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Methodenartikel

Isolierung von intrapulmonalen Arterien- und glatten Muskelzellen zur Untersuchung von Gefäßreaktionen

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DOI:

10.3791/63686

8. Juni 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Vaskuläre Reaktionen des arteriellen Lungenkreislaufs können mit Hilfe von intrapulmonalen Arterien (IPA) und vaskulären glatten Muskelzellen (VSMCs) erforscht werden. Die vorliegende Studie beschreibt detailliert die Isolierung von IPA und die Protokolle, die zur Untersuchung der Vasorelaxation als Reaktion auf physiologische Reize verwendet werden.

Zusammenfassung

Die intrapulmonale Arterie (IPA) und die vaskulären glatten Muskelzellen (VSMCs), die aus Rattenlungen isoliert wurden, können verwendet werden, um die zugrunde liegenden Mechanismen der Vasokonstriktion und Vasorelaxation zu untersuchen. Nach der Isolierung der IPA- und VSMCs können die Eigenschaften der vaskulären Reaktionen unter physiologischen und pathologischen Bedingungen in Abwesenheit extrinsischer Faktoren wie Nervensignale, Hormone, Zytokine usw. beurteilt werden. Daher dienen die IPA und VSMCs als hervorragende Modelle für die Untersuchung der vaskulären Physiologie / Pathophysiologie, zusammen mit verschiedenen experimentellen Untersuchungen, wie Modulation durch pharmakologische Wirkstoffe, Patch-Clamp-elektrophysiologische Analyse, Kalziumbildgebung usw. Hier haben wir eine Technik zur Isolierung des IPA verwendet, um vaskuläre Reaktionen in einem Organbadaufbau zu untersuchen. IPA-Segmente wurden über intraluminale Drähte auf die Organbadkammer montiert und durch verschiedene pharmakologische Wirkstoffe stimuliert. Die Veränderungen des IPA-Gefäßtonus (d.h. Vasokonstriktion und Vasorelaxation) wurden mit einem isometrischen Kraftaufnehmer und einer physiologischen Datenanalysesoftware aufgezeichnet. Wir implementierten mehrere experimentelle Protokolle, die angepasst werden können, um die Mechanismen der Vasorelaxation / Vasokonstriktion zur Untersuchung der pharmakologischen Aktivitäten von phytochemischen oder synthetischen Arzneimitteln zu untersuchen. Die Protokolle können auch verwendet werden, um die Rolle von Medikamenten bei der Modulation verschiedener Krankheiten, einschließlich pulmonaler arterieller Hypertonie, zu bewerten. Das IPA-Modell ermöglicht es uns, die Konzentrations-Wirkungs-Kurve zu untersuchen, die für die Bewertung der pharmakodynamischen Parameter von Arzneimitteln entscheidend ist.

Einleitung

Das Lungengefäßsystem ist ein Niederdruck-Gefäßsystem, in dem die Hauptfunktion darin besteht, sauerstoffarmes Blut in den gasaustauschenden Bereich der Lunge zu liefern. Die Lungenarterien in der Lunge sind in Ästen parallel zum Bronchialbaum angeordnet und bilden schließlich ein ausgedehntes Netzwerk von Kapillaren, das sich über mehrere Alveolen erstreckt und schließlich zu Venolen und Venen zusammenführt. Der Gefäßtonus der Lungenarterie wird durch mehrere Faktoren gesteuert, die die Interaktion zwischen dem Endothel und den vaskulären glatten Muskelzellen (VSMCs) beinhalten1.

In dieser Studie konzentrieren wir uns auf die endothelabhängige und -unabhängige Vasorelaxation der intrapulmonalen Arterie (IPA). Im Hinblick auf die endothelabhängige Vasorelaxation könnten verschiedene Mechanismen, die auf der Oberfläche von Endothelzellen auftreten, die intrazelluläre Ca2+-Konzentration erhöhen (z.B. bindet Acetylcholin [ACh] an Muskarinrezeptor [M3]), was zur Bildung von Stickstoffmonoxid (NO), Prostacyclin (PGl2) und Endothel-abgeleitetem Hyperpolarisationsfaktor (EDHF) führt (Abbildung 1 ). NO ist der wichtigste Endothel-abgeleitete Entspannungsfaktor, der aus L-Arginin durch endotheliale Stickstoffmonoxid-Synthase (eNOS)2 synthetisiert wird, die dann aus den Endothelzellen zu VSMCs dissoziiert (Abbildung 1) und das Enzym lösliche Guanylylzyklase (sGC) stimuliert; Dieses Enzym wandelt Guanosintriphosphat (GTP) in zyklisches Guanosinmonophosphat (cGMP) um, das die Proteinkinase G (PKG) aktiviert und den zytosolischen Ca2+-Spiegel senkt, wodurch eine Vasorelaxation verursacht wird (Abbildung 1). PGl2 wird von Endothelzellen über den Cyclooxygenase (COX) -Weg 3,4 synthetisiert. Es bindet an den Prostacyclinrezeptor (IP) auf VSMCs und stimuliert das Enzym Adenylylzyklase (AC), das dann Adenosintriphosphat (ATP) in zyklisches Adenosinmonophosphat (cAMP) umwandelt (Abbildung 1)3,4. cAMP aktiviert die Proteinkinase A (PKA), senkt den zytosolischen Ca2+-Spiegel und verursacht Vasorelaxation5 (Abbildung 1). Der EDHF-Signalweg ist auch an der endothelabhängigen Vasorelaxation über verschiedene endotheliale Mediatoren und elektrische Ereignisse beteiligt. Die Aktivierung des EDHF-Signalwegs führt zur Hyperpolarisation von VSMCs, wodurch spannungsbetriebene Ca 2+ Kanäle (VOCCs) geschlossen, intrazelluläre Ca2+ Spiegel reduziert und Vasorelaxation induziertwerden 6. Die endothelunabhängige Vasorelaxation erfolgt direkt an VSMCs über mehrere Mechanismen, wie die Reduktion des intrazellulären Ca 2+ Spiegels, die Hemmung der Myosin Light Chain Kinase (MLCK), die Aktivierung der Myosin Light Chain Phosphatase (MLCP) und die Reduktion der Ca2+ Sensitivität gegenüber der kontraktilen Maschinerie von VSMCs. In dieser Studie konzentrieren wir uns auf die Vasorelaxation, die durch die Öffnung verschiedener K+-Kanäle, die Blockade von VOCCs und die Hemmung der Ca 2+-Freisetzung aus dem sarkoplasmatischen Retikulum7 verursacht wird, was zur Senkung der intrazellulären Ca 2+-Spiegel führt, wodurch die VSMC-Myosin-Leichtkettenphosphorylierung bzw. die Myosin-Aktin-Bindung bzw. Querbrückenbildung verringert wird. letztendlich zu Vasorelaxation führen.

Die Technik zur Auswertung von Vasokonstriktions- und Vasorelaxationsmessungen in isoliertem IPA ist für Nagetiere gut etabliert, aber die Daten variierten je nach den experimentellen Protokollen. Die vorliegende Studie beschreibt die Methode zur Bewertung der vaskulären Reaktivitäten von IPA-Präparaten der Ratte in vitro, die in Abwesenheit externer Faktoren, die die vaskuläre Reaktion in vivo modulieren, wie Nervensignale, Hormone, Zytokine, Blutdruck usw., durchgeführt wurden.

Wir verwendeten mehrere experimentelle Protokolle mit dem Pflanzenextrakt als Beispiel für die Untersuchung der vaskulären Reaktivitäten von IPA. Verschiedene Blocker (Abbildung 1) wurden verwendet, um die Mechanismen der endothelabhängigen und -unabhängigen Vasorelaxation zu identifizieren, die durch den Pflanzenextrakt induziert werden. Dennoch können die gleichen Protokolle angepasst werden, um die vaskulären Reaktionen von IPA auf Medikamente, Extrakte oder sekundäre Pflanzenstoffe zu bewerten, die zur Behandlung verschiedener Lungenpathologien verwendet werden.

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Protokoll

Die in dieser Studie durchgeführten Experimente wurden von der Ethikkommission des Naresuan University Animal Care and Use Committee (NUACUC), Protokollnummer NU-AE620921, für die Pflege und Verwendung von Tieren für wissenschaftliche Zwecke genehmigt.

1. Zusammensetzung physiologischer Lösungen

  1. Die Krebslösung wird durch Auflösen von Chemikalien in destilliertem Wasser formuliert, um die Endkonzentrationen wie folgt zu erreichen: 122 mM NaCl, 10 mM HEPES, 5 mM KCl, 0,5 mM KH 2 PO 4, 0,5 mM NaHPO4, 1 mM MgCl 2, 1,8 mM CaCl 2und 11 mM Glucose8. Stellen Sie den pH-Wert der Lösung auf 7,3 mit 1 M NaOH ein und heizen Sie vor Gebrauch auf 37 °C vor.
  2. Bereiten Sie kalte Krebslösung ähnlich wie in Schritt 1.1 beschrieben vor. zur Verwendung als Isoliermedium von IPA, wie in Schritt 2 beschrieben.

2. Isolierung der intrapulmonalen Arterie (IPA)

  1. Betäuben Sie 8 Wochen alte männliche Wistar-Ratten mit einer intraperitonealen Injektion von Natriumthiopental (100 mg/kg)9. Überprüfen Sie die Ratten auf ihre Reaktion auf schmerzhafte Reize im Tiefschlaf, indem Sie eine Pinzette verwenden, die an ihre Füße geklemmt ist, und stellen Sie dann sicher, dass die Ratten keine Fußrückzugsreaktion haben, bevor Sie sie in Schritt 2.2 einschläfern.
  2. Schneiden Sie den mittleren Brustkorb der Ratte und das Herzterminal mit einer Schere (Größe 14 cm) auf. Dann lokalisieren Sie die Lungenwurzel mit einer Schere (Größe 14 cm). Die gesamte Lunge wird mit einer Schere geschnitten und in kalte Krebslösung10,11 getaucht.
  3. Schneiden Sie einen einzelnen Lungenlappen mit einer Schere (Größe 11 cm) und legen Sie ihn auf eine Petrischale (Größe 9 cm) mit der medialen Seite/Wurzel der Lunge nach oben (Abbildung 2A, B). Beobachten und identifizieren Sie die Ausrichtung der Vene, der Bronchien und der Arterie von oben nach unten (Abbildung 2B).
  4. Den Bronchus längs mit einer Schere (Größe 11 cm) aufschneiden. Verwenden Sie dann die Pinzette (Größe 11 cm), um die Spitze des Bronchus zu greifen. Sezieren und entfernen Sie vorsichtig die Bronchus und Venen aus der Lunge. Beachten Sie, dass die IPA immer anatomisch unter dem Bronchus ausgerichtet ist.
  5. Danach kann die Haupt-IPA visualisiert werden (Abbildung 2C). Greifen Sie mit der Pinzette (Größe 11 cm) die Spitze des IPA und sezieren Sie sie vorsichtig mit einer Schere (Größe 11 cm) aus dem Lungengewebe.
  6. Bewahren Sie das isolierte IPA in kalter Krebslösung auf, bis die Organbadanordnung eingerichtet ist (pH 7,3 und Temperatur 4 °C)1 1.

3. Isolierung von vaskulären glatten Muskelzellen (VSMCs)

  1. Isolieren Sie IPA wie zuvor in Schritt 2 beschrieben. Den Hauptast des IPA längs mit einer Schere (Größe 11 cm) aufschneiden und in kleine Streifen (2 mm) schneiden (Abbildung 3A).
  2. Die IPA-Streifen werden in ein Dissoziationsmedium (DM)10,12 getaucht, das 110 mM NaCl,5 mM KCl, 0,5 mMKH2PO4, 0,5 mM NaH2PO4, 10 mM NaHCO3, 10 mM HEPES, 0,03 mM Phenolrot, 10 mM Taurin, 0,5 mM EDTA, 2 mM MgCl2, 11 mM Glucose und 0,16 mMCaCl2 enthält. und stellen Sie den pH-Wert auf 7,0 mit 1 M NaOH ein. Die Streifen werden 1 h lang bei 4 °C in TM mit 1 mg/ml Papain, 0,04 % Rinderserumalbumin (BSA) und 0,4 mM 1,4-Dithiothreitol (DTT) inkubiert und 15 min bei 37 °C weiter inkubiert. 1 mg/ml Kollagenase Typ 1A in DM zugeben und bei 37 °C für 5 min weiter inkubieren.
    HINWEIS: DM ist eine Lösung zur Erhaltung der Zelllebensfähigkeit. Papain und Kollagenase Typ 1A sind Enzyme, die die extrazellulären Matrixproteine abbauen, um einzelne Zellen zu isolieren. BSA ist ein Serumalbuminprotein, das zur Stabilisierung von Enzymen während der Lagerung und enzymatischer Reaktionen verwendet wird. DTT ist ein Reduktionsmittel, das verwendet wird, um die Aktivität von Enzymen während des Zellisolierungsprozesses zu stabilisieren und zu fördern. Taurin ist Aminoschwefelsäure, die zur Stabilisierung der Zellmembran und Zellintegrität verwendet wird.
  3. Das Gewebe wird in frisches TM überführt und durch sanftes Reiben mit einer Pasteur-Glaspipette dispergiert (Abbildung 3B). Triturieren Sie weiter, bis isolierte VSMCs in der Badelösung unter dem Mikroskop sichtbar werden (Abbildung 3C).
    HINWEIS: Frisch isolierte VSMCs können zur Untersuchung der vaskulären Physiologie / Pathophysiologie verwendet werden, zusammen mit verschiedenen experimentellen Untersuchungen, wie Modulation durch pharmakologische Wirkstoffe, elektrophysiologische Patch-Clamp-Analyse, Kalziumbildgebung usw. Die vorliegende Studie konzentriert sich jedoch nur auf die Vasorelaxation von isoliertem IPA unter Verwendung der Organbadtechnik.

4. Organbadtechnik

  1. Isolieren Sie IPA wie zuvor in Schritt 2 beschrieben. Schneiden Sie den Hauptzweig des IPA in Ringe von ~2 mm Länge (Abbildung 2D)13.
  2. Befestigen Sie die IPA-Ringe in Orgelbadkammern (Abbildung 4), indem Sie sie auf zwei Edelstahldrähte mit einem Durchmesser von 40 μm auffädeln (Abbildung 2E)11,13,14.
  3. Befestigen Sie Edelstahldrähte, die mit IPA-Ringen montiert sind, an den isometrischen Kraftaufnehmern, die mit dem Datenerfassungsgerät und dem Computersystem verbunden sind, das mit der geeigneten physiologischen Software zur Datenaufzeichnung und -analyse installiert ist, und erhöhen Sie dann vorsichtig die Spannung des IPA-Rings auf 1 g11.
  4. Lassen Sie die Gefäßsegmente für ca. 45 min bei einer Ruhespannung von 1 g im Gleichgewicht liegen. Stellen Sie während der Gleichgewichtsphase sicher, dass die Krebslösung regelmäßig alle 15 Minuten gewechselt wird. Nach dieser Äquilibrierungsphase wird die Lebensfähigkeit der Gefäße durch Messung ihrer Vasokonstriktion auf eine Lösung mit hohem extrazellulärem K+ (80 mM) gemessen, die 47,4 mM NaCl, 80 mM KCl, 10 mM HEPES, 0,5 mM KH 2 PO 4, 0,5 mM NaHPO4, 1,8 mM CaCl 2, 1 mM MgCl 2und 11 mM Glucose 10,11 enthält.
  5. Beurteilen Sie das Vorhandensein oder Fehlen von Endothel, indem Sie die Relaxationsreaktion auf Acetylcholin (1 x 10−5 M) in Ringen berechnen, die mit Phenylephrin (PE, 1 x 10−5 M) vorkontrahiert sind (Beachten Sie, dass die vaskulären Kontraktionen nach Zugabe von PE für 1 h stabil bleiben). Betrachten Sie die Ringe als endothelintakt, wenn sie mehr als 70% Relaxation quantifizieren (Abbildung 5A). Wenn sie weniger als 10% Relaxation aufweisen, betrachten Sie die Ringe als endothelentblößt13 (Abbildung 5B). Entfernen Sie das Endothel mechanisch, indem Sie es vorsichtig mit einem kleinen Draht in das Gefäß reiben, um eine Denudation zu induzieren.
  6. Wieder ausgleichen Sie die arteriellen Ringe für 30 min vor Beginn der Testexperimente.

5. Vasorelaxierende Reaktion auf Pflanzenextrakt

  1. Untersuchen Sie die entspannende Wirkung des Pflanzenextrakts, indem Sie IPA-Ringe mit PE (1 x 10−5 M) vorkontrahieren.
  2. Dann fügen Sie den Pflanzenextrakt (1-1.000 μg / ml) vorsichtig kumulativ zu endothelintakten Ringen und endothelentblößten Ringen hinzu, um eine Vasorelaxation zu induzieren (Abbildung 6A, B) und eine konzentrationsabhängige Reaktionskurve zu erhalten (Abbildung 6C).
  3. Stellen Sie sicher, dass die Wirkung von Dimethylsulfoxid (DMSO), das als Lösungsmittel verwendet wird, ebenfalls ähnlich bewertet wird, um als Negativkontrolle zu dienen (Abbildung 6C).

6. Mechanismus der Pflanzenextrakt-induzierten Vasorelaxation über das Endothel

  1. Bewerten Sie den vasorelaxierenden Wirkmechanismus des Pflanzenextrakts über endotheliale Stickstoffmonoxid-Synthase (eNOS), Cyclooxygenase (COX)13 und Endothel-abgeleiteten Hyperpolarisationsfaktor (EDHF)-Signalwege, indem die endothelintakten IPA-Ringe 30 min lang mit den folgenden Inhibitoren inkubiert werden (Abbildung 7A): 1 x 10−4 M NG-nitro-L-argininmethylester (L-NAME, ein eNOS-Inhibitor)9, 1 x 10−5 M Indomethacin (ein COX-Hemmer)9, oder eine Kombination aus 1 x 10−7 M Apamin (ein kleiner Calcium-aktivierter Kaliumkanalblocker) und 1 x 10−7 M Charybdotoxin (ein intermediärer und hochleitfähiger kalziumaktivierter Kaliumkanalblocker), bevor IPA-Kontraktionen mit 1 x 10−5 M PE induziert werden.
  2. Dann, nachdem sich die Kontraktionen zur PE-Stabilisierung stabilisiert haben, fügen Sie kumulative Konzentrationen (0,1-1.000 μg / ml) des Pflanzenextrakts hinzu.
  3. Präsentieren Sie die Wirkungen von Pflanzenextrakt als prozentuale Relaxation der IPA-Ringe in Gegenwart von Inhibitoren im Vergleich zur Reaktion der IPA-Ringe ohne Inhibitoren (Abbildung 7B-D) und konstruieren Sie die Konzentrations-Wirkungskurve.

7. Mechanismus der Pflanzenextrakt-induzierten Vasorelaxation über K+ -Kanäle der glatten Gefäßmuskulatur

  1. Vorinkubierte Endothel-entblößte IPA-Ringe für 30 min mit 1 x 10−3 M 4-Aminopyridin (4-AP), einem Blocker des spannungsabhängigen Kaliumkanals (KV) (Abbildung 8A), 1 x 10−5 M Glibenclamid, einem Blocker des ATP-sensitiven Kaliumkanals (KATP) oder 1 x 10−7 M Iberiotoxin, einem Blocker mit großem Leitwert Ca 2+-aktivierten K+-Kanälen (KCa), vor der Induktion von IPA-Kontraktionen mit 1 x 10−5 M PE.
  2. Dann fügen Sie kumulative Konzentrationen des Pflanzenextrakts hinzu.
  3. Präsentieren Sie die Wirkungen von Pflanzenextrakt als prozentuale Relaxation der IPA-Ringe mit Inhibitor im Vergleich zu den IPA-Ringen ohne Inhibitor (Abbildung 8B-D) und konstruieren Sie die Konzentrations-Wirkungskurve.

8. Mechanismus der Pflanzenextrakt-induzierten Vasorelaxation durch Hemmung des extrazellulären Kalziumeinstroms (Ca2+) in VSMCs

  1. Vorinkubierte Endothel-entblößte IPA-Ringe für 30 min in Ca2+-freier Krebslösung, die 1 mM Ethylenglykol-Bis-(2-aminoethylether)-N,N,N',N'-Tetraessigsäure (EGTA) enthält (Abbildung 9A).
  2. Ersetzen Sie dann die Badelösung 10 min lang durch eine Ca2 +-freie 80 mM K+ -Lösung, um die VSMCs zu depolarisieren, die dann die VOCCs öffnen (Abbildung 9A).
  3. Kumulativ CaCl2 (0,01-10 mM) zugeben, um eine Vasokonstriktion des IPA zu induzieren und die Konzentrations-Wirkungskurve zu konstruieren(Abbildung 9A).
  4. Wiederholen Sie dieses Protokoll in den gleichen IPA-Ringen, aber inkubieren Sie sie mit Pflanzenextrakt oder 1 μM Nicardipin (L-Typ Ca 2+ Kanalblocker) in Ca2+ mit 80 mM K+ Lösung für 10 min, gefolgt von der kumulativen Zugabe von CaCl28.
  5. Vergleichen Sie schließlich die kontraktile Reaktion mit der maximalen Kontraktion, die zuvor durch Kontroll-CaCl-2-Herausforderungen hervorgerufen wurde (Abbildung 9B).

9. Mechanismus der Pflanzenextrakt-induzierten Vasorelaxation durch Hemmung der intrazellulären Calciumfreisetzung (Ca2+) aus dem sarkoplasmatischen Retikulum (SR)

  1. Endothel-entblößte IPA-Ringe für ca. 5 min einer 80 mM K+-Lösung aussetzen, die VSMCs depolarisieren, die VOCCs öffnen und schließlich die Ca2+-Last in die SR erzeugen (Abbildung 10A).
  2. Ersetzen Sie die Badelösung für 10 min durch Ca2+-freie Krebslösung, die 1 mM EGTA enthält (Abbildung 10A).
  3. Fordern Sie dann die IPA-Ringe mit 1 x 10−5 M PE heraus, was den Phospholipase-C/IP-3-Weg aktiviert, schließlich Ca2+ aus der SR freisetzt und eine vorübergehende Kontraktion von IPA hervorruft (Abbildung 10A).
  4. Wiederholen Sie dasselbe Protokoll, um ebenfalls vorübergehende Kontraktionen zu PE zu ermitteln.
  5. Fordern Sie die IPA-Ringe erneut mit 80 mM K+ Lösung für ca. 5 min heraus, dann ersetzen Sie die Badelösung für 10 min durch Ca2+-freie Krebslösung, die 1 mM EGTA mit oder ohne Pflanzenextrakt enthält.
  6. Fordern Sie die IPA-Ringe erneut mit 1 x 10−5 M PE heraus.
  7. Vergleichen Sie die durch PE induzierten IPA-Kontraktionen zwischen dem Zustand mit und ohne Pflanzenextrakt (Abbildung 10B).

10. Statistische Auswertung

  1. Vergleichen ±Sie diese Werte mit dem Student's t-Test oder analysieren Sie diese Werte mit einer Varianzanalyse (ANOVA), gefolgt vom Tukey-Kramer-Post-hoc-Test mit geeigneter statistischer Software. Betrachten Sie die Unterschiede bei p < 0,05 als statistisch signifikant. Hier gab es n = 6 Ratten/Versuchsprotokoll.
    HINWEIS: Die Aufzeichnung von Vasokonstriktion und Vasorelaxation kann mit geeigneter auf dem Computer installierter Software beurteilt werden. Zum Beispiel zeigt Abbildung 5A , dass, wenn die Blutgefäße durch die PE stimuliert werden, die eine Kontraktion verursacht, dies an der erhöhten Spannung der ursprünglichen Spur beobachtet werden konnte. Die Verfolgung stabilisiert sich in 20-30 Minuten, was als 100% ige Kontraktion angesehen wird. Danach stimuliert das ACh die Blutgefäße und bewirkt eine Entspannung, die an der verminderten Spannung der ursprünglichen Spur beobachtet werden konnte. Somit wird die reduzierte Spannung als Prozentsatz im Vergleich zu 100% Kontraktion berechnet.

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Ergebnisse

Das Protokoll in der vorliegenden Studie wurde entwickelt, um die optimalen experimentellen Bedingungen für die Messung physiologischer Phänomene zu bestimmen, die in den vaskulären Reaktionen isolierter IPA-Präparate beobachtet werden. Die Pilotexperimente wurden durchgeführt, um die möglichen Ergebnisse, die zum Verständnis der vaskulären Effekte und der mechanistischen Grundlage der vasorelaxierenden Wirkung des Pflanzenextrakts beitragen, wie folgt zu beschreiben.

Vasorelaxierende ...

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Diskussion

In diesem Manuskript beschreiben wir die Technik zur Isolierung von Ratten-IPA und VSMCs. Mehrere experimentelle Protokolle wurden verwendet, um die vaskuläre Reaktion von IPA in vitro zu untersuchen, die verwendet werden kann, um die pharmakologische Wirkung und mechanistische Grundlage der durch Pflanzenextrakt induzierten IPA-Vasorelaxation zu charakterisieren.

Hinsichtlich der endothelabhängigen gefäßerweiternden Wirkung des Pflanzenextrakts wurden verschiedene Blocker wie L-NAME ...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Die Autoren danken dem National Research Council of Thailand, dem Center of Excellence for Innovation in Chemistry (PERCH-CIC) und dem International Research Network (IRN61W0005) für die finanzielle Unterstützung sowie dem Department of Physiology Faculty of Medical Science der Naresuan University für die Unterstützung von Forschungseinrichtungen.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
1,4-Dithiothreitol (DTT)Sigma-AldrichD0632
CAS-NR. 348-12-3
4-Aminopyridin (4-AP)Aldrich ChemicalA78403
CAS-NR. 504-24-5
AcetylcholinSigma-AldrichA6625
CAS-NR. 60-31-1
ApaminSigma-AldrichA9459
CAS-NR. 24345-16-2
Rind Serumalbumin (BSA)Sigma-AldrichA2153
CAS-NR. 9048-46-8
CalciumcholidAjax FinechemAJA960
CAS-NR. 1707055184
CharybdotoxinSigma-AldrichC7802
CAS-NR. 95751-30-7
Kollagenase Typ 1ASigma-AldrichC9891
CAS-Nr. 9001-12-1
aus Clostridium histolyticum
D(+)- GlukosemonohydratMillipore CorporationK50876942 924
CAS-NR. 14431-43-7
Dimethylsulfoxid (DMSO)Sigma-AldrichD4540
CAS-NR. 67-68-5
Ethylenglykol-bis-(2-aminoethylether)-N,N,N',N'-Tetraessigsäure (EGTA)Sigma-AldrichE3889
CAS-NR. 67-42-5
Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)Sigma-AldrichE9884
CAS NO. 60-00-4
Pinzette 11 cm.Rostfreie Dumoxel-Pinzette
14 cm.Rostfreies Dumoxel-Glibenclamid
Sigma-AldrichG6039
CAS-Nr. 16673-34-0
GraphPad Prism ProgrammSoftware Version 5.0 (San Diego, CA, USA)
HEPESSigma-AldrichH3375
CAS-NR. 7365-45-9
IberiotoxinSigma-AldrichI5904
CAS-NR. 1002546960
rekombinant von Mesobuthus tamulus
IndomethacinSigma-AldrichI7378
CAS NO. 53-86-1
Labchart ProgramSoftware Version 7.0 (A.D. Instrument, Castle Hill, Australien).
MagnesiumchloridAjax Finechem296
CAS-NR. 1506254995
Männliche Wistar-RattenNomura Siam International Co. Ltd., Bangkok, Thailand
NG-Nitro-L-Argininmethylester (L-NAME)Sigma-AldrichN5751
CAS-NR. 51298-62-5
NicardipinSigma-AldrichN7510
CAS-NR. 54527-84-3
Orgelbad 15 mL.--Spezifische Bestellung durch die Forscher
PapainSigma-AldrichP4762
CAS-NR. 9001-73-4
FromPapaya Latex
Phenal redSigma-AldrichP5530
CAS-NR. 34487-61-1
PhenylephrinSigma-AldrichP6126
CAS-NR. 61-76-7
KaliumchloridKemausKA383
CAS-NR. 7447-40-7
KaliumdihydrogenphosphatAldrich ChemicalEC231-913-4
CAS-NR. 7778-77-0
S+A2:E36odiumchloridKemausKA465
CAS-NR. 7647-14-5
Schere 11 cm.SpallEdelstahl-Schere
14 cm.Spall Stainless-Sodium
BicarbonateAjax Finechem475
CAS-NR. 912466
NatriumdihydrogenphosphatAldrich Chemical33,198-8
CAS-NR. 7558-80-7
NatriumhydroxidAjax Finechem482
CAS-NR. 1506196602
NatriumthiopentalanesthalJPN3010002
CAS-NR. 1C 314/47
TaurinSigma-AldrichT0625
CAS-NR. 107-35-7
Wasserbad WBU 45Memmert2766
CAS-NR. -

Referenzen

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Vaskuläre glatte MuskulaturOrganbad-TechnikVasokonstriktionsmechanismenVasorelaxationsmechanismenpulmonale HypertonieKonzentrations-Wirkungs-KurveEndothel-Denudierungisometrischer Kraftaufnehmer