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Methodenartikel

Abbildung replikativer Domänen in ultrastrukturell konserviertem Chromatin mittels Elektronentomographie

3.5K Aufrufe

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DOI:

10.3791/62803

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20. Mai 2022

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* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll stellt eine Technik zur hochauflösenden Kartierung von Replikationsstellen in strukturell konserviertem Chromatin in situ vor, die eine Kombination aus voreingebetteter EdU-Streptatvid-Nanogold-Markierung und ChromEMT verwendet.

Zusammenfassung

Die Prinzipien der DNA-Faltung im Zellkern und ihre dynamischen Transformationen, die während der Erfüllung grundlegender genetischer Funktionen (Transkription, Replikation, Segregation usw.) auftreten, sind nach wie vor wenig verstanden, was zum Teil auf das Fehlen experimenteller Ansätze zur hochauflösenden Visualisierung spezifischer Chromatinorte in strukturell konservierten Kernen zurückzuführen ist. Hier stellen wir ein Protokoll zur Visualisierung replitiver Domänen in Monolayer-Zellkultur in situ vor, indem wir die EdU-Markierung neu synthetisierter DNA mit anschließender Markierungsdetektion mit Ag-Amplifikation von Nanogoldpartikeln und ChromEM-Färbung von Chromatin kombinieren. Dieses Protokoll ermöglicht die kontrastreiche, hocheffiziente Voreinbettungsmarkierung, die mit der traditionellen Glutaraldehydfixierung kompatibel ist und die beste strukturelle Konservierung von Chromatin für die Probenverarbeitung bei Raumtemperatur bietet. Ein weiterer Vorteil der Prä-Embedding-Kennzeichnung ist die Möglichkeit, Zellen von Interesse für die Schnittaufnahme vorzuselektieren. Dies ist besonders wichtig für die Analyse heterogener Zellpopulationen sowie für die Kompatibilität mit elektronentomographischen Ansätzen zur hochauflösenden 3D-Analyse der Chromatinorganisation an Replikationsstellen und zur Analyse der postreplizierenden Chromatin-Neuanordnung und Schwesterchromatid-Segregation in der Interphase.

Einleitung

Die DNA-Replikation ist ein grundlegender biologischer Prozess, der für das originalgetreue Kopieren und Übertragen der genetischen Information während der Zellteilung erforderlich ist. Bei höheren Eukaryoten unterliegt die DNA-Replikation einer engen räumlich-zeitlichen Regulation, die sich in einer sequentiellen Aktivierung der Replikationsursprüngemanifestiert 1. Benachbarte Replikationsursprünge, die synchron ausgelöst werden, bilden Cluster von replicons2. Auf der Ebene der optischen Mikroskopie werden Stellen der laufenden DNA-Replikation als Replikationsherde unterschiedlicher Anzahl und Größe nachgewiesen. Replik....

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Protokoll

Das Protokoll ist für adhärente Zellen optimiert und wurde an HeLa-, HT1080- und CHO-Zelllinien getestet.

1. Zellmarkierung und -fixierung

  1. Plattenzellen auf säuregereinigten Deckgläsern in einer 3 cm Petrischale. Züchten Sie die Zellen in den Medien, die für die verwendete Zelllinie empfohlen werden, zu 70% Konfluenz.
  2. Fügen Sie EdU (5-Ethynyl-2'-desoxyuridin) aus 10 mM Stamm bis 10 μM Endkonzentration hinzu und legen Sie die Zellen für 10 min oder länger in den Inkubator (abhängig vom Experimentziel). Für kürzere Hülsenfrüchte (bis zu 2 min) bereiten Sie eine Petrischale mit vorgewärmten frischen Nährmed....

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Ergebnisse

Replikationsherde in Säugetierzellkernen zeigen je nach S-Phasen-Progression unterschiedliche Verteilungsmuster innerhalb des Kerns. Diese Muster korrelieren mit der transkriptionellen Aktivität der replizierten Loci. Da die hier vorgestellte Methode ein ziemlich starkes Fixationsverfahren verwendet, ist es ziemlich einfach, die repliktive Pulsmarkierung für den spezifischen Nachweis von Chromatin-Loci in verschiedenen Transkriptionszuständen zu verwenden, selbst unter Bedingungen, die eine beste strukturelle Konservieru.......

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Diskussion

Die hier beschriebene Methode hat mehrere Vorteile gegenüber zuvor veröffentlichten Protokollen. Erstens eliminiert die Verwendung der Click-Chemie zur Markierung replizierter DNA die Notwendigkeit der DNA-Denaturierung, die für den BrdU-Nachweis mit Antikörpern erforderlich ist, wodurch die Chromatin-Ultrastruktur besser erhalten wird.

Zweitens minimiert die Verwendung von Biotin als sekundärer Ligand, der nach der Glutaraldehydfixierung und dem ordnungsgemäßen Abschrecken von ungebundenen A.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten

Danksagungen

Diese Arbeit wurde zum Teil von RSF (Grant #17-15-01290) und RFBR (Grant #19-015-00273) unterstützt. Die Autoren danken dem Lomonosov Moscow State University Development Program (PNR 5.13) und dem Nikon Center of Excellence in korrelativer Bildgebung am Belozersky Institute of Physico-Chemical Biology für den Zugang zu bildgebenden Instrumenten.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Reagenz
5-ethynyl-2'-deoxyuridin (EdU)Thermo FisherA10044
2-(4-Morpholino)ethansulfonsäure (MES)Fisher ScientificBP300-100
AlexaFluor 555-azidTermo FisherA20012
Biotin-azidLumiprobeC3730
RinderserumalbuminBovalLY-0080
DDSASPI-CHEM26544-38-7
DMP-30SPI-CHEM90-72-2
DRAQ5Thermo Scientific62251
EpoxidharzmonomerSPI-CHEM90529-77-4
Glutaraldehyd (25%, EM-Qualität)TED PELLA, INC18426
Gummi arabicumACROS Organics258850010
MagnesiumchloridPanreac141396.1209
NaBH4SIGMA-ALDRICH213462
NMASPI-CHEM25134-21-8
N-PropylgallatSIGMA-ALDRICHP3130
PBSMP Biomedicals2810305
SilberlactatALDRICH359750-5G
Streptavidin-AlexaFluor 488 KonjugatTermo FisherS11223
Streptavidin-Nanogold KonjugatNanosonden2016
TetrachloraurinsäureSIGMA-ALDRICHHT1004
Tris(hydroxymethyl)aminomethan (Tris)CHEM-IMPEX INT'L298
Triton X-100Fluka Chemica93420
Instruments
Carbon CoaterHitachi
Kupfer Single Slot GitterTed Pella1GC10H
Cy5 Fluoreszenzfilter Set (Ex620/60 DM660 Em700/75)NikonCy5 HQAlternativen: Zeiss, Leica, Olympus
Diamond Messer Ultra Wet 45oDiatomeDUAlternativen: Ted Pella
LeuchtstoffmikroskopNikonTi-EAlternativen: Zeiss, Leica, Olympus
High-tilt ProbenhalterJeol
RotatorBiosanMulti Bio RS-24
Transmissionselektronenmikroskop mit 200 kV im EFTEM-Modus, mit High-Tilt-GoniometerJeolJEM-2100Alternativen: FEI, Hitachi
PinzetteTed Pella523
UltramikrotomLeicaUltraCut-EAlternativen: RMC
Software
BildaufnahmeOpen SourceSerialEM (https://bio3d.colorado.edu/SerialEM/)
BildverarbeitungOpen SourceIMOD (https://bio3d.colorado.edu/imod/)

Referenzen

  1. Rivera-Mulia, J. C., Gilbert, D. M. Replicating large genomes: divide and conquer. Molecular Cell. 62 (5), 756-765 (2016).
  2. Méchali, M. Eukaryotic DNA replication origins: Many choices for appropriate answers. Nature Reviews Molecular and Cell Biology. ....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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