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Methodenartikel

Live-Bildgebung der Mikrotubulidynamik in Glioblastomzellen, die in das Zebrafischgehirn eindringen

2.8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/64093

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29. Juli 2022

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir berichten über eine Technik, die eine Live-Bildgebung der Mikrotubulidynamik in Glioblastomzellen (GBM) ermöglicht, die in ein Hirngewebe von Wirbeltieren eindringen. Die Kopplung der orthotopischen Injektion von fluoreszenzmarkierten GBM-Zellen in ein transparentes Zebrafischgehirn mit hochauflösender intravitaler Bildgebung ermöglicht die Messung der Dynamik des Zytoskeletts während der in situ Krebsinvasion.

Zusammenfassung

Mit einer düsteren mittleren Überlebenszeit in realen Populationen - zwischen 6 und 15 Monaten - ist das Glioblastom (GBM) der verheerendste bösartige Hirntumor. Das Behandlungsversagen ist hauptsächlich auf die Invasivität der GBM-Zellen zurückzuführen, was für die Notwendigkeit eines besseren Verständnisses der beweglichen Eigenschaften von GBM spricht. Um den molekularen Mechanismus zu untersuchen, der die GBM-Invasion unterstützt, sind neue physiologische Modelle erforderlich, die eine eingehende Charakterisierung der Proteindynamik während der Invasion ermöglichen. Diese Beobachtungen würden den Weg zur Entdeckung neuer Ziele ebnen, um die Tumorinfiltration zu blockieren und die Patientenergebnisse zu verbessern. Dieser Artikel berichtet, wie ein orthotopes Xenotransplantat von GBM-Zellen im Zebrafischgehirn subzelluläre intravitale Live-Bildgebung ermöglicht. Wir konzentrieren uns auf Mikrotubuli (MTs) und beschreiben ein Verfahren zur MT-Markierung in GBM-Zellen, zur Mikroinjektion von GBM-Zellen in das transparente Gehirn von Zebrafischlarven 3 Tage nach der Befruchtung (dpf), zur intravitalen Bildgebung von MTs in den sich ausbreitenden Xenotransplantaten, zur Veränderung der MT-Dynamik, um ihre Rolle während der GBM-Invasion zu bewerten, und zur Analyse der erfassten Daten.

Einleitung

Zellmotilität ist ein stereotyper Prozess, der die Etablierung der Polaritätsachse und krafterzeugende Umlagerungen des Zytoskeletts erfordert. Die Aktinpolymerisation und ihre Assoziation mit Myosin gelten als die Hauptursachen für protrusive und kontraktile Kräfte, die für die Zellbewegung erforderlich sind1. Mikrotubuli gelten als Hauptakteure der Zellpolarisation und der gerichteten Persistenz während der Migration2. In den letzten Jahren wurde auch gezeigt, dass MTs Vorsprünge erzeugen und stabilisieren, um mechanokompressive Kräfte während der Zellinvasion in 3D3 zu unterstützen. In jüngerer....

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Protokoll

Tierversuche wurden nach den Richtlinien der Europäischen Union für den Umgang mit Versuchstieren durchgeführt. Alle Protokolle wurden von der Ethikkommission für Tierversuche des Institut Pasteur - CEEA 89 und dem französischen Ministerium für Forschung und Bildung (Genehmigung #01265.03) genehmigt. Während der Injektionen oder Live-Bildgebungssitzungen wurden die Tiere mit Tricaine.At am Ende der experimentellen Verfahren betäubt, sie wurden durch eine anästhetische Überdosierung eingeschläfert. Weitere Informationen zu den in diesem Protokoll verwendeten Materialien, Geräten und Software finden Sie in der Materialtabelle . Der allgemeine Workflow d....

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Ergebnisse

Um die Rolle von MTs während der in vivo GBM-Invasion zu analysieren, beschreiben wir hier die wichtigsten Schritte zur Durchführung einer stabilen MT-Markierung in GBM-Zellen durch lentivirale Infektion, orthotope Xenotransplantation von GBM-Zellen in 3 dpf Zebrafischlarven, hochauflösende intravitale Bildgebung der MT-Dynamik, MTA-Behandlung und ihre Auswirkungen auf die GBM-Invasion sowie Bildanalyse der MT-Dynamik und In-vivo-Invasion (Abbildung 1). D.......

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Diskussion

Die Bildgebung von Tumor-Xenotransplantaten mit Einzelzellauflösung wird wahrscheinlich zu einem unverzichtbaren Werkzeug, um unser Verständnis der GBM-Biologie zu verbessern. Live-Bildgebung in Maus-PDX-Modellen hat zu wertvollen Entdeckungen darüber geführt, wie GBM kollektiv in das Hirngewebe eindringt18. Bisher ist die raumzeitliche Auflösung jedoch nicht hoch genug, um die Dynamik von Proteinen aufzudecken, die die GBM-Invasion steuern. Wir argumentierten, dass durch die Kopplung der orthotop.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Wir danken Dr. P. Herbomel (Institut Pasteur, Frankreich) und seinem Labor, insbesondere Valérie Briolat, und Emma Colucci-Guyon für die Bereitstellung der Zebrafischlinien und der Kunststoffform für Mikroinjektionsplatten sowie für ihr wertvolles Know-how über experimentelle Verfahren von Zebrafischen. Wir danken dem UtechS Photonic BioImaging (C2RT, Institut Pasteur, unterstützt von der französischen National Research Agency France BioImaging, und ANR-10-INBS-04; Investitionen in die Zukunft). Diese Arbeit wurde von der Ligue contre le cancer (EL2017. LNCC), dem Centre National de la Recherche Scientific und dem Institut Pasteur sowie durch die großzügigen Spenden v....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Glioblastom-Zellkultur
Fötales KälberserumEurobioCVFSVF00-01Reagenz
MEM NEAAGibco11140-050Reagenz
Modifiziertes Eagle's MediumEurobioCM1MEM18-01Reagenz
Penicillin– StreptomycinGibco15140-122Reagenz
U-87 MGECACC89081402-1VLCells
Lenitivirus production
BD FACSAria IIIBD bioscienceInstrument
BD FACSDiva software v8.0BD bioscienceSoftware
HEK-293TMerck12022001Zellen
pMD2.GAddgenePlasmid #12259Reagenz
psPAX2AddgenePlasmid #12260Reagenz
Ultrazentrifuge Optima XPN-80Beckman CoulterInstrument
Zellpassage und Färbung
dPBSGibco14190-094Chemisch
Hoechst 34580Sigma-Aldrich63493Chemikalie
Trypsin-EDTA (0,05%)Gibco25300-054Reagenz
Zebrafischzucht
Fluoreszenz-Stereomikroskop LEICA M165FCLEICAhttps://www.leica-microsystems.com/fr/produits/stereomicroscopes-et-macroscopes/informations-detaillees/leica-m165-fc/Instrument
Methylenblau-HydratSigma-AldrichM4159Chemikalie
N-Phenylthioharnstoff (PTU)Sigma-AldrichP7629-25G
Chemischer Transfer Pipetten feine SpitzenSamco Scientific232
Gerätetransfer Pipetten Large Bulb3mLSamco Scientific225Ausrüstung
Tricain (Ethyl-3-aminobenzoat, Methansulfonat)Sigma-AldrichCat#: A5040Chemical
Volvic Source WaterDUTSCHER DOMINIQUE SASReagenz
Xenotransplantation
24-Well-PlatteTPP92024Ausrüstung
Kapillaren aus Borosilikatglas (1.0 ODx0.58IDx150L mm)Harvard Apparatur(#30-0017 GC100-15Ausrüstung
CellTram Öl Vario MikroinjektorEppendorf5176000.025Instrument
Microloading Pipettenspitzen (Microloader) 20µ LEppendorf  5242956003Equipment
MikromanipulatorNARISHIGEhttps://products.narishige-group.com/group1/injection/english.htmlEquipment
MineralölSigmaM8410-100mlEquipment
StereomikroskopOlympusKL 2500 LCDInstrument
Universal KapillarhalterEppendorf5176190002Equipment
Vertikaler PipettenabzieherKOPF (Roucaire)Modell 720Instrument
Intravital Imaging3,5cm
Video-Schüssel mit GlasbodenMatTek Life Sciences, MA, USAP35G-1,5-14-C
Software zur Geräteerfassung: NIS-Elements-AR Version 5.21NikonSoftware
Heat-BlockTechneDRI-BLOCK DB-2DEquipment
Mikroskopkopf Nikon Ti2ENikonInstrument
sCMOS Kamera Prime 95BPhotometricsInstrument
sCMOS Kamera Orca Flash 4HammatsuInstrument
Ultrapure Lowpoint Agarose Invitrogen16520-050Chemical
Yokagawa CSU-W1 Spinning Disk EinheitHammatsuInstrument
Drug Treatment
DMSOSigma-AldrichD2650-100MLChemikalie
NocodazolSigma-AldrichM1404-2MGChemisch
Bildanalyse
Imaris 9.5.1 SoftwareOxford InstrumentsSoftware
ImarisFileConverter 9.5.1Oxford InstrumentsSoftware
999556 melting

Referenzen

  1. Pollard, T. D., Borisy, G. G. Cellular motility driven by assembly and disassembly of actin filaments. Cell. 112 (4), 453-465 (2003).
  2. Etienne-Manneville, S. Microtubules in cell migration. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 29, 471-499 (2013).

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Nachdrucke und Genehmigungen

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