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Im Anschluss an das Protokoll wurde ein Fünf-Schicht-U-Net mit einem einzigen Tomogramm (Abbildung 2A) trainiert, um fünf Klassen zu identifizieren: Membran, Mikrotubuli, Aktin, Passermarker und Hintergrund. Das Netzwerk wurde insgesamt dreimal iterativ trainiert und dann auf das Tomogramm angewendet, um es vollständig zu segmentieren und zu annotieren (Abbildung 2B, C). Die minimale Bereinigung wurde mit den Schritten 7.1 und 7.2 durchgeführt. Die nächsten drei interessierenden Tomogramme (Abbildung 2D, G, J) wurden zur Vorverarbeitung in die Software geladen. Vor dem Bildimport musste eines der Tomogramme (Abbildung 2J) die Pixelgröße von 17,22 Å/px auf 13,3 Å/px anpassen, da es mit einem anderen Mikroskop bei einer etwas anderen Vergrößerung aufgenommen wurde. Das IMOD-Programm squeezevol wurde zum Ändern der Größe mit folgendem Befehl verwendet:
'squeezevol -f 0.772 inputfile.mrc outputfile.mrc'
In diesem Befehl bezieht sich -f auf den Faktor, um den die Pixelgröße geändert werden soll (in diesem Fall: 13,3/17,22). Nach dem Import wurden alle drei Inferenzziele gemäß den Schritten 3.2 und 3.3 vorverarbeitet, und dann wurde das Fünf-Schicht-U-Net angewendet. Es wurden erneut minimale Aufräumarbeiten durchgeführt. Die endgültigen Segmentierungen sind in Abbildung 2 dargestellt.
Mikrotubuli-Segmentierungen aus jedem Tomogramm wurden als binäre (Schritt 7.4) TIF-Dateien exportiert, in MRC (IMOD tif2mrc-Programm ) konvertiert und dann für die Zylinderkorrelation und Filamentverfolgung verwendet. Binäre Segmentierungen von Filamenten führen zu einer viel robusteren Filamentverfolgung als die Verfolgung über Tomogramme. Koordinatenkarten aus der Filamentverfolgung (Abbildung 3) werden für weitere Analysen verwendet, wie z. B. Messungen des nächsten Nachbarn (Filamentpackung) und helikale Subtomogramm-Mittelung entlang einzelner Filamente, um die Orientierung der Mikrotubuli zu bestimmen.
Erfolglose oder unzureichend trainierte Netzwerke sind leicht zu ermitteln. Ein ausgefallenes Netzwerk ist überhaupt nicht in der Lage, Strukturen zu segmentieren, während ein unzureichend trainiertes Netzwerk in der Regel einige Strukturen korrekt segmentiert und eine beträchtliche Anzahl von Fehlalarmen und Fehlalarmen aufweist. Diese Netzwerke können korrigiert und iterativ trainiert werden, um ihre Leistung zu verbessern. Der Segmentierungsassistent berechnet automatisch den Würfelähnlichkeitskoeffizienten eines Modells (im SegWiz als Punktzahl bezeichnet), nachdem es trainiert wurde. Diese Statistik gibt eine Schätzung der Ähnlichkeit zwischen den Trainingsdaten und der U-Net-Segmentierung an. Dragonfly 2022.1 verfügt außerdem über ein integriertes Tool zur Bewertung der Leistung eines Modells, auf das auf der Registerkarte "Künstliche Intelligenz " oben auf der Benutzeroberfläche zugegriffen werden kann (siehe Dokumentation zur Verwendung).

Abbildung 2: Inferenz. (A-C) Originales Trainingstomogramm eines DIV 5 Hippocampus-Rattenneurons, aufgenommen 2019 an einem Titan Krios. Dies ist eine rückprojizierte Rekonstruktion mit CTF-Korrektur in IMOD. (A) Das gelbe Kästchen stellt den Bereich dar, in dem die manuelle Segmentierung für die Trainingseingabe durchgeführt wurde. (B) 2D-Segmentierung aus dem U-Net nach Abschluss des Trainings. (C) 3D-Darstellung der segmentierten Regionen mit Membran (blau), Mikrotubuli (grün) und Aktin (rot). (D-F) DIV 5 Hippocampus-Rattenneuron aus der gleichen Sitzung wie das Trainingstomogramm. (E) 2D-Segmentierung aus dem U-Net ohne zusätzliche Schulung und schnelle Bereinigung. Membran (blau), Mikrotubuli (grün), Aktin (rot), Passermarken (rosa). (F) 3D-Rendering der segmentierten Bereiche. (G-I) DIV 5 Hippocampus-Rattenneuron aus der Sitzung 2019. (H) 2D-Segmentierung aus dem U-Net mit schneller Bereinigung und (I) 3D-Rendering. (J-L) DIV 5 Hippocampus-Rattenneuron, gesammelt im Jahr 2021 auf einem anderen Titan Krios mit einer anderen Vergrößerung. Die Pixelgröße wurde mit dem IMOD-Programm squeezevol an das Trainingstomogramm angepasst. (K) 2D-Segmentierung aus dem U-Net mit schneller Bereinigung, die eine robuste Inferenz über Datensätze hinweg mit ordnungsgemäßer Vorverarbeitung demonstriert, und (L) 3D-Rendering der Segmentierung. Maßstabsbalken = 100 nm. Abkürzungen: DIV = Tage in vitro; CTF = Kontrastübertragungsfunktion. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Abbildung 3: Verbesserung der Filamentverfolgung . (A) Tomogramm eines DIV 4 Ratten-Hippocampus-Neurons, gesammelt auf einem Titan Krios. (B) Korrelationskarte, die aus der Zylinderkorrelation über Aktinfilamenten generiert wurde. (C) Filamentverfolgung von Aktin unter Verwendung der Intensitäten der Aktinfilamente in der Korrelationskarte zur Definition von Parametern. Bei der Verfolgung werden die Membran und die Mikrotubuli sowie das Rauschen erfasst, während versucht wird, nur Aktin zu verfolgen. (D) U-Net-Segmentierung des Tomogramms. Membran blau hervorgehoben, Mikrotubuli rot, Ribosomen orange, triC lila und Aktin grün. (E) Aktin-Segmentierung, extrahiert als binäre Maske für die Filamentverfolgung. (F) Korrelationskarte, die aus der Zylinderkorrelation mit den gleichen Parametern aus (B) generiert wurde. (G) Signifikant verbesserte Filamentverfolgung von reinen Aktinfilamenten aus dem Tomogramm. Abkürzung: DIV = Tage in vitro. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.
Ergänzende Datei 1: Das in diesem Protokoll verwendete Tomogramm und der Multi-ROI, der als Trainingseingabe generiert wurde, sind als gebündelter Datensatz (Training.ORSObject) enthalten. Siehe https://datadryad.org/stash/dataset/doi:10.5061/dryad.rxwdbrvct.