datei. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.

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