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Methodenartikel

Isolierung und direkte neuronale Reprogrammierung von Maus-Astrozyten

3.1K Ansichten

DOI:

10.3791/64175

7. Juli 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir ein detailliertes Protokoll zur Erzeugung hochangereicherter Kulturen von Astrozyten, die aus verschiedenen Regionen des Zentralnervensystems postnataler Mäuse stammen, und deren direkte Umwandlung in funktionelle Neuronen durch die erzwungene Expression von Transkriptionsfaktoren.

Zusammenfassung

Die direkte neuronale Reprogrammierung ist ein leistungsfähiger Ansatz, um funktionelle Neuronen aus verschiedenen Starterzellpopulationen zu erzeugen, ohne multipotente Zwischenprodukte zu durchlaufen. Diese Technik verspricht nicht nur im Bereich der Krankheitsmodellierung große Versprechungen, da sie es beispielsweise ermöglicht, Fibroblasten für Patienten mit neurodegenerativen Erkrankungen in Neuronen umzuwandeln, sondern stellt auch eine vielversprechende Alternative für zellbasierte Ersatztherapien dar. Ein großer wissenschaftlicher Durchbruch war in diesem Zusammenhang der Nachweis, dass differenzierte nicht-neuronale Zellen innerhalb des Zentralnervensystems, wie Astrozyten, in vitro in funktionelle Neuronen umgewandelt werden können. Seitdem hat die direkte In-vitro-Reprogrammierung von Astrozyten in Neuronen substanzielle Einblicke in die molekularen Mechanismen geliefert, die der erzwungenen Identitätsumwandlung zugrunde liegen, und die Hürden, die eine effiziente Reprogrammierung verhindern. Die Ergebnisse von In-vitro-Experimenten, die in verschiedenen Labors durchgeführt wurden, sind jedoch aufgrund der Unterschiede in den Methoden zur Isolierung, Kultur und Neuprogrammierung von Astrozyten schwer zu vergleichen. Hier beschreiben wir ein detailliertes Protokoll zur zuverlässigen Isolierung und Kultivierung von Astrozyten mit hoher Reinheit aus verschiedenen Regionen des zentralen Nervensystems von Mäusen im postnatalen Alter mittels Magnetzellsortierung. Darüber hinaus bieten wir Protokolle zur Umprogrammierung kultivierter Astrozyten in Neuronen durch virale Transduktion oder DNA-Transfektion an. Mit diesem schlanken und standardisierten Protokoll können die molekularen Mechanismen untersucht werden, die der Aufrechterhaltung der Zellidentität, der Etablierung einer neuen neuronalen Identität sowie der Generierung spezifischer neuronaler Subtypen und ihrer funktionellen Eigenschaften zugrunde liegen.

Einleitung

Das zentrale Nervensystem (ZNS) von Säugetieren ist hochkomplex und besteht aus Hunderten von verschiedenen Zelltypen, darunter eine große Anzahl verschiedener neuronaler Subtypen 1,2,3,4,5,6. Im Gegensatz zu anderen Organen oder Geweben 7,8,9 hat das ZNS von Säugetieren eine sehr begrenzte Regenerationsfähigkeit; Der neuronale Verlust nach einer traumatischen Hirnverletzung oder ....

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Protokoll

Das folgende Verfahren folgt den Tierpflegerichtlinien des Helmholtz Zentrums München gemäß der Richtlinie 2010/63/EU zum Schutz der für wissenschaftliche Zwecke verwendeten Tiere. Bitte achten Sie auf die Einhaltung der Tierpflegerichtlinien der Einrichtung, in der die Dissektion durchgeführt wird.

1. Vorbereitung von Sezier-, Dissoziations- und Kulturmaterialien

HINWEIS: Bereiten Sie alle Kulturreagenzien in einer biologischen Sicherheitswerkbank vor und arbeiten Sie nur mit autoklavierten oder sterilen Geräten. Dissektions- und Dissoziationsreagenzien können außerhalb einer biologischen Sicherhe....

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Ergebnisse

Primärkulturen von Astrozyten erreichen typischerweise zwischen 7 und 10 Tagen nach der MAC-Sortierung und -Beschichtung eine Konfluenz von 80% -90% (Abbildung 1B). Im Allgemeinen liefert ein einzelner T25-Kulturkolben etwa 1-1,5 x 106 Zellen, was für 20-30 Deckgläser ausreicht, wenn Zellen mit einer Dichte von 5-5,5 x 104 Zellen pro Vertiefung ausgesät werden. Am Tag nach der Beschichtung bedecken die Zellen in der Regel 50 % bis 60 % der Deckglasoberfläche (

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Diskussion

Primärkulturen muriner Astrozyten sind ein bemerkenswertes In-vitro-Modellsystem zur Untersuchung der direkten neuronalen Reprogrammierung. Tatsächlich exprimieren Zellen, obwohl sie in einem postnatalen Stadium isoliert wurden, typische Astrozytenmarker 29, behalten die Expression von Mustergenen28,29 bei und behalten die Fähigkeit zur Proliferation bei, ähnlich wie in vivo Astrozyten im vergleichbaren Altervon 38 Jahren.

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Offenlegungen

Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.

Danksagungen

Wir danken Ines Mühlhahn für das Klonen der Konstrukte für die Neuprogrammierung, Paulina Chlebik für die virale Produktion und Magdalena Götz und Judith Fischer-Sternjak für die Kommentare zum Manuskript.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,05 % Trypsin/EDTALife Technologies25300054
, 6-Diamidino-2-phenyindol, Dilaktat (DAPI)Sigma-AldrichD9564
Anti-Maus IgG1 Alexa 647Thermo FisherA21240
Anti-Maus IgG1 BiotinSouthernbiotechCat# 1070-08; RRID: AB_2794413
Anti-Maus IgG2b Alexa 488Thermo FisherA21121
Anti-Kaninchen Alexa 546Thermo FisherA11010
Aqua Poly/MountPolysciencesCat# 18606-20
B27 ErgänzungLife Technologies17504044
BDNFPeprotech450-02
bFGFLife Technologies13256029
Rinderserumalbumin (BSA)Sigma-AldrichCat# A9418
cAMPSigma AldrichD0260
C-RöhrchenMiltenyi Biotec130-093-237
DMEM/F12Life Technologies21331020
DorsomorphinSigma AldrichP5499
EGFLife TechnologiesPHG0311
Fötales RinderserumPAN BiotechP30-3302
ForskolinSigma AldrichF6886
GDNFPeprotech450-10
gentleMACS Octo DissoziatorMiltenyi Biotec130-096-427
GFAPDakoCat# Z0334; RRID: AB_100013482
GlucoseSigma AldrichG8769
GlutaMaxLife Technologies35050038
HBSSLife Technologies14025050
HepesLife Technologies15630056
Lipofectamine 2000 (Transfektionsreagenz)Thermo FisherCat# 11668019
MACS SmartStrainer 70µ mMiltenyi Biotec130-098-462
MiniMACS TrennerMiltenyi Biotec130-042-102
Maus Anti-ACSA-2 MicroBeat Kit Miltenyi Biotec130-097-678
Maus IgG1 anti-Synaptophysin 1Synaptic SystemsCat# 101 011 RRID:AB_887824)
Maus IgG2b anti-Tuj-1 (β III-tub)Sigma AldrichT8660
MS SäulenMiltenyi Biotec130-042-201
N2 SupplementLife Technologies17502048
Neural Tissue Dissoziationskit Miltenyi Biotec130-092-628
NT3Peprotech450-03
octoMACS SeparatorMiltenyi Biotec130-042-109
OptiMEM – GlutaMAX (serumreduziertes Medium)Thermo FisherCat# 51985-026
Penicillin/StreptomycinLife Technologies15140122
Poly-D-LysinSigma AldrichP1149
Kaninchen Anti-RFPRocklandCat# 600-401-379; RRID:AB_2209751
Kaninchen Anti-Sox9Sigma-AldrichKat# AB5535; RRID:AB_2239761
Streptavidin Alexa 405Thermo FisherCat# S32351
Triton X-100Sigma-AldrichCat# T9284
4'

Referenzen

  1. Johnson, T. S., et al. Spatial cell type composition in normal and Alzheimers human brains is revealed using integrated mouse and human single cell RNA sequencing. Scientific Reports. 10 (1), 18014(2020).
  2. Lake, B. B., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

Astrozytenisolationmagnetische Zellsortierungneuronale Differenzierungvirale TransduktionDNA Transfektionzentrales Nervensystemneuronale Markerfunktionelle Neuronen