Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Anwendung von RNA-Interferenz im Kiefernnematoden, Bursaphelenchus xylophilus

3K Ansichten

DOI:

10.3791/63645

9. März 2022

In diesem Artikel

Erratum-Hinweis

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Zusammenfassung

Hier stellen wir eine detaillierte Einweichmethode der RNA-Interferenz in Bursaphelenchus xylophilus vor, um die Untersuchung von Genfunktionen zu erleichtern.

Zusammenfassung

Der Kiefernfadenwurm, Bursaphelenchus xylophilus, ist eine der zerstörerischsten invasiven Arten weltweit, die das Welken und schließlich das Absterben von Kiefern verursacht. Trotz der Anerkennung ihrer ökonomischen und ökologischen Bedeutung war es bisher unmöglich, die detaillierten Genfunktionen von pflanzenparasitischen Nematoden (PPNs) mit konventioneller Vorwärtsgenetik und transgenen Methoden zu untersuchen. Als umgekehrte genetische Technologie erleichtert die RNA-Interferenz (RNAi) jedoch die Untersuchung der funktionellen Gene von Nematoden, einschließlich B. xylophilus.

Dieser Artikel skizziert ein neues Protokoll für RNAi des ppm-1-Gens in B. xylophilus, von dem berichtet wurde, dass es eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung und Reproduktion anderer pathogener Nematoden spielt. Für RNAi wurde der T7-Promotor durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR) mit dem 5′-Terminal des Zielfragments verknüpft, und doppelsträngige RNA (dsRNA) wurde durch In-vitro-Transkription synthetisiert. Anschließend wurde die dsRNA-Abgabe erreicht, indem die Nematoden in einer dsRNA-Lösung mit synthetischen Neurostimulanzien eingeweicht wurden. Synchronisierte Jungtiere von B. xylophilus (ca. 20.000 Individuen) wurden gewaschen und im Einweichpuffer für 24 h im Dunkeln bei 25 °C in dsRNA (0,8 μg/ml) eingeweicht.

Die gleiche Menge an Nematoden wurde in einen Einweichpuffer ohne dsRNA als Kontrolle gegeben. In der Zwischenzeit wurde eine weitere identische Menge von Nematoden in einen Einweichpuffer mit dem grün fluoreszierenden Protein (gfp) -Gen dsRNA als Kontrolle gegeben. Nach dem Einweichen wurde das Expressionsniveau der Zieltranskripte mittels quantitativer real-time PCR bestimmt. Die Wirkung von RNAi wurde dann durch mikroskopische Beobachtung der Phänotypen und einen Vergleich der Körpergröße der Erwachsenen unter den Gruppen bestätigt. Das aktuelle Protokoll kann dazu beitragen, die Forschung voranzutreiben, um die Funktionen der Gene von B. xylophilus und anderen parasitären Nematoden besser zu verstehen, um Kontrollstrategien durch Gentechnik zu entwickeln.

Einleitung

Pflanzenparasitäre Nematoden (PPNs) sind eine anhaltende Bedrohung für die Ernährungssicherheit und die Waldökosysteme. Sie verursachen jedes Jahr schätzungsweise 100 Milliarden USD an wirtschaftlichen Verlusten1, von denen die problematischsten vor allem Wurzelknotennematoden, Zystennematoden und Kiefernnematoden sind. Der Kiefernfadenwurm, Bursaphelenchus xylophilus, ist ein wandernder, endoparasitischer Fadenwurm, der der ursächliche Erreger der Kiefernwelkeist 2. Es hat den Kiefernwäldern weltweit großen Schaden zugefügt3. Nach der Terminologie von Van Megen et al.4<....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

Die Studie wurde vom Rat für Tierversuche der Zhejiang Agricultural & Forestry University genehmigt. Das B. xylophilus-Isolat NXY61 wurde ursprünglich aus einem erkrankten Pinus massoniana in der Region Ningbo in der Provinz Zhejiang, Chinaextrahiert 11.

1. Klonen von Genen

HINWEIS: Weitere Informationen zu den in diesem Protokoll verwendeten Grundierungen finden Sie in der Materialtabelle .

  1. Sammle Nematoden.
    1. Kultur des B. xylophilus-Stammes auf den Myzelien von Botrytis cinerea auf Kartoffel-Dextrose-Ag....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Analyse der ppm-1-Expression von B. xylophilus nach RNAi
Das relative Expressionsniveau des ppm-1-Gens von B. xylophilus, das mit GFP dsRNA getränkt und mit Zielgen dsRNA getränkt war, betrug 0,92 bzw. 0,52 (das ppm-1-Genexpressionsniveau der ddH2 O-behandelten Kontrollgruppe wurde auf 1 festgelegt) (Abbildung 1). Daher hat exogene dsRNA keinen Einfl.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Obwohl sich die Lebensgeschichte und die parasitäre Umgebung von B. xylophilus von denen anderer Nematoden unterscheiden, gibt es nur begrenzte Forschung über die molekulare Pathogenese dieses Pflanzenpathogens. Trotz großer Fortschritte bei der Anwendung der CRISPR/Cas9-Genom-Editing-Technologie bei C. elegans und anderen Nematoden wurde bisher nur die RNAi-Technologie veröffentlicht, die auf B. xylophilus angewendet wurde17. RNAi ist eines der leistungsfähigsten verfüg.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Interessenkonflikte wurden nicht erklärt.

Danksagungen

Diese Forschung wurde von der National Natural Science Foundation of China (31870637, 31200487) finanziert und gemeinsam durch den Zhejiang Key Research Plan (2019C02024, LGN22C160004) finanziert.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Baermann-Schornsteinn/an/aum Nematoden zu isolieren
Beacon Designer 7.9Shanghai Kangyusheng Information Technology Co.n/aum qPCR-Primer zu entwerfen
Botrytis cinerean/an/aals Nahrung für Nematoden
Bursaphelenchus xylophilusn/an/aihre Nummer war NXY61 und sie wurde ursprünglich aus der Krankheit
Pinus massoniana in Ningbo, Provinz Zhejiang, China, gewonnen.
Inkubator bei konstanter TemperaturShanghai Jing Hong Laboratory Instrument Co.H1703544um Nematoden zu kultivieren
ElektrophoreseapparatBio-Rad Labore1704466zur Erreichung der elektrophoretischen Analyse
Ethanol, 75 %Sinopharm Chemical Reagent Co.80176961RNA zu extrahieren
Ex Taq Polymerase-VormischungTakara Bio Inc.RR030Afür PCR
Ex Taq Polymerase-VormischungTakara Bio Inc.RR390Afür PCR
Gel-BildgeberLongGene Scientific Instruments Co.LG2020um Nukleinsäurebänder sichtbar zu machen
GraphPad Prism 8GraphPad-Prisman/aum die Daten zu analysieren und Figuren zu erstellen
HochgeschwindigkeitszentrifugeHangzhou Allsheng Instruments Co.AS0813000Zentrifuge
Hochfluss-GewebeschleiferBertinRNA zu extrahieren
ImageJ-SoftwareNationale Gesundheitsinstituten/aum die Körperlängen zu messen
IsopropylalkoholShanghai Aladdin Biochemical Technology Co.L1909022RNA zu extrahieren
Leica DM4B-MikroskopLeica Microsystems Inc.Nematoden zu beobachten
MagnetperlenAoran Science Technology Co.150010CRNA zu extrahieren
MEGAscript T7 Hochleistungs-TranskriptionskitThermo Fisher Scientific Inc.AM1333um dsRNA in vitro zu synthetisieren
NanoDrop ND-2000 SpektrophotometerThermo Fisher Scientific Inc.NanoDrop 2000/2000Cum die Qualität der dsRNA zu analysieren
PCR-VerstärkerBio-Rad Life Medical Products Co.1851148zur Amplifizierung der Nukleinsäuresequenz
Petrischalenn/an/aum Nematoden zu kultivieren
pGEM-T Easy-VektorPromega CorporationA1360Für das Klonen
Kartoffel-Dextrose-Agar (Medium)n/an/aum Botrytis cinerea
Prime Script RT Reagenz-Kit mit gDNA-RadiergummiTakara Bio Inc.RR047Bum synthetische cDNA zu synthetisieren
Primer Premier 5.0PREMIER Biosoftn/aum PCR-Primer zu entwerfen
Grundbücher:ppm-1-F/RTsingke Biotechnology Co.n/aF: 5'-GATGCGAAGTTGCCAATCATTCT -3'; R: 5'- CCAGATCCAGTCCACCATACACC -3
q-ppm-1-F/RTsingke Biotechnology Co.n/aF: 5'-CATCCGAATGGCAATACAG-3'; R: 5'-ACTATCCTCAGCGTTAGC-3'
Echtzeit-Thermalzykler  qTOWER 2.2Analytique Jena Instruments (Peking) Co.für qPCR
Zitternder TischShanghai Zhicheng Analyseinstrumentenherstellung GmbH.um Nematoden einzuweichen
Stereoskopisches MikroskopChongqing Optec Instrument Co.1814120Nematoden zu beobachten
T7-GFP-F/RTsingke Biotechnology Co.n/aF: 5'-TAATACGACTCACTATAGGGAAA
GGAGAAGAACTTTTCAC-3'; R: 5'-TAATACGACTCACTATAGGGCTG
TTACAAACTCAAGAAGG-3'
  T7-VeranstalterTsingke Biotechnology Co.n/aTAATACGACTCACTATAGGG
Takara MiniBEST Agarose Gel DNA-ExtraktionssetTakara Bio Inc.9762um DNA zu gewinnen
TaKaRa TB Green Premix Ex Taq (Tli RNaseH Plus)Takara Bio Inc.RR820Afür qPCR
TrichlorethanShanghai LingFeng Chemical Reagent Co.RNA zu extrahieren
TRIzol-ReagenzThermo Fisher Scientific Inc.15596026gesamte RNA-Extraktionsreagenz, um RNA zu extrahieren

Referenzen

  1. Nicol, J. M., et al. Current nematode threats to world agriculture. Genomics and Molecular Genetics of Plant-Nematode Interactions. Jones, J., Gheysen, G., Fenoll, C. , Springer. Dordrecht. 21-43 (2011).
  2. Jones, J. T., et al. Top 10 plant-parasitic nematodes in molecular plant pathology. <....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Erratum


Formal Correction: Erratum: Application of RNA Interference in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus
Posted by JoVE Editors on 4/16/2024. Citeable Link.

This corrects the article 10.3791/63645-v

Schlagwörter

Genfunktionsanalysedoppelstr ngige RNABaermann TrichterIn vitro Transkriptionquantitative PCRK rpergr en Ph notypGenexpressionsanalyse