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Methodenartikel

Im lebenden Organismus Bildgebung von biologischem Gewebe mit kombinierter Zwei-Photonen-Fluoreszenz und stimulierter Raman-Streumikroskopie

3.2K Aufrufe

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DOI:

10.3791/63411

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20. Dezember 2021

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die stimulierte Raman-Streuung (SRS) -Mikroskopie ermöglicht eine markierungsfreie Bildgebung von Biomolekülen basierend auf ihrer intrinsischen Schwingung spezifischer chemischer Bindungen. In diesem Protokoll wird der instrumentelle Aufbau eines integrierten SRS- und Zwei-Photonen-Fluoreszenzmikroskops beschrieben, um zelluläre Strukturen im Rückenmark lebender Mäuse sichtbar zu machen.

Zusammenfassung

Die stimulierte Raman-Streuung (SRS) ermöglicht eine markierungsfreie Abbildung des biologischen Gewebes in seiner natürlichen Mikroumgebung auf der Grundlage intrinsischer molekularer Schwingungen und ist somit ein perfektes Werkzeug für die In-vivo-Untersuchung biologischer Prozesse bei subzellulärer Auflösung. Durch die Integration der Zwei-Photonen-angeregten Fluoreszenzbildgebung (TPEF) in das SRS-Mikroskop kann die dual-modale In-vivo-Bildgebung von Geweben kritische biochemische und biophysikalische Informationen aus mehreren Perspektiven erfassen, die helfen, die dynamischen Prozesse zu verstehen, die am Zellstoffwechsel, der Immunantwort und dem Gewebeumbau usw. beteiligt sind. In diesem Videoprotokoll wird der Aufbau eines TPEF-SRS-Mikroskopsystems sowie das in vivo bildgebende Verfahren des tierischen Rückenmarks vorgestellt. Das Rückenmark spielt als Teil des zentralen Nervensystems eine entscheidende Rolle bei der Kommunikation zwischen dem Gehirn und dem peripheren Nervensystem. Myelinscheide, die reich an Phospholipiden ist, umgibt und isoliert das Axon, um eine salzige Leitung von Aktionspotentialen zu ermöglichen. Die In-vivo-Bildgebung von Myelinscheiden im Rückenmark ist wichtig, um das Fortschreiten von neurodegenerativen Erkrankungen und Rückenmarksverletzungen zu untersuchen. Das Protokoll beschreibt auch die Tierpräparation und in vivo TPEF-SRS-Bildgebungsverfahren zur Aufnahme hochauflösender biologischer Bilder.

Einleitung

Die Raman-Mikroskopie1,2 entwickelt sich zu einer leistungsstarken markierungsfreien Methode, um biologisches Gewebe basierend auf den charakteristischen Frequenzen verschiedener chemischer Bindungen in Biomolekülen abzubilden. Aufgrund ihrer nicht-invasiven und gut adaptiven Bildgebungsfähigkeit wurde die Raman-Mikroskopie häufig für die Bildgebung von lipidangereicherten Komponenten in biologischen Geweben wie Myelinscheide3,4,5, Adipozyten6,7 und Lipidtröpfchen eingesetzt8,9,10 ....

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Protokoll

Alle Tierverfahren, die bei dieser Arbeit durchgeführt werden, werden gemäß den Richtlinien der Laboratory Animal Facility der Hong Kong University of Science and Technology (HKUST) durchgeführt und von der Tierethikkommission der HKUST genehmigt. Für die Einrichtung und Bedienung des TPEF-SRS-Mikroskops ist eine Sicherheitsschulung für die Laserhandhabung erforderlich. Tragen Sie immer eine Laserschutzbrille mit entsprechendem Wellenlängenbereich, wenn es um Laser geht.

1. Aufbau des TPEF-SRS-Mikroskops (Setup-Schema siehe Abbildung 1)

  1. Verwenden Sie einen integrierte....

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Ergebnisse

Die in vivo dual-modale Bildgebung von spinalen Axonen sowie Myelinscheiden wird mit den transgenen Thy1-YFPH-Mäusen durchgeführt, die EYFP in afferenten Neuronen des dorsalen Wurzelganglions exprimieren (Abbildung 3). Diese gekennzeichneten afferenten Neuronen leiten die sensorischen Informationen vom peripheren Nerv an das Rückenmark weiter, wobei sich der zentrale Ast in der Rückenmarksdorsalsäule befindet. Mit dem TPEF-SRS-Mikroskop können dicht verteilte Myelinhüllen mittels ma.......

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Diskussion

In diesem Protokoll wird der grundlegende Aufbau des TPEF-SRS-Mikroskops ausführlich beschrieben. Für die SRS-Bildgebung sind die Pumpe und die Stokes-Strahlen innerhalb des OPO zeitlich und räumlich überlappt. Diese Überlappung kann jedoch nach dem Durchlaufen des Mikroskopsystems unterbrochen werden. Daher ist sowohl die räumliche als auch die zeitliche Optimierung der Kolokalisation der Pumpe und der Stokes-Träger notwendig und entscheidend, um eine optimale SRS-Bildgebung zu erreichen. Die zeitliche Verzögerung zwisc.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen und haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde vom Hong Kong Research Grants Council durch Zuschüsse 16103215, 16148816, 16102518, 16102920, T13-607/12R, T13-706/11-1, T13-605/18W, C6002-17GF, C6001-19E, N_HKUST603/19, der Innovation and Technology Commission (ITCPD/17-9), dem Area of Excellence Scheme des University Grants Committee (AoE/M-604/16, AOE/M-09/12) und der Hong Kong University of Science & Technology (HKUST) durch den Zuschuss RPC10EG33 unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
#2 PinzetteDumont11223-20Für Laminektomie
10X ObjektivNikonCFI Plan Apo Lambda 10X
25X ObjektivOlympusXLPLN25XSVMP2
Burn CremeBetadine
KameraSony& alpha; 6300
StromverstärkerStanford researchSR570
Strom-Photomultiplier-ModuleHamamatsuH11461-01
D2 665 nm dichroitischer LangpassspiegelSemrockFF665-Di02-25x36Zur Lenkung des Epi-Fluoreszenzsignals auf das Detektionsmodul
D3 700 nm dichroitischer KurzpassspiegelEdmund69-206Zur Trennung von SRS von TPEF Detektionsweg
EnthaarungscremeVeet
FS1 975 nm KurzpassfilterEdmund86-108Zum Blockieren des Strahls
FS1 BandpassfilterSemrockFF01-850/310Zum Blockieren des Strahls
Fs2 BandpassfilterSemrockFF01-525/50Zum Blockieren des YFP-Signals
Fs2 KurzpassfilterSemrockFF01-715/SP-25Zum Blockieren von fs-Anregungslaserstrahlen
HalbwellenplatteThorlabsSAHWP05M-1700
Hochgeschwindigkeits-PhotodetektorMenloSystemsFPD 310-FZum Überprüfen der Stokes-Strahlmodulation
Jod-Betadin
IR-OszilloskopFJWFIND-R-SCOPE Infrarot-Viewer 2X Kit Modell 84499C2X
IrisThorlabsCPA1
L1ThorlabsAC254-060-B-ML
L10ThorlabsLA4052-A
L2ThorlabsLA1422-B
L3ThorlabsAC254-050-B
L4ThorlabsAC254-060-B-ML
L7f=100 mm, AB-Beschichtung
L8ThorlabsLA4874-A
L9ThorlabsAC254-035-B-ML
Lock-in-VerstärkerAPE
SpiegelThorlabsPF10-03-P01
Motorisierter FlipperThorlabsMFF101/M
Multifunktionale ErfassungskarteNational InstrumentPCIe-6363
OszilloskopTektronixTDS2012C
FotodiodeAPEZur Detektion von SRS-Signalen
Pikosekunden-LaserquelleAPEpicoSmaragd
Polarisierender StrahlteilerThorlabsCCM1-PBS252/M
LeistungsmesserNewport843-R
SalineBraun
Scan-Objektiv L5ThorlabsSL50-CLS2
Scanning-SpiegelCambridge Technology6215H
SilikongelWorld Precision Inc.KWIK-SIL
Ti:Saphir fs LaserCoherentChamäleon Ultra II
Tubuslinse L6ThorlabsTTL200-S8

Referenzen

  1. Raman, C. V., Krishnan, K. S. The optical analogue of the compton effect. Nature. 121 (3053), 711(1928).
  2. Turrell, G., Corset, J. Raman Microscopy: Developments and Applications. , Academic Press. (1996).
  3. Tian, F., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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